线粒体凋亡途径在亚硒酸钠诱导人胃癌sgc--7901细胞凋亡中的作用.pdf
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1、II ll IIlllll IIIll0分类号: WF2809093学号:201001 1IYFlllll2flI JIl4IJl!14Jfllllloll,119jlf Jll9lH3, 泰山医亏霞硕士学位论文论文题目:线粒体凋亡途径在亚硒酸钠诱导人胃癌SGC一7901细胞凋亡中的作用作者 姓 名:王艳学 科、专 业:人体解剖与组织胚胎学学 位 类 型:科学学位型研 究 方 向:肿瘤分子生物学指 导 教 师:苏衍萍教授入 学 时 问:2010月9月论文工作起止时间:2011年10月-2013年4月中文摘要英文摘要目 录13符争说明一6前言材料与7综j盎致谢原创性声明54线粒体凋亡途径在亚硒酸
2、钠诱导人胃癌SGC一7901细胞凋亡中的作用 IllllJlllHlJllllllMlllllllUlillY2440993研究生:王艳专业:人体解剖与组织胚胎学导师:苏衍萍教授中文摘要目的研究亚硒酸钠诱导人胃癌SGC一7901细胞株凋亡过程中线粒体膜电位的变化、线粒体c皿的释放和BaxBel-2表达,探讨线粒体凋亡途径在亚硒酸钠诱导胃癌SGC-7901细胞凋亡中的作用。方法人胃癌SGC7901细胞株分为空白对照组、25、50、100 u molL亚硒酸钠组,各浓度亚硒酸钠作用24h、48h后,罗丹明123荧光探针染色后流式细胞技术检测线粒体膜电位的变化;免疫细胞化学SABC法检测亚硒酸钠对C
3、ytc分布、BaxBcl-2表达的影响;Western blot印迹法检测亚硒酸钠对细胞质Cytc和线粒体Cytc、BaxBcl-2蛋白含量的影响。结果流式细胞技术检测线粒体膜电位的变化结果显示:24h、48h随着亚硒酸钠浓度的增加,线粒体膜电位逐渐降低(P50IU停止。研磨完成后将细胞匀浆物转移至离心管,4C,800g离心5分钟,细胞核、大的细胞碎片、未裂解的细胞等沉在管底。在另一个新的预冷的离心管中预先加入04ml Medium Buffer,将匀浆后的上清04ml(MediumBuffer:上清液体积=l:1)沿管壁小心加入该离心管中,覆盖于MediumBuffer的上层。4C,1500
4、0Xg离心10分钟。离心后的上清为细胞质蛋白,将上清转移至新的离心管,线粒体沉淀在管底。在线粒体中加入01ml Wash Buffer重悬线粒体,4,15000Xg离心10分钟,弃上清。在每毫升Lysis Buffer2中加入10 u L磷酸酶抑制剂,1 p L蛋白酶抑制剂,5p L 100mMPMSF,混匀后冰上保存数分钟待用。每20 p L线粒体压积中加入100 p L配好的冷的Lysis Buffer2,置于4C温和震荡15分钟。4C,14000rpm离一th,15分钟,上清为线粒体蛋白提取物。加入4上样缓冲液煮沸后,放置室温,置于一20冰箱中保存备用。避免反复冻融。SDSPAGE电泳时
5、由于CytC分子量较小,所以选用分离胶的浓度为12,配制方法为:双蒸水3400u1+4分离胶缓冲液2500u1+30丙烯酰胺4000ul+10过硫酸铵100ul+TEMEDSul。9统计学处理选用SPSSl30软件进行统计学处理,计量资料以均数标准差(is)表示,采用单因素方差分析,组间两两比较采用SNK-q检验等方法进行统计学分析,选取=005为检验水准,以P005表示差别有统计学意义。24结果1、流式细胞技术检测不同浓度亚硒酸钠对细胞线粒体膜电位的影响(图1-2,表1)流式细胞技术检测线粒体膜电位结果如图12,M2代表线粒体膜电位,从图上可以看出,24h时,251amolL亚硒酸钠组与正常
6、对照组相比无明显差别;501maolL、10衄,亚硒酸钠组与正常对照组相比膜电位明显下降(Po05);48h时,25tmaolL、501maolL、10 lzmolL亚硒酸钠组与正常对照组相比膜电位均明显下降(Po05)。并且随着亚硒酸钠浓度的升高,线粒体膜电位的下降幅度越大。在亚硒酸钠作用的同一时间点上,501maolL、10 lmaolL亚硒酸钠组膜电位的下降程度明显高于251amolL亚硒酸钠组(P 005)。表1:流式细胞仪检测实验各组SGC7901细胞线粒体膜电位的变化(i士s,n_3)Tablel:Changes of mitochondrial membrane potentia
