4小时51Cr释放法检测CMC活性(共6页).doc

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1、精选优质文档-倾情为你奉上4小时51Cr释放法检测CMC活性 4小时51Cr释放法检测CMC活性 一、用51Cr铬酸钠标记靶细胞短期标记法1用RPMI-1640培养液洗涤107靶细胞，去上清液。用0.5ml不含碳酸氢钠的完全培养液悬浮细胞。加入100Ci（3.7MBq）51Cr铬酸钠，37水浴中标记1小时，每510分钟摇晃一次，混匀细胞。2如上用RPMI-1640培养液洗涤细胞3次，每次400g 10分钟。用50ml RPMI-1640培养液悬浮细胞，置37水浴30分钟，以减少非特异的自然释放。3离心200g 10分钟，去上清液。小心用RPMI-1640培养液悬浮细胞，尽量减少振荡引起的细胞损

2、伤以降低靶细胞的自然释放率，将细胞浓度调整为0.5105或1105/ml备用。 二、4小时51Cr释放实验1在96孔圆底细胞培养板中加入51Cr标记的靶细胞，每孔加100l。2向各孔加100l效应细胞，效应细胞与靶细胞的比例（效靶比，E：T）根据要求而定，通常为5：120：1。阴性对照孔（自然释放）不加效应细胞只加100l完全培养液，阳性对照孔（最大释放）中加1001NP40（或2SDS，1mol/L盐酸）。每个实验置三个复孔。 3稍稍离心（100g 3分钟）后，置37 5 CO2的二氧化碳培养箱中培养4小时。4离心培养板200g 10分钟，每孔吸出100l上清液置一次性使用的检测管中，在计数

3、仪上（或液闪计数仪上）测定上清液中的每分钟放射性活性（cpm值）。 3）特异性杀伤活性的计算1用细胞毒性百分比表示：细胞毒性（）（实验组cpm自然释放组cpm）/（最大释放组cpm自然释放组cpm）1002用溶解单位（lytic unit，LU）表示：一个LU是指能溶解一定数量靶细胞的效应细胞数。通常将能溶解30靶细胞的效应细胞数定位一个LU。结果以106个效应细胞所具有的LU数表示：LU30/106细胞106/（E：T30）（每孔靶细胞数） E：T30是该效靶比时效应细胞能杀伤30靶细胞 51Cr释放试验测定NK细胞活性 【基本原理】Na251CrO4能进入到增殖的细胞内，与细胞浆蛋白质牢固

4、地结合。当标记的51Cr细胞受到损伤或死亡之后，即可释放出51Cr。51Cr辐射射线，通过测定受损伤或死亡靶细胞释放到上清中的51Cr，即可计算出NK细胞活性。【试剂及材料】（1） 铬酸钠（Na251CrO4）: 51Cr的物理半寿期为27.72d。（2） 十二烷基硫酸钠（SDS）:用无菌生理盐水配制成2浓度。（3） 靶细胞:检测人的NK细胞活性常用的靶细胞为体外传代细胞株K562。检测小鼠NK细胞活性常用的靶细胞是YAC-1细胞株。实验时一般采用2448h培养的靶细胞。（4） 效应细胞:从人外周血（肝素抗凝）分离的单个核细胞或小鼠脾细胞。（5） 含15NCS的RPMI-1640营养液及淋巴细

5、胞分层液等。 【操作方法】（1） 靶细胞的制备:取培养2448h的靶细胞2106/0.5ml，加入100200ci51Cr，置37水浴90min，每间隔15min振摇一次。然后用含5NCS的RPMI-1640培养液洗涤三次，除去游离的51Cr。计数活细胞，用完全RPMI-1640培养液调整细胞浓度至1105/ml，如暂时不用，可放置4冰箱内保存。同时应检测细胞的51Cr标记率，一般要求标记率0.1cpm/细胞；（2） 效应细胞的制备:常规方法分离PBMC或小鼠脾细胞，用完全RPMI-1640培养液配制成1107/ml的细胞悬液备用；（3） 效靶细胞作用:在无菌操作条件下，取效应细胞和靶细胞各0

