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    植物组织中可溶性糖含量的测定(3页).doc

    • 资源ID:36386462       资源大小:32.50KB        全文页数:3页
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    植物组织中可溶性糖含量的测定(3页).doc

    -植物组织中可溶性糖含量的测定  在作物的碳素营养中, 作为营养物质主要是指可溶性糖和淀粉。它们在营养中的作用主要有:合成纤维素组成细胞壁;转化并组成其他有机物如核苷酸、核酸等;分解产物是其他许多有机物合成的原料,如糖在呼吸过程中形成的有机酸,可作为 NH 3 的受体而转化为氨基酸;糖类作为呼吸基质,为作物的各种合成过程和各种生命活动提供了所需的能量。由于碳水化合物具有这些重要的作用,所以是营养中最基本的物质,也是需要量最多的一类。 蒽酮法测定可溶性糖一、原理糖在浓硫酸作用下,可经脱水反应生成糠醛或羟甲基糠醛,生成的糠醛或羟甲基糠醛可与蒽酮反应生成蓝绿色糠醛衍生物,在一定范围内,颜色的深浅与糖的含量成正比,故可用于糖的定量测定。该法的特点是几乎可以测定所有的碳水化合物,不但可以测定戊糖与己糖含量,而且可以测所有寡糖类和多糖类,其中包括淀粉、纤维素等(因为反应液中的浓硫酸可以把多糖水解成单糖而发生反应),所以用蒽酮法测出的碳水化合物含量,实际上是溶液中全部可溶性碳水化合物总量。在没有必要细致划分各种碳水化合物的情况下,用蒽酮法可以一次测出总量,省去许多麻烦,因此,有特殊的应用价值。但在测定水溶性碳水化合物时,则应注意切勿将样品的未溶解残渣加入反应液中,不然会因为细胞壁中的纤维素、半纤维素等与蒽酮试剂发生反应而增加了测定误差。此外,不同的糖类与蒽酮试剂的显色深度不同,果糖显色最深,葡萄糖次之,半乳糖、甘露糖较浅,五碳糖显色更浅,故测定糖的混合物时,常因不同糖类的比例不同造成误差,但测定单一糖类时,则可避免此种误差。糖类与蒽酮反应生成的有色物质在可见光区的吸收峰为 620 nm ,故在此波长下进行比色。二、实验材料、试剂与仪器设备(一)实验材料任何植物鲜样或干样。(二)试剂1. 80 乙醇。2. 葡萄糖标准溶液( 100 g/mL ):准确称取 100 mg 分析纯无水葡萄糖,溶于蒸馏水并定容至 100 mL ,使用时再稀释 10 倍( 100 g/mL )。3 蒽酮试剂:称取 1.0 g 蒽酮,溶于 80% 浓硫酸(将 98% 浓硫酸稀释,把浓硫酸缓缓加入到蒸馏水中) 1000 mL 中,冷却至室温,贮于具塞棕色瓶内,冰箱保存,可使用 2 3 周。(三) 仪器设备分光光度计,分析天平,离心管,离心机,恒温水浴,试管,三角瓶,移液管( 5 、 1 、 0.5 mL ),剪刀,瓷盘,玻棒,水浴锅,电炉,漏斗,滤纸。三、实验步骤1. 样品中可溶性糖的提取 称取剪碎混匀的新鲜样品 0.5 1.0 g (或干样粉末 5 100 mg ),放入大试管中,加入 15 mL 蒸馏水,在沸水浴中煮沸 20 min ,取出冷却,过滤入 100 mL 容量瓶中,用蒸馏水冲洗残渣数次,定容至刻度。2. 标准曲线制作 取 6 支大试管,从 0 5 分别编号,按表 24-1 加入各试剂。表 24-1 蒽酮法测可溶性糖制作标准曲线的试剂量试 剂管 号012345100 g/mL 葡萄糖溶液( mL )00.20.40.60.81.0蒸馏水( mL )1.00.80.60.40.20蒽酮试剂( mL )5.05.05.05.05.05.0葡萄糖量( g )020406080100将各管快速摇动混匀后,在沸水浴中煮 10 min ,取出冷却,在 620 nm 波长下,用空白调零测定光密度,以光密度为纵坐标,含葡萄糖量( g )为横坐标绘制标准曲线。