植物组织培养校本教材(共10页).doc
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1、精选优质文档-倾情为你奉上植物组织培养目录一.植物组织培养综述1.1概念1.2 研究历史1.3技术原理1.4培养特点二. 实验实施预先准备2.1培养基贮备液配制2.2各种植物激素配制2.3各种培养基配制和灭菌三、植物组织培养过程3.1接种过程3.2试管苗的培养3.2.1丛生芽诱导培养3.2.2继代增殖培养3.2.3生根诱导培养3.2.4 移栽定植植物组织培养一.植物组织培养综述1.1概念植物的组织培养广义又叫离体培养,指从植物体分离出符合需要的组织、器官或细胞、等,通过无菌操作,在人工控制条件下进行培养以获得再生的完整或生产具有经济价值的其他产品的技术。狭义组织培养是指用植物各部分组织,如形成
2、层、薄壁组织、叶肉组织、胚乳等进行培养获得植株,也指在培养过程中从各器官上产生愈伤组织,愈伤组织再经过再分化形成再生植物。1.2 研究历史19世纪30年代,德国家施莱登和德国动物学家施旺创立了细胞学说,根据这一学说,如果给细胞提供和生物体内一样的条件,每个细胞都应该能够独立生活;1902年,德国植物学家哈伯兰特的理论是的理论基础。1958年,一个振奋人心的消息从传向世界各地,美国植物学家斯等人,用的细胞进行培养,终于得到了完整,并且这一植株能够开花结果,证实了哈伯兰特在五十多年前关于细胞全能的预言。近几十年来植物组织培养技术已经发展成为一项新兴无性繁殖技术。1.3技术原理植物组织培养即植物无菌
3、培养技术,又称离体培养,是根据植物细胞具有全能性的理论,利用植物体离体的器官(如根、茎、叶、茎尖、花、果实等)、组织(如形成层、表皮、皮层、髓部细胞、胚乳等)或细胞(如大孢子、小孢子、体细胞等)以及,在无菌和适宜的人工培养基及温度等人工条件下,能诱导出愈伤组织、不定芽、不定根,最后形成完整的植株。 1.4培养特点1.4.1培养条件可以人为控制采用的植物材料完全是在人为提供的培养基和小气候环境条件下进行生长,摆脱了大自然中四季、昼夜的变化以及灾害性气候的不利影响,且条件均一,对植物生长极为有利,便于稳定地进行周年培养生产。 1.4.2生长周期短,繁殖率高组培是由于人为控制培养条件,根据不同植物不
4、同部位的不同要求而提供不同的培养条件,因此生长较快。另外,植株也比较小,往往20-30天为一个周期。所以,虽然需要一定设备及能源消耗,但由于植物材料能按繁殖生产,故总体来说成本低廉,且能及时提供规格一致的优质种苗或脱病毒种苗。1.4.3管理方便,利于工厂化生产和自动化控制植物组织培养是在一定的场所和环境下,人为提供一定的温度、光照、湿度、营养、激素等条件,极利于高度集约化和高密度工厂化生产,也利于自动化控制生产。它是未来农业工厂化育苗的发展方向。它与盆栽、田间栽培等相比省去了中耕除草、浇水施肥、防治病虫等一系列繁杂劳动,可以大大节省人力、物力及田间种植所需要的土地。二.实验实施预先准备2.1培
5、养基贮备液配制2.1.1培养基简述培养基是植物组织培养中离体植物材料赖以生存的“土壤”。不同组织培养类型、外植体需要的培养基配方不同,组织培养是否成功,培养基的选择具有重要作用。目前常用的培养基有MS、B5、White等。无论何种培养基,都由矿物营养、维生素、碳源、植物激素、有机附加物等无类物质组成。在植物组织培养中应该培养植物的种类和部位,选择最适的培养基,才能获得植物组织培养的成功。本实验以MS为基本培养基。2.1.2 仪器试剂仪器和用具分析天平、恒温水浴锅、电炉、量筒、移液管、烧杯、容量瓶、试剂瓶等试剂MS培养基、植物激素BA、植物激素NAA2.1.3步骤1)根据扩大倍数和配制母液量计算
