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    染色体实验室质量控制.ppt

    • 资源ID:77652168       资源大小:31KB        全文页数:24页
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    染色体实验室质量控制.ppt

    染色体实验室质量控制一、室内质控:主要是培养基,常用试剂的室内质控。二、室间质控:定期与开展染色体检查的实验室合作,对同一血液标本进行实验对比,对 实验中的不足之处进行改进。一、室内质控1、外周血培养基质控程序 目的:新购买的培养基需要做预实验以检测培养基的质量,避免因试剂的质量而影响实验结果。操作程序:1)取新购买的培养基,接种新鲜的外周血标本,每个标本接种两瓶培养基,每瓶培养基中接种.。2)将接种好的培养基放入,培养箱中,培养。3)培养结束前小时,加秋水仙素处理。4)收获细胞。5)将收获的细胞沉淀配成细胞悬液进行滴片,滴好的片放入烘箱中,烘烤。6)胰酶消化,吉姆萨染色。7)将玻片烘干后镜检观察。注意事项:接种过程中注意无菌操作,以免细菌污染导致实验结果异常,影响对培养基质量的判断。2、秋水仙素质控程序目的:新购买的秋水仙素需要做预实验以检测秋水仙素的质量,避免因试剂的质量而影响实验结果。操作程序:1)取培养基,接种新鲜的外周血标本,每个标本接种两瓶培养基,每瓶培养基中接种.2)将接种好的培养基放入,培养箱中,培养。3)培养结束前小时,加新购买的秋水仙素处理。4)收获细胞。5)将收获的细胞沉淀配成细胞悬液进行滴片,滴好的片放入烘箱中,烘烤。6)胰酶消化,吉姆萨染色。7)将玻片烘干后镜检观察。注意事项:秋水仙素处理时要注意加入秋水仙素的量和作用时间。3、固定液质控程序目的:新购买的甲醇和乙酸需要做预实验以检测试剂的质量,避免因试剂的质量而影响实验结果。操作程序:在收获细胞的实验过程中使用新的固定液,制片后分析固定液的效果。1)按甲醇:乙酸=3:1比例配置固定液。2)预固定:加入固定液,固定5min。3)第一次固定:加入8ml固定液,固定30min。4)第二次固定:加入8ml固定液,固定30min。5)配置细胞悬液滴片,80烘烤3h。6)胰酶消化,吉姆萨染色。7)将玻片烘干后镜检观察。8)镜下观察细胞核型较多,染色体形态规则,分布均匀,条带清晰,则固定液效果良好,可以进行正常实验。4、胰胰酶质控程序控程序目的:新配置的胰酶需要做预实验以检测胰酶的质量,避免因试剂的质量而影响实验结果。操作程序:1)配置胰酶工作液(工作液浓度:42ml生理盐水+8ml0.25%胰酶储存液)2)配置吉姆萨染液(储存液用蒸馏水1:10稀释)3)将烘烤好的玻片用胰酶消化,吉姆萨染色。4)将玻片烘干后镜下观察5)镜下观察染色体形态规则,条带清晰,则胰酶效果良好,可以进行正常实验。吉姆吉姆萨染液染液质控程序控程序目的:新配置的吉姆萨染液需要做预实验以检测吉姆萨染液的效果,避免因试剂的质量而影响实验结果。操作程序:1)配置吉姆萨工作液:将吉姆萨染液储存液用蒸馏水1:10稀释。2)将经胰酶消化的玻片放入染缸中染色,一般染色3-5分钟。3)自来水冲洗干净后放入烤箱中烘干。4)镜下观察:细胞着色均匀,染色体的条带清晰,则染液的效果良好,可以进行正常实验。4、室内质控的失控处理在试剂的质控中,若发现试剂的使用效果不好,应重新配制,如果使用的是成品,应立即联系厂家更换产品,严重的要考虑更换厂家。对每一批新到的、新配制的试剂,都必须先做预实验,检测效果可以后才可以使用。二、室间质控为了检测本科室实验方法的准确性,可重复性,实验室必须定期与其它实验室进行室间质控。操作程序:1、随即选取本实验室的几份新鲜血液标本送检其它实验室,进行细胞培养,制片,G显带分析。2、本实验室同样对这几份标本进行细胞培养,制片,G显带分析。3、对每一份标本分析两个实验室的结果,从细胞的形态,染色体的形态,条带等各方面进行分析。4、通过室间质控定期检验本实验室的准确性。三、常见差错处理1、染色体检测的血液标本,都需肝素钠抗凝,如用其它抗凝剂抗凝,需通知相关人员予以重新采集标本,并在标本接收和报告单发放记录本及不合格标本登记本上记录存档;2、凡是待测定的血液标本有凝血的情况,应通知相关人员予以重新采集标本,并在标本接收和报告单发放记录本及不合格标本登记本上记录存档;3、凡是待测定的血液标本有血渗出的情况,应通知相关人员予以重新采集标本,并在标本接收和报告单发放记录本及不合格标本登记本上记录存档;4、染色体标本需严格无菌操作,采用经高温高压消毒的容器盛装,如标本送检不规范,应通知相关人予以重新采集标本,并在标本接收和报告单发放记录本及不合格标本登记本上记录存档;5、经查对标本的病人姓名、年龄、性别、住院号、床号、及检验号等不相符者,应通知相关人员予以重新采集标本,并在标本接收和报告单发放记录本及不合格标本登记本上记录存档。6、有的标本片,分裂相很多,但染色体“瘦小”,是不是培养液营养不良引起?淋巴细胞一定要在良好的营养环境中才能生长增殖,分裂相多,说明了淋巴细胞生长旺盛,染色体“瘦小”,是因为在制片过程中,染色体的蛋白结构发生异固缩造成的,起因可考虑为以下几个原因:秋水仙素浓度是否过高,或处理时间是否过长?加固定液的速度不要过快,有时瞬间的固定,会使蛋白结构产生固缩现象。固定液中的甲醇、冰醋酸是否有质量上的改变。可以适当加大固定液中的冰醋酸的比例,如甲醇冰醋酸7、为什么外周血培养过程中有时会出现凝血现象?在实验过程中下列原因可能会导致培养后的血液出现凝血现象:培养液中的PHA含量过高。培养液中的肝素使用量不足或效价下降。接种后,没有立即将外周血与培养液充分摇匀。8、为什么外周血培养有时会出现溶血情况?在实验过程中下列原因可能会导致培养后的外周血溶血:、细菌污染。、PHA和肝素过量。、外周血样品不新鲜。9、为什么有个别样品出现不明原因的无分裂相的现象?由于有个别病人可能服用过抑制白细胞分裂增殖的药品(如白血病病人),这类病人的样品往往经培养后,白细胞仍受到药物抑制而不进行分裂增殖,因此标本片很难找到分裂相,建议停药一个月以上再作染色体检查。

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