家兔失血性休克实验报告(共5页).doc
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1、精选优质文档-倾情为你奉上病理生理实验报告 家兔失血性休克83 潘晴【实验目的】1、了解失血性休克动物模型的复制方法并复制失血性休克的动物模型;2、观察失血性休克时和抢救休克时动物的功能代谢变化及微循环改变;3、了解失血性休克的治疗,探讨失血性休克的发病机理及救治措施。【实验原理】休克是多种原因引起的,以机体急性微循环障碍为主要特征,并可导致器官功能衰竭等严重后果的全身性病理过程。失血导致血容量减少,是休克常见的病因。休克的发生与否取决于失血量和失血速度,当血量锐减(如外伤出血、胃十二指肠溃疡出血或食管静脉曲张出血)超过总血量的20%以上时,极易导致急性循环障碍,组织有效血液灌流量不足,即休克
2、的发生。根据休克过程中微循环的改变,将休克分为三期:休克早期(微循环缺血期或缺血性缺氧期);休克期(微循环淤血期或淤血性缺氧期);休克晚期(微循环衰竭期或DIC期)。但依失血程度及快慢的不同,各期持续时间、病理生理改变和临床表现均有所不同。对失血性休克的治疗,首先强调的是止血和补充血容量,以提高有效循环血量、心排血量,改善组织灌流;其次根据休克的不同发展阶段合理应用血管活性药物,改善微循环状态。【实验对象】家兔【实验器材】BL-420生物机能实验系统 手术器械、输液装置、尿量测定装置、量筒、注射器、针头、20%乌拉坦、1%肝素、1%NA、生理盐水。【观察指标】动脉血压(BP) mmHg中心静脉
3、压(CVP) cmH2O呼吸(R) 频率、幅度尿量(U) ml/10min【实验步骤】1、 称重麻醉:(乌拉坦5ml/kg);2、 固定备皮: 仰卧固定,颈部和腹部剪毛备皮;3、 血管分离: 颈部正中切口,分离右侧颈外V和左侧颈总A ,穿双线备用;4、 荷包缝合: 切口部位:下腹部耻骨联合上方3-5cm内,正中切口;5、 肝素抗凝:(耳缘V,1ml/kg)排净空气,尽量靠近远心端,回抽有血;了6、 血管插管: 结扎远心端,夹闭近心端,仅先后顺序不同;7、 呼吸装置: 胸腹部正中皮肤呼吸最明显处,穿单线固定,并连于张力传感器;8、 0.01%AD(0.2ml) 第一次记录9、 复制休克(40mm
4、Hg,30min) 第二次记录10、注射NA(耳缘注射,1ml/kg) 第三次记录11、静脉补液(4060滴/分) 第四次记录【注意事项】1、麻醉深浅要适度,麻醉过浅,动物疼痛,可致神经源性休克;过深则抑制呼吸。2、牵拉肠袢要轻,以免引起创伤性休克。3、动、静脉导管,事先用肝素充盈,排除空气。导管插入后,再推入少量的肝素抗凝,防止导管前端堵塞;静脉导管插入后可缓慢滴注生理盐水保持管道通畅。放血后也应及时往动脉导管内推注肝素。4、血管插管时,结扎远心端,夹闭近心端,仅先后顺序不同:颈外V:先夹闭近心端,后结扎远心端,插入4-5cm;颈总A:先结扎远心端,后夹闭近心端,插入2-4cm。剪口部位尽量
5、靠近远心端,成45度角朝向近心端剪开小口,约为管径的1/3-2/3,插管方向朝向近心端。5、输液时应注意三通管的使用,输液装置只能单向与静脉导管相通,不能在输液的同时测中心静脉压。要观察中心静脉压时,需关闭输液通道,使换能器与静脉导管单向相通。6、第一次实验记录:动物稳定10min后,记录正常状态下;7、第二次实验记录:颈总A插管的三通开关处断续放血, 血压维持于40mmHg 左右20-30min,建立失血性休克模型。每放血10ml即关闭开关,监测BP变化;血压维持于40mmHg时, 观察并记录上述指标变化(重点记录BP上升的最高值及变化时间)。8、第三次实验记录:休克动物的抢救措施一:耳缘V
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