6、.1ml（E/T=100:1），加入96孔培养板内，每份标本做3复孔。同时设自然释放对照孔（0.1ml靶细胞+0.1ml完全RPMI-1640培养液）和最大释放孔（0.1ml靶细胞+0.1m l2SDS），放置37、5CO2温箱内孵育4h，取出后用微量移液器吸出各孔上清0.1ml，加于小塑料试管内（勿将细胞吸出），用计数仪测量cpm值；（4） 结果计算:根据下式计算51Cr自然释放率和NK细胞活性: 自然释放对照孔cpm均值 51Cr自然释放率（）= 100 最大释放对照孔cpm均值 试验孔cpm均值-自然释放对照孔cpm均值 NK细胞活性（）= 100 最大释放对照孔cpm均值 注：一般要求

7、51Cr自然释放率10流式细胞仪检测细胞凋亡Annexin V/PI双染色法 BIOX.CN 2005-8-12 18:19:22 来源：生命经纬 基本原理细胞凋亡早期改变发生在细胞膜表面，目前早期识别仍有困难。这些细胞膜表面的改变之一是磷脂酰丝氨酸（PS）从细胞膜内转移到细胞膜外，使PS暴露在细胞膜外表面。PS是一种带负电荷的磷脂，正常主要存在于细胞膜的内面，在细胞发生凋亡时细胞膜上的这种磷脂分布的不对称性被破坏而使PS暴露在细胞膜外。Annexin V是一种Ca+依赖的磷脂结合蛋白，最初发现是一种具有很强的抗凝血特性的血管蛋白，Annexin V具有易于结合到磷脂类如PS的特性。对PS有高

8、度的亲和性。因此，该蛋白可充当一敏感的探针检测暴露在细胞膜表面的PS。PS转移到细胞膜外不是凋亡所独特的，也可发生在细胞坏死中。两种细胞死亡方式间的差别是在凋亡的初始阶段细胞膜是完好的，而细胞坏死在其早期阶段细胞膜的完整性就破坏了。因此，可以建立一种用Annexin V结合在细胞膜表面作为凋亡的指示并结合一种染料排除试验以检测细胞膜的完整性的检测方法。试剂与仪器l 孵育缓冲液：10mmol/L HEPES/NaOH，PH 7.4，140mmol/L NaCl，5mmol/L CaCl2l 标记液：将FITC- Annexin V（宝灵曼公司产品）和PI加入到孵育缓冲液中，终浓度均为1ug/ml

9、l 流式细胞仪实验步骤1. 细胞收集：悬浮细胞直接收集到10ml的离心管中，每样本细胞数为（15）106，/mL5001000r/min离心5min，弃去培养液。2. 用孵育缓冲液洗涤1次，5001000r/min离心5min。3. 用100ul的标记溶液重悬细胞，室温下避光孵育1015min。4. 5001000r/min离心5min沉淀细胞孵育缓冲液洗1次。5. 加入荧光（SA-FLOUS）溶液4下孵育20min，避光并不时振动。6. 流式细胞仪分析：流式细胞仪激发光波长用488nm，用一波长为515nm的通带滤器检测FITC荧光，另一波长大于560nm的滤器检测PI。7. 结果判断：凋亡

10、细胞对所有用于细胞活性鉴定的染料如PI有抗染性，坏死细胞则不能。细胞膜有损伤的细胞的DNA可被PI着染产生红色荧光，而细胞膜保持完好的细胞则不会有红色荧光产生。因此，在细胞凋亡的早期PI不会着染而没有红色荧光信号。正常活细胞与此相似。在双变量流式细胞仪的散点图上，左下象限显示活细胞，为（FITC-/PI-）；右上象限是非活细胞，即坏死细胞，为（FITC+/PI+）；而右下象限为凋亡细胞，显现（FITC+/PI-）。 流式细胞仪检测细胞凋亡Heochst 33342/PI双染色法 BIOX.CN 2005-8-12 18:17:40 来源：生命经纬 基本原理经固定的凋亡细胞其染色体荧光染料的DN