7、l in SGC-7901 cells staining byflow cytometry(虹,n_3)注:8与空白对照组比较P005;6与25ttmolL硒组比较PO05;。与501maolL硒组比较P0052、免疫细胞化学SABC法检测亚硒酸钠对Cyte蛋白表达的影响和Western blot印迹法检测亚硒酸钠对线粒体Cyte释放的影响(图34,912,表2-4)免疫细胞化学SABC法检测Cyte蛋白表达和Western blot印迹法检测线粒体cyte释放的结果分别显示:Cytc阳性结果呈棕黄色颗粒,表达在细胞质。24h时,251maolL亚硒酸钠组与正常对照组相比细胞数量和染色强度均无
8、无明显变化,509moL、10lmaolL亚硒酸钠组与正常对照组相比细胞数量减少,细胞变圆,染色加深;48h时,25pmolL、501maolL、10 lamolL亚硒酸钠组与正常对照组相比细胞数量逐渐减少,细胞肿胀,变大变圆,染色逐渐加深。Western blot印迹法结果如图912:细胞质Cyte蛋白条带24h时,25pmolL亚硒酸钠组与空白对照组相比蛋白条带面积无明显变化,51tmoUL、10ItmogL亚硒酸钠组与空白对照组相比蛋白条带面积逐渐增大。48h时,5I_tmolL、5vmolL、10pmoFL亚硒酸钠组与空白对照组相比蛋白条带面积逐渐增大。线粒体Cytc蛋白条带24h时,
9、25pmolL亚硒酸钠组与空白对照组相比蛋白条带面积无明显变化,5tmolL、101tmolL亚硒酸钠组与空白对照组相比蛋白条带面积逐渐减小。48h时,5I_tmoUL亚硒酸钠组与空白对照组相比蛋白条带面积无明显变化,5I_tmolL、10“molL亚硒酸钠组与空白对照组相比蛋白条带面积逐渐减JN o免疫组织化学检测结果用IPP60图像分析软件分析:每组选3张涂片,每个涂片选6个视野,测定视野阳性细胞的平均光密度值。Western blot结果用IPP60软件分析印迹条带的光密度值,以IB-actin为内参照,蛋白表达强度=样品中目的蛋白光密度值相应Bactin的光密度值。免疫细胞化学法检测C
10、ytc蛋白结果如表2所示:Cytc蛋白的MOD随着亚硒酸钠浓度增加而升高。24h时,501maolL、10 rtmolL亚硒酸钠组与正常对照组相比Cytc蛋白的MOD升高(PO05);48h时,259molL、501maolL、10 ImaolL亚硒酸钠组与正常对照组相比Cytc蛋白的MOD升高(P005)。在亚硒酸钠作用的同一时间点上,Cytc蛋白的MOD逐渐增加,50肛molL、10“molL亚硒酸钠组明显升高(P(O05)。表2:实验各组SGC-7901细胞Cytc蛋白免疫组化染色平均光密度值(MOD)(i:is,n=6)Table2:The mean optic density(MOD
11、)of immunocytecllemical Cytc positive proteinin every experiment group(i士s,=6)组别 24h 48h正常对照组 0154士0004 0152-+0003251maolL硒组 O161t-0003 0181士0002850lmaolL硒组 O1 864-0003曲 O1 93+0004ab1 0 I_tmolL硒组0207士0003咖02 1 3士0006墩注:8与空白对照组比较PO05;6与251maolL硒组比较PO05;。与501maolL硒组比较PO05Western blot印迹法检测细胞质Cytc蛋白结果如表
