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    2022年DB21∕T 1890-2001 鸡马立克氏病诊断技术规程.doc

    • 资源ID:69367306       资源大小:1.35MB        全文页数:8页
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    2022年DB21∕T 1890-2001 鸡马立克氏病诊断技术规程.doc

    ICS65.020.30B41DB21辽宁省地点标准DB 21/ T18902011鸡马立克氏病诊断技术规程Regulations of diagnotic techniques for Mareks disease点击此处添加与国际标准一致性程度的标识2011 - 01 - 17发布2011 - 02 - 01施行辽宁省质量技术监视局发布DB21/ TXXX2011前言本标准按照GB/T1.1-2009给出的规则并起草。本标准的附录A、附录B为材料性附录。本标准由辽宁省动物疫病预防操纵中心提出。本标准由辽宁省畜牧兽医局归口。本标准起草单位:辽宁省动物疫病预防操纵中心、辽宁省动物医学研究院。本标准主要起草人:陈瑶 顾贵波 段亚良 王竹 李清竹 薛树山 赵培 邓文超 6鸡马立克氏病诊断技术规程1 范围本标准规定了鸡马立克氏病(MD)的临床病症与病理变化、实验室诊断和综合断定。本标准适用于辽宁省境内的一切从事鸡类豢养、运营和鸡类产品消费、运营以及从事动物防疫活动的单位和个人对鸡马立克氏病的诊断、疫病监测及流行病学调查。2 标准性援用文件以下文件关于本文件的应用是必不可少的。但凡注日期的援用文件,仅所注日期的版本适用于本文件。但凡不注日期的援用文件,其最新版本(包括所有的修正单)适用于本文件。GBT 18643-2002 鸡马立克氏病诊断技术标准SNT 1454-2004 鸡马立克氏病病毒别离与鉴定方法NT/T 905-2004 鸡马立克氏病强毒感染诊断技术3 临床病症与病理变化3.1 临床病症3.1.1 神经型病鸡步态不稳,发生不全或完全麻木,不能站立,蹲伏地上,同时两腿前后伸展呈“劈叉”姿态。3.1.2 皮肤型病鸡多在颈部、翅膀和大腿外侧体表毛囊腔构成结节及小的肿瘤状物。3.1.3 眼型病鸡一侧或两侧眼睛失明,瞳孔边缘不整齐呈锯齿状,虹彩消失,眼球如鱼眼,呈灰白色。3.1.4 内脏型病鸡精神萎靡,呆顿,食欲下降,明显消瘦,常缩颈蹲在墙角下。羽毛松乱无光泽,皮肤惨白,排绿色稀便。3.2 病理变化3.2.1 神经型外周神经肿胀,呈半透明水肿样,色泽变淡,横纹消失,其肿胀程度一般为正常神经的2倍3倍。这些变化多发生在腰荐神经丛、坐骨神经丛、臂神经丛、颈部迷走神经丛等部位。3.2.2 皮肤型以皮肤的羽毛囊为中心,构成半球形隆起的肿瘤,其外表有时可见鳞片状棕色痂皮。3.2.3 眼型虹膜呈环状或斑点状褪色,出现淡灰色;瞳孔不规则,有时偏向虹膜一侧。3.2.4 内脏型以内脏出现肿瘤为特征,其中肝脏、腺胃的发生率最高。3.3 病理组织学变化3.3.1 采集病鸡肿胀的外周神经和内脏的肿瘤组织样品,按常规方法制备石蜡切片、苏木素伊红(HE)染色。通过一般光学显微镜进展病理组织学观察断定。3.3.2 依照病变组织中浸润细胞的品种及形态学,外周神经病理组织学变化可分为A、B、C三个型。在同一只鸡的不同神经会出现不同的病变型。A型病变表现为淋巴母细胞,大、中、小淋巴细胞及巨噬细胞的增生浸润。B型病变表现神经水肿,神经纤维被水肿液别离,水肿液中多为小淋巴细胞、浆细胞和许旺氏细胞增生。C型病变为水肿和轻度小淋巴细胞增生。3.3.3 内脏和其他组织的肿瘤与A型神经病变类似,为大小各异的淋巴细胞增生。4 实验室诊断4.1 病毒别离与鉴定操作方法按SNT 1454-2004执行。4.2 琼脂扩散试验检测技术操作方法按GBT 18643-2002;NT/905-2004执行。4.3 聚合酶链式反响试验4.3.1 材料4.3.1.1 样品的采集与处理无菌采集病鸡的全血、皮肤、皮屑、脾等内脏器官,在48尽快送往检测单位。在无菌室内将样品充分研磨,并参加0.04mol/L PBS(ph7.4)制成1:5悬液,3000r/min离心10min,取上清备用。