11、A可染性性下降。细胞一经固定就不再是活细胞，而且细胞固定过程对细胞膜的通透性也有影响。因此发展了用“细胞活性”鉴定染料染色的流式细胞仪检测方法。这些方法细胞不经固定就直接用DNA染料染色，且染料的浓度要比固定细胞所用的浓度要低得多。流式细胞仪通常根据细胞膜完整性将细胞分为“活细胞”和“死细胞”，因此正常细胞和凋亡细胞归为活细胞。活细胞染料如Hoechst 33342能少许进入正常细胞膜而对细胞没有太大得细胞毒作用。Hoechst 33342在凋亡细胞中的荧光强度要比正常细胞中要高，Hoechst 33342在凋亡细胞中的荧光强度增高的机制与凋亡细胞膜通透性发生改变有关，凋亡细胞早期细胞膜的完整

12、性没有明显性改变，但细胞膜的通透性已有增强，因此进入凋亡细胞中的Hoechst 33342比正常细胞的多。此外，还与凋亡细胞的染色体DNA的结构发生了改变从而使该染料能更有效地与DNA结合以及凋亡细胞膜上的p-糖蛋白泵功能受到损伤不能有效地将Hoechst 33342排出到细胞外使之在细胞内积累增加等有关。既然Hoechst 33342进入凋亡细胞中比正常细胞更容易，而EB、PI或7-AAD等染料是不能进入细胞膜完整的活细胞中，即正常细胞和凋亡细胞在不经固定的情况下对这些染料是拒染，坏死细胞由于膜完整性在早期即已破损，可被这些染料染色。根据这些特性，用Hoechst 33342结合PI或EB等

13、染料对凋亡细胞进行双染色，就可在流式细胞仪上将正常细胞、凋亡细胞和坏死细胞区别开来。在双变量流式细胞仪的散点图上，这三群细胞表现分别为：正常细胞为低蓝色/低红色（Hoechst 33342+/PI+），凋亡细胞为高蓝色/低红色（Hoechst 33342+/PI+），坏死细胞为低蓝色/高红色（Hoechst 33342+/PI+）。试剂与仪器l Heochst 33342 染液：用PBS配成10ug/ml的储存液浓度，4避光保存；l PI染液 ：用PBS配成5ug/ml浓度，4避光保存。l 400目的筛网l 流式细胞仪实验步骤1. 悬浮生长的细胞在培养的状态下加入Heochst 33342 ，

14、终浓度为1ug/ml； 37孵育710min。2. 低温500 1000r/min离心5min弃去染液。3. 加入1.0ml PI染液，4避光染色15min。4. 400目的筛网过滤1次。5. 流式细胞仪分析：Heochst 33342用氪激光激发的紫外线荧光，激发光波波长为352nm，发射光波波长为400 500nm，产生兰色荧光；PI用氩离子激光激发荧光，激发光波波长为488nm，发射光波波长大于630nm，产生红色荧光。分析兰色荧光对红色荧光的散点图或地形图。6. 结果判断：在兰色荧光对红色荧光的散点图上，结果为：正常细胞为低蓝光/低红光，凋亡细胞为高蓝光/低红光，坏死细胞为低蓝光/高红

15、光。注意事项1. 在红色荧光对兰色荧光散点图上，还可见到细胞凋亡区向细胞坏死区迁移的轨迹，可能是凋亡细胞的DNA进一步降解的缘故。2. 用Heochst 33342染料与细胞孵育的时间不宜过长，一般控制在20min之内为宜。如果太长可引起Heochst 33342的发射光谱由蓝光向红光的迁移，导致红色荧光与兰色荧光的比例改变，从而影响结果的判断。流式细胞仪检测细胞凋亡PI单染色法 BIOX.CN 2005-8-12 18:15:45 来源：生命经纬 基本原理其原理主要是根据细胞凋亡时在细胞、亚细胞和分子水平上所发生的特征性改变。这些改变包括细胞核的改变、细胞器的改变、细胞膜成分的改变和细胞形态