6、每种化合物称取量;2)称取大量元素化合物,分别溶解后顺次逐个加入并混合,加水定容止所需体积;3)称取微量元素化合物,分别溶解后顺次逐个加入并混合,加水定容止所需体积;4)称取FeSo4 .7H2O和Na2EDTA,分别溶解后混合,加水定容止所需体积;5)称取各种维生素和氨基酸,分别溶解后混合,加水定容止所需体积;6)称取25mgBA先溶解于1mol/L HCL中,再加水定容至25ml(1mg/ml);7)称取25mgNAA,用NaOH溶解后再加水定容至25ml(1mg/ml)。附表:MS培养基母液配制表2.1.4注意事项1)注意大量元素母液配制的程序: 除钙盐外,其他大量元素分别称量并按顺序融
7、于蒸馏水中,钙盐单独配置,组合混合后,用蒸馏水定容;2)微量元素母液配制的小窍门:因其用量小,为称量方便及精确起见常配置成100或1000倍母液;3)注意不同母液的储存方法:激素母液装入棕色试剂瓶中,铁盐,有机母液,激素母液放于4度冰箱中,大量元素和微量元素母液常温下保存于柜子中,NaOH瓶子的瓶塞上应缠一圈纸。2.2各种植物激素配制2.2.1植物激素配制方法总结原则植物激素:每种激素必须单独配制成母液,浓度为0.1mg/ml,0.5mg/ml,1.0mg/ml,激素浓度的表示方法多种,ppm(mg/L)、mol/L、mg/ml,用时根据需要取用。l 可高压灭菌: IBA,NAA ,6-BA,
8、2,4-D;、KTl 不可高压灭菌:ZT、2-IP 、IAA,GA3l 配制生长素类,例如IAA、NAA、2.4-D、IBA,应先用少量95%乙醇或无水乙醇充分溶解,或者用1mol/L的NaOH溶解,然后用蒸馏水定容到一定的浓度。l 细胞分裂素,例如KT,应先用少量95%乙醇或无水乙醇加34滴1mol/L的盐酸溶解,再用蒸馏水定容。l 配制生物素,用稀氨水溶解,然后定容。配制方法除菌方式母液浓度生长素IBA(3-吲哚丁酸)用适量无水乙醇或1M NaOH彻底溶解后,再缓慢加入水定容到一定浓度。除菌方式:与培养基高压共灭菌。0.2g/LIAA(3-吲哚乙酸)用适量无水乙醇或1M NaOH彻底溶解后
9、,再缓慢加入水定容到一定浓度。除菌方式:抽滤除菌。0.2g/L-NAA( a-萘乙酸)可用1M NaOH彻底溶解后,再加水定溶到一定浓度。除菌方式:与培养基高压共灭菌。0.2g/L2,4-D(2,4-二氯苯氧乙酸)用无水乙醇或1M NaOH彻底溶解后,再加水定容至一定浓度。除菌方式:与培养基高压共灭菌。0.2g/L细胞分裂素KT(激动素 6-糖氨基嘌呤)和6-BA(6-苄氨基嘌呤)先溶于少量1M NaOH中,再加水定容。除菌方式:与培养基高压共灭菌。0.2g/LZT(反式玉米素)先溶于适量1M NaOH中,再加水至一定浓度。除菌方式:抽滤除菌。(反式玉米素是天然酶)0.1g/L2-ip可用少量
10、1M NaOH溶解后,再加水定容至一定浓度。除菌方式:抽滤除菌。0.2g/L赤霉素GA3先溶于适量无水乙醇中,再加水定容到一定浓度。除菌方式:抽滤除菌。0.2g/L脱落酸ABA(脱落酸)可用少量1M NaOH溶解后,再加水定容至一定浓度。除菌方式:与培养基高压共灭菌。0.2g/L2.2.2植物组培中,有些植物激素不能加入培养基中随之高压蒸汽灭菌,那么这些激素该如何加入培养皿中?过滤灭菌后,在无菌条件下将其加入到高压灭菌后的温度下降到约50至60度的未凝固的培养基中,或者适当加热(如5070C水浴加热)使之溶解后的培养基中,摇匀,待培养基冷却凝固再接种培养物。 2.3各种培养基配制和灭菌2.3.
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