p53-EGFP表达载体的构建及其对A549的影响.docx
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1、p53-EGFP表达载体的构建及其对A549的影响 摘 要:构建具有EGFP标签的抑癌基因p53表达载体,并验证其对肺癌细胞A549的影响。以质粒pcDNA3.1-p53为模板,设计引物并进行PCR扩增获得目的基因p53,将获得的目的基因克隆至载体pcDNA3.1-EGFP上,用琼脂糖凝胶电泳检测目的条带,双酶切以及测序验证。将克隆好的载体,利用脂质体法转染A549细胞,荧光显微镜下视察,同时用MTT法测不同时间段细胞OD值。结果表明,琼脂糖凝胶电泳结果显示,目的基因扩增胜利。双酶切及DNA测序结果均证明,胜利构建了载体pcDNA3.1-EGFP-p53。转染A549细胞后,荧光显微镜下视察到
2、绿色荧光。MTT法测定结果表明,目的基因转染的A549细胞组所测得的OD值明显低于比照组。因此,具有EGFP标签的抑癌基因p53表达载体pcDNA3.1-EGFP-p53构建胜利,转染A549细胞后,对A549细胞具有肯定抑制作用。为后续接着探讨p53-MDM2 生物发光能量共振转移作用奠定了基础。 关键词:EGFP;抑癌基因;p53;表达载体;A549细胞 中图分类号:Q786 文献标识码:A 文章编号:1018-045701-0001-05 国际DOI编码:10.15958/ki.sdnyswxb.2022.01.001 肿瘤被作为多基因疾病,假如限制细胞分化的基因发生缺陷或变异,就会导致
3、生长调整的失控,加上一连串的变异,包括失去修补基因错误的功能以及逃离监控错误的机制,形成失去秩序的组织等1,这些基因可为肿瘤基因,也可为肿瘤抑制基因。探讨发觉,与人类肿瘤相关性最高的肿瘤抑制基因是p53基因,超过50%的癌症发生与其相关2,因其编码一种分子质量大约为53KDa的蛋白质而得名,在DNA转录、细胞生长和增殖以及很多代谢过程中有重要作用,能够有效地对抗组织增生,促进细胞凋亡,具有维持基因组稳定、抑制或阻挡细胞转化的功能,从而抑制肿瘤的发生3。 p53位于人体17号染色体上,包含了11个外显子和10个内含子,序列长度大约为20 kb4,它编码的p53蛋白含有393个氨基酸残基,即被11
4、82 bp基因序列编码合成。张兆新等5利用EGFP荧光报告表达载体构建了BRET模型,从而筛选出抑制p53-MDM2结合的小分子化合物,为治疗肿瘤找寻了可能。本文通过将p53抑癌基因克隆至含EGFP的荧光报告基因表达载体上,并将其转染至肺癌细胞A549中,视察其是否荧光表达及其对A549细胞的影响,为后续探讨p53-MDM2互作BRET模型,筛选出具有抗肿瘤作用的小分子抑制剂奠定了重要基础。 1 材料与方法 1.1 质粒、菌株和细胞 pcDNA3.1-p53、pcDNA3.1-EGFP质粒以及大肠杆菌Dh5 均由本试验保存。肺癌细胞 A549购于中国昆明细胞库,细胞培育液为添加了10%胎牛血清
5、、1%青链霉素混合液以及1%谷氨酰胺的RPIM1640 培育基。 1.2 主要试剂 DNA限制性内切酶、DNA连接酶购自Takara公司;DNA胶回收试剂盒购自四川成都福际生物有限公司;质粒小提取试剂盒购于天根生物;去内毒素养粒中提试剂盒购自OMEGA;LipofectamineTM 3000转染试剂、Taq DNA聚合酶、dNTP购自Takara公司;RIPM1640培育基购自Gibico公司。其余试剂均为国产分析纯。 1.3 主要仪器 PCR扩增仪、稳压电泳仪及电泳槽;超低温高速离心机;CO2 培育箱;倒置荧光显微镜;微波炉;多功能酶标仪;超净工作台等。 1.4 引物设计与合成 依据NCB
6、I中p53基因序列,应用Primer Premier 5.0软件设计特异性引物,5端分别添加Hind 和BamH酶切位点,由上海英骏公司合成。 上游引物:5-CCCAAGCTTATGGAGGAGCCGCAGTCAGAT 下游引物:5-CGCGGATCCTCAGTCTGAGTCAGGCCCTTCTG 。 1.5 pcDNA3.1-EGFP-p53表达载体构建 获得目的基因:利用质粒小提取試剂盒对含pcDNA3.1-p53菌液进行质粒提取,以此质粒作为PCR扩增模板。扩增体系为:模板DNA10 M,上下游引物各2 L,2Phanta Max Master Mix 25 L,ddH2O补至50 L;
7、反应程序:95预变性30 s;95变性15 s,63退火15 s,73延长60 s,34次循环;73彻底延长5 min,终止反应。 基因克隆:胶回收纯化PCR产物,用Takara快切酶进行双酶切,再次胶回,得到最终连接所需目的基因产物,并将其克隆到载体pcDNA3.1-EGFP上。根据以下体系进行连接反应:10ligation buffer 2 L,载体DNA 50 ng,目的基因p53,T4 DNA Ligase1 L,灭菌水补至20 L,4过夜反应,取部分连接液进行转化。挑取单菌落进行液体培育基扩大培育后菌落PCR和提取质粒双酶切验证,得到阳性克隆菌液送至上海英骏公司进行测序。 1.6 利
8、用脂质体法将pcDNA3.1-EGFP-p53质粒转染A549细胞 采纳LipofectamineTM 3000法转染真核细胞A549,该方法避开了后续细胞培育须要更换无血清培育基。按试剂盒操作说明书进行,转染前用胰酶消化细胞,用适量完全培育基按2.5105个细胞/孔的密度平铺于6孔板,置于含有5%CO237的细胞培育箱中进行培育,待细胞至73%90%汇合度时转染。将6孔板分为三组,分别是空白比照组、阴性比照组、试验组。转染完成后24 h起先在荧光显微镜下视察各组荧光状况6。 1.7 MTT法检测pcDNA3.1-EGFP-p53质粒转染A549细胞12 h,24 h,36 h,48 h,60
9、 h,73 h后的影响 复苏培育A549细胞,保持细胞状态良好;接种细胞5104个/孔密度于24孔板中,每孔加入400 L,按上面的方法分为三个试验组,至73%90%汇合度时转染;参照LipofectamineTM 3000操作说明和要求进行转染试验;分别在转染12 h,24 h,36 h,48 h,60 h,73 h后,每孔加入50 LMTT溶液,接着培育4h后,在显微镜下视察到结晶体,弃掉上清液,加入400 L DMSO溶液;37摇床上缓慢摇10 min,待晶体溶解;试验组和比照组每孔分三个,分装到96孔板的小孔里,运用酶标仪,在490 nm 处检测吸光度6。 1.8 统计学处理 采纳 S
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- p53 EGFP 表达 载体 构建 及其 A549 影响
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