16、的改变等，其中细胞核的改变最具特征性，主要包括以下几个方面：1. 细胞核的改变：由于凋亡细胞核的改变，造成各种染色体荧光染料对凋亡细胞DNA可染性发生改变。研究表明，用各种染色体荧光染料对经固定的凋亡细胞进行染色，其DNA可染性降低。许多学者把这种DNA可染性的降低认为是凋亡细胞的标志之一。2. 光散射特性：凋亡细胞形态上的改变影响它们的光散射特性。在流式细胞仪上，前散射光与细胞的大小有关，而侧散射光反映的是光在细胞内的折射作用，与细胞内的颗粒多少有关。在细胞凋亡时，细胞固缩，体积变小，故前散射光降低，这一特性往往被认为是凋亡细胞的特点之一。此外细胞凋亡时由于染色体降解，核破裂形成，细胞内颗粒

17、往往增多，故凋亡细胞侧散射光常增加。细胞坏死时，由于细胞肿胀，其前散射光增大；侧散射光在细胞坏死时也增大，因此可根据前散射光和侧散射光区别凋亡细胞和坏死细胞。但需要注意的是，根据前散射光和侧散射光判断凋亡细胞的可靠性受被检测细胞形态上的均一性和核胞浆比率影响很大。因此在某些淋巴细胞凋亡中，用光散射特性检测凋亡的可靠性较好，而在肿瘤细胞凋亡中，其可靠性就较差。根据光散射特性检测凋亡细胞最主要的优点是可以将光散射特性与细胞的表面免疫荧光分析结合起来，用以区别经这些特殊处理发生选择性凋亡的淋巴细胞亚型。也可用于活细胞的分类。试剂与仪器l PBS溶液；l PI染液：将PI溶于PBS（pH7.4）中，终

18、浓度为100ug/ml。用棕色瓶4避光保存。l 70%乙醇l 400目筛网l 流式细胞仪实验步骤1. 收集细胞数目约（1 5）106个/mL，500 1000 r/min离心5min，弃去培养液。2. 3mlPBS洗涤1次。3. 离心去PBS，加入冰预冷的70%的乙醇固定，4，12小时。4. 离心弃去固定液，3mlPBS重悬5min。5. 400目的筛网过滤1次，5001000r/min离心5min，弃去PBS。6. 用1mlPI染液染色，4避光30min。7. 流式细胞仪检测：PI用氩离子激发荧光，激光光波波长为488nm，发射光波波长大于630nm，产生红色荧光分析PI荧光强度的直方图也可

19、分析前散射光对侧散射光的散点图。8. 结果判断：在前散射光对侧散射光的散点图或地形图上，凋亡细胞与正常细胞相比，前散射光降低，而侧散射光可高可低，与细胞的类型有关；在分析PI荧光的直方图时，先用门技术排除成双或聚集的细胞以及发微弱荧光的细胞碎片，在PI荧光的直方图上，凋亡细胞在G1/G0期前出现一亚二倍体峰。如以G1/G0期所在位置的荧光强度为1.0，则一个典型的凋亡细胞样本其亚二倍体峰的荧光强度为0.45，可用鸡和鲑鱼的红细胞的PI荧光强度做参照标准，两者分别为0.35和0.7，可以确保在两者之间的不是细胞碎片而是完整的细胞。注意事项细胞凋亡时，其DNA可染性降低被认为是凋亡细胞的标志之一，但这种DNA可染性降低也可能是因为DNA含量的降低，或者是因为DNA结构的改变使其与染料结合的能力发生改变所致。在分析结果时应该注意。专心-专注-专业