3 样品测定 取待测样品提取液 1.0 mL 加蒽酮试剂 5 mL ,同以上操作显色测定光密度。重复 3 次。四、结果计算溶性糖含量()从标准曲线查得糖的量(g)×提取液体积(ml)×稀释倍数/测定用样品液的体积(ml)×样品重量(g)×106×100式中: C 从标准曲线查得葡萄糖量, g 。V T 样品提取液总体积 , mL 。V 1 显色时取样品液量, mL 。W 样品重( g )。 苯酚法测定可溶性糖一、原理植物体内的可溶性糖主要是指能溶于水及乙醇的单糖和寡聚糖。苯酚法测定可溶性糖的原理是:糖在浓硫酸作用下,脱水生成的糠醛或羟甲基糠醛能与苯酚缩合成一种橙红色化合物,在 10 100mg 范围内其颜色深浅与糖的含量成正比,且在 485 nm 波长下有最大吸收峰,故可用比色法在此波长下测定。苯酚法可用于甲基化的糖、戊糖和多聚糖的测定,方法简单,灵敏度高,实验时基本不受蛋白质存在的影响,并且产生的颜色稳定 160 min 以上。二、实验材料、试剂与仪器设备(一)实验材料新鲜的植物叶片。(二)试剂1. 90 苯酚溶液:称取 90 g 苯酚( AR ),加蒸馏水溶解并定容至 100 mL ,在室温下可保存数月。2. 9 苯酚溶液:取 3 mL 90 苯酚溶液,加蒸馏水至 30 mL ,现配现用。3. 浓硫酸(比重 1.84 )。4. 1 蔗糖标准液:将分析纯蔗糖在 80 下烘至恒重,精确称取 1.000 g ,加少量水溶解,移入 100 mL 容量瓶中,加入 0.5 mL 浓硫酸,用蒸馏水定容至刻度。5. 100 g/L 蔗糖标准液:精确吸取 1 蔗糖标准液 l mL 加入 100 mL 容量瓶中,加蒸馏水定容。(三)仪器设备分光光度计,电炉,铝锅, 20 mL 刻度试管,刻度吸管 5 mL 1 支、 l mL 2 支,记号笔,吸水纸适量。三、实验步骤1 标准曲线的制作 取 20 mL 刻度试管 11 支,从 0 10 分别编号,按表 24 2 加入溶液和水,然后按顺序向试管内加入 1mL 9 苯酚溶液,摇匀,再从管液正面以 5 20 s 时间加入 5 mL 浓硫酸,摇匀。比色液总体积为 8 mL ,在室温下放置 30 min ,显色。然后以空白为参比,在 485 nm 波长下比色测定,以糖含量为横坐标,光密度为纵坐标,绘制标准曲线,求出标准直线方程。表 24-2 苯酚法测可溶性糖绘制标准曲线的试剂量试 剂管 号01 、 23 、 45 、 67 、 89 、 10100g/L 蔗糖标准液( mL )00.20.40.60.81.0蒸馏水( mL )2.01.81.61.41.21.0蔗糖量( g )0204060801002 可溶性糖的提取 取新鲜植物叶片,擦净表面污物,剪碎混匀,称取 0.1 0.3 g, 共 3 份,分别放入 3 支刻度试管中,加入 5 10 mL 蒸馏水,塑料薄膜封口,于沸水中提取 30 min (提取 2 次),提取液过滤入 25 mL 容量瓶中,反复冲洗试管及残渣,定容至刻度。3 测定 吸取 0.5 mL 样品液于试管中(重复 2 次),加蒸馏水 1.5 mL ,同制作标准曲线的步骤,按顺序分别加入苯酚、浓硫酸溶液,显色并测定光密度。由标准线性方程求出糖的量,计算测试样品中糖含量。四、结果计算可溶性糖含量()从标准曲线查得糖的量(g)×提取液体积(ml)×稀释倍数/测定用样品液的体积(ml)×样品重量(g)×106×100式中: C 标准方程求得糖量, g 。V T 提取液体积, mL 。V 1 吸取样品液体积, mL 。W 组织重量, g 。-第 3 页-

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