12、3所示:24h时,5pmolL、lOIlmolL亚硒酸钠组与空白对照组相比蛋白表达强度明显增强(P005);49h时,5 JtmolL、5pmoUL、lOpmolL亚硒酸钠组与空白对照组相比蛋白表达强度明显增强(P005)。在亚硒酸钠作用的同一时间点上,细胞质Cytc蛋白表达强度逐渐增强,50tn丑olL、10_unoFL亚硒酸钠组明显增强(P005)。表3:实验各组SGC-7901细胞质Cyte蛋白表达强度(i虹,=3)Table3:Western Blot results of cytoplasm Cyte protein in every experiment group(i士s,n_3
13、)组别 24h 48h正常对照组25pmolL硒组50tnnoFL硒组01 53+0005 0162士O0050164士0004 0257士000380325士0006曲0388-+0004。b1 0肛molL硒组0443士0003西。0547士-0006舭注:3与空白对照组比较P005;“与25ttmoFL硒比较组P005;。与50ttmolL硒组比较P005Western blot印迹法检测线粒体Cytc蛋白结果如表4所示:24h时,59molL、10ttmoFL亚硒酸钠组与空白对照组相比蛋白表达强度明显减弱(P005);48h时,59molL、1011molL亚硒酸钠组与空白对照组相比蛋
14、白表达强度明显减弱(P005)。在亚硒酸钠作用的同一时间点上,线粒体Cytc蛋白表达强度逐渐减弱,50tunolL、10 ttmoFL亚硒酸钠组明显减弱(P005)。表4:实验各组SGC7901细胞线粒体Cyte蛋白表达强度(孑士s,n-3)Table4:Western Blot results of mitoehondria C”c protein in every experimentgroup(2虹,n:3)注:8与空白对照组比较P005;6与25ttrnolL硒组比较P005;。与509molL硒组比较P0053、免疫细胞化学SABC法和Western blot印迹法分别检测亚硒酸钠对
15、BaxBcl-2蛋白表达的影响(图5-8,1316,表5-8)免疫细胞化学SABC法和Western blot印迹法检测Bax蛋白表达结果分别显示:27Bax蛋白阳性表达在细胞质和或细胞核,呈棕黄色。24h时,25pmolL亚硒酸钠组与正常对照组相比细胞数量和形态无明显变化,染色加深,501maolL、10 lmaolL亚硒酸钠组与正常对照组相比细胞数量明显减少,细胞肿胀,变大变圆,染色明显加深:48h时,251maolL、50imaolL、10 lmaolL亚硒酸钠组与正常对照组相比细胞数量逐渐减少,细胞肿胀,变大变圆,染色逐渐加深。Western blot印迹法结果显示:24h时、48h时
16、,25ktmoYL、51maolL、109molL亚硒酸钠组与空白对照组相比蛋白条带面积逐渐增大。免疫细胞化学SABC法和Westernblot印迹法检测Bcl2蛋白表达结果分布显示:Bcl2蛋白阳性表达在细胞质和或细胞核,呈棕黄色。24h时,251maolL亚硒酸钠组与正常对照组相比细胞数量、细胞形态和染色强度均无明显变化,501amolL、10lmaolL亚硒酸钠组与正常对照组相比细胞数量明显减少,细胞肿胀,变大变圆,染色强度减弱;48h时,251unolL、509molL、10 ixmolL亚硒酸钠组与正常对照组相比细胞数量明显减少,细胞肿胀,变大变圆,染色强度明显减弱。Western
17、blot印迹法结果显示:24h时,259molL亚硒酸钠组与空白对照组相比蛋白条带面积无明显变化,51maolL、10_tmolL亚硒酸钠组与空白对照组相比蛋白条带面积逐渐减小。48h时,259molL亚硒酸钠组与空白对照组相比蛋白条带面积无明显变化,5ItmolL、109molL亚硒酸钠组与空白对照组相比蛋白条带面积逐渐减小。免疫组织化学检测结果用IPP60图像分析软件分析:每组选3张涂片,每个涂片选6个视野,测定视野阳性细胞的平均光密度值。Western blot结果用IPP60软件分析印迹条带的光密度值,以13-actin为内参照,蛋白表达强度=样品中目的蛋白光密度值相应i-actin的