阳性对照可选用马立克活疫苗。4.3.1.2 试剂及引物Taq DNA聚合酶,dNTP,DL2000 DNA Marker,琼脂糖,核酸提取试剂DNAzol,无水乙醇,ddH2O,75%乙醇。引物为上游5'TGCGATGAAAGTGCTATGGAGG3';下游5'GAGAATCCCTATGAGAAAGCGC3'。目的片段大小为185bp、317bp或449bp中的一个或二个或三个目的片段。4.3.2 方法4.3.2.1 样品DNA的提取阳性对照与样品同时提取DNA,实验应使用ddH2O水作为阴性对照。a)取处理好的样品200L参加1.5mL离心管中,参加800L DNAzol病毒裂解液,颠倒混匀,室温放置3min。b)10 000r/min离心10min。c)上清转移至另一离心管内,加500L无水乙醇,混匀,室温放置3min。d) 10 000r/min离心5min。e)弃上清,加1mL75%乙醇,10 000r/min离心5min。f)重复步骤(5)。g)小心倒掉上清液,风干。h)加20-40L ddH2O水溶解DNA,-70保存备用。4.3.2.2 PCR反响4.3.2.2.1 在冰浴条件下,按以下试剂用量在0.2mLPCR管中配制如下体系:提取的DNA模板2L;10×PCR Buffer(Mg2+Free)2.5L;dNTP Mixture(各2.5mM)2L;上游引物1L;下游引物1L;MgCI2;1L;rTaq DNA聚合酶0.25L;ddH2O 15.25L。4.3.2.2.2 以上体系按以下程序在PCR仪进展反响:95 1min,1个循环;94 45sec,55 45sec,72 45sec,30个循环;72 10min ,1个循环;4 完毕循环。4.3.2.3 电泳4.3.2.3.1 称取1g琼脂糖,参加100mL 1×电泳缓冲液。加热溶化后参加5L(10mg/mL)溴化乙锭,混匀后倒入放置在水平台面上的凝胶盘中,胶板厚5mm左右。依照样品数选择适宜的梳子。待凝胶凝固后拔出梳子,将凝胶放入电泳槽内,加电泳液直至吞没凝胶。4.3.2.3.2 取6L8L PCR扩增产物与2L3L加样缓冲液混匀后参加凝胶孔内,在其中一孔内参加与样品一样体积的DL2000 DNA Marker。4.3.2.3.3 电压80V100V或电流40 mA50mA电泳30 min40min。4.3.3 结果断定电泳完毕后,取出凝胶板置于紫外透射仪上打开紫外灯观察。阳性对照出现185bp、317bp或449bp中的一个或二个或三个目的片段。而阴性对照无任何条带则实验成立。假设被检样品出现185bp、317bp或449bp中的一个或二个或三个目的片段。可判为阳性;否则为阴性。5 综合断定5.1 MDV的诊断应通过特征性临床病症、病理变化、病理组织学变化以及实验室检测进展综合断定,从而得到最终的诊断结果。5.2 当在临床和病理变化上疑心感染MDV时,可依照实际情况由上述检测方法中选用一种或两种方法进展检测,检测结果为阳性的,可断定为MDV感染鸡群。5.3 当鸡群无明显的临床和病理变化,而实验室检测结果为阳性时,应结合病史和疫苗接种情况,并配合流行病学调查进展综合断定,不可一律视为MDV感染鸡群。AA附录A (材料性附录)附录AA.1 PBS(磷酸盐缓冲液)的配制A.1.1 0.1mol/L PBS氯 氯化钠(NaCI)80.0g氯化钾(KCI)2.0 g磷酸氢二钠(Na2HPO4·12H2O)30.0 g磷酸二氢钾(KH2PO4)2.0 g蒸馏水1000.0mLA.1.2 0.04mol/L PBS(PH7.27.4)的配制0.1mol/L PBS400 mL蒸馏水600.0mL103k Pa高压蒸汽灭菌30min。4冰箱保存。BB附录B (材料性附录)附录BB.1 75%乙醇的配制B.1.1 1/1000 DEPC水的配制DEPC1.0 mL蒸馏水999.0mL103k Pa高压蒸汽灭菌30min。4冰箱保存。B.1.2 75%乙醇的配制1/1000 DEPC水25.0 mL无水乙醇75.0mL_

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