18、光密度值。免疫细胞化学法检测Bax蛋白结果如表5所示:Bax蛋白的平均光密度值随着亚硒酸钠浓度增加而升高。24h和48h时,各亚硒酸钠组与正常对照组相比平均光密度值升高(P005)。在亚硒酸钠作用的同一时间点上,Bax蛋白的MOD逐渐增加,10lmaolL亚硒酸钠组明显升高(P005)。表5实验各组SGC-7901细胞Bax蛋白免疫组化染色的平均光密度值(MOD)(i虹,n)Table5:The mean optic density(MOD)of immunocytechemical Bax positive proteinin every experiment group(i士s,啕组别 2
19、4h 48h正常对照组259molL硒组50btmolL硒组0155士O01203 12士001380395士001240149士00140348-t-001 540405-1-001541 0 lmaolL硒组0527士0028出0582-L0034曲e注:8与空白对照组比较PO05;5与251maolL硒组比较P005;。与501maolL硒组比较PO05Western blot印迹法检测Bax蛋白结果如表6所示:24h时和48h时,各亚硒酸钠组与空白对照组相比蛋白表达强度明显升高(PO05)。在亚硒酸钠作用的同一时间点上,Bax蛋白表达强度逐渐增加,501amolL、10 ImaolL亚
20、硒酸钠组明显升高(PO05)。表6:实验各组SGC7901细胞Bax蛋白表达强度(i蛔,n习)Table6:Western Blot results of Bax protein in every experiment group(i趣,n=3)注:4与空白对照组比较PO05;8与25pmolL硒组比较P005;。与501maolL硒组比较P005免疫细胞化学法检测Bcl一2蛋白结果如表7所示:Bcl2蛋白免疫细胞化学染色的平均光密度值随着亚硒酸钠浓度增加而降低。24h和48h时,50pmolL、10 lxmolL亚硒酸钠组与正常对照组相比平均光密度值降低(Po05)。在亚硒酸钠作用的同一时间
21、点上,Bcl一2蛋白的MOD逐渐降低,50rtmolL、10 rtmolL亚硒酸钠组明显降低(Po05)。表7:实验各组SGC-7901细胞Bcb2蛋白免疫组化染色平均光密度值(MOD)(i:b,n嗡)Table7:The mean optic density(MOD)of immunocytechemical Bcb2 positive proteinin every experiment group(2士s,n啕注:8与空白对照组比较P005;6与25mnolL硒组比较P005;。与50p慢nolL硒组比较PO05Western blot印迹法检测Bcl一2蛋白结果如表8所示:24h和48
22、h时,5pmolL、lOpmolL亚硒酸钠组与空白对照组相比蛋白表达强度明显减弱(Po05)。在亚硒酸钠作用的同一时间点上,Bcl-2蛋白表达强度逐渐减弱,50pmolL、10 lmaolL亚硒酸钠组明显减弱(P005)。表8:实验各组SGC一7901细胞Bcl-2蛋白表达强度(i士s,n=3)TableS:Western Blot results ofBci-2 protein in every experiment group(i:Is,n_31注:8与空白对照组比较PO05;6与25lamolL硒组比较P005;。与50pmolL硒蕴比较P00530讨论胃癌是我国发病率和死亡率最高的肿瘤
23、之一,其发病率随着年龄的增加而显著升高,且呈年轻化趋势,胃癌的治疗效果与病期早晚和诊治方法及手段密切相关,在我国70以上患者在发病早期没有任何症状或者症状不典型,一旦出现典型症状时大都发展至中晚期,临床治疗困难。因此胃癌的积极预防、早期诊断和治疗非常重要。胃癌的发生与多种因素有关,其中,原癌基因和抑癌基因的异常变化起着关键作用。胃癌的发生和发展是多阶段、多步骤的过程,不同的阶段有不同基因在起作用,基因对细胞凋亡调节的失衡也起着重要作用。细胞凋亡又称程序性细胞死亡,是指机体细胞在发育过程中或在某些因素作用下,通过细胞内基因或其产物的调控而发生的一种主动性程序性细胞死亡。机体可以通过细胞凋亡来清除
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