中药、天然药物免疫毒性研究技术指导原则第二稿.doc

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1、【精品文档】如有侵权，请联系网站删除，仅供学习与交流中药、天然药物免疫毒性研究技术指导原则第二稿Z】GPT4-1指导原则编号中药、天然药物免疫毒性（过敏性、光敏性）研究的技术指导原则第（第二一稿（草案）二00三年十二月十七日目 录概述34一、 定义和意义43二、 背景和目的43三、 适应范围45四、 重点内容65基本内容 .65一、基本原则65二、免疫毒性6适用范围和评价指标7（一） 试验中应考虑的问题86三、过敏超敏反应试验97（一）试验中应考虑的问题9.7（二）I型变态反应超敏反应.1081定义.10.82主动皮肤主动过敏试验1083主动全身主动过敏试验10104被动皮肤过敏试验11115

2、抗体滴度检测1112（三）II、型变态反应.1212（四）型变态反应.13（五）型变态反应.12141小鼠迟发型变态反应.142啮齿类局部淋巴结试验.143Buehler分析和豚鼠最大值法16四、光敏试验.1712（一）皮肤光毒性试验18（二）皮肤光变态反应试验183（三）光变态反应试验光敏试验中应考虑的问题1139五、数据分析及评价2014六、常见问题及处理.2115七、不同剂型的中药、天然药物的一般要求.2175参考文献 2518附录 19主动皮肤过敏试验19主动全身过敏试验21被动全身过敏试验22型超敏试验23型超敏试验24Buehler分析和豚鼠最大值法.24啮齿类局部淋巴结试验.25

3、小鼠迟发型变态反应试验.26皮肤光变态反应试验27起草说明 2627著者 2930概述一、定义和意义免疫毒理学是毒理学中一门重要的分支学科，其目的是探讨外源性化合物对机体（人和实验动物）免疫系统产生的不良影响及机理。外源性化合物对机体免疫系统的损伤作用包括两类，一是免疫抑制，即免疫系统的广泛抑制，可致机体对感染的易感性增加及肿瘤发生率增高；另一是免疫增强，即免疫系统反应性过度增强，而导致机体过敏反应（变态反应）和自身免疫性疾病。FDA定义：修改免疫毒性定义过敏反应又称变态反应，是指机体受同一抗原再次刺激后产生的一种异常或病理性免疫反应。按抗原与抗体或细胞反应的方式和补体是否参加等，将变态反应分

4、为、四型。其中型变态反应是了解得最多的一种变态反应，目前采用的过敏试验方法多数是根据型变态反应发病机制的不同环节而设计建立的。光敏反应包括光毒反应和光过敏反应（光变态反应）两类，光过敏反应为IV型变态反应的特殊类型，是局部给药和全身给药后，分布在皮肤中的药物中所含的感光物质与光线产生复合作用使得用药后皮肤对光线产生的不良反应。中药、天然药物为一种外源性物质，也可作为变应原引机体产生发变态反应。本指导原则仅就中药、天然药物对机体变态反应和光敏反应进行讨论。二、背景和目的增加中药对免疫系统的影响的内容从70年代后期开始，欧美等先进国家开始研究药物对机体免疫系统的毒性研究。90年代以来，逐渐将免疫毒

5、性作为药物安全性评价的一项重要内容。随着中药走向世界，许多高新技术也广泛应用于中药新药的研发过程。其研究内容也日趋与国外化药新药研究接轨。中药作为一种外源性化学物质，进入机体后，同样对机体免疫系统产生不同程度的毒副作用。在中药新药研究过程中，研究其对机体免疫系统的影响及机理，是中药临床前安全性研究及评价的一项重要内容。以往中药新药的安全性研究中，很少关注或检查免疫系统，故也极少发现受试物的免疫毒性作用。因免疫系统方面的功能改变能在某种意义上预示药物的不良反应，且免疫系统对毒物具有很高的敏感性。因此，需在新药评价过程中，逐渐建立一套评价方法，在常规的安全性研究中探索并发现药物的免疫毒性以及及引起

6、的免疫系统的功能性改变等。传统观念认为，中药平和、安全，但近年来，伴随中药及其新制剂的不断增多，如注射剂品种的不断增加，使用范围的日益扩大，由中药引起的不良反应特别是变态反应也在逐年增多。以下几方面可能是导致中药变态反应发生的主要原因：（1）中药自身的特点：中药成分复杂，按生理活性可分为有效成分、辅助成分、无效成分、组织物及杂质等，其中不乏有导致机体的过敏物质，如动、植物蛋白，多肽，多糖等大分子物质，它们同时具有免疫原性和反应原性,属于完全抗原，可直接刺激机体免疫系统产生免疫应答,使机体产生抗体或致敏淋巴细胞,最后导致变态反应；一些小分子化学物质属于半抗原，进入人体后与蛋白质结合成全抗原而致敏

7、。（2）中药及其制剂中的致敏原，除药物本身成分外，其制剂中的添加剂、助溶剂、稳定剂、着色剂、稀释剂及在制备过程中产生的杂质和药物本身的氧化、还原、分解、聚合等形成的杂质均能成为过敏原而致机体过敏，从而诱发各种类型的变态反应。（3）中药复方制剂：复方制剂包含多种不同药物，混在一起制成煎剂、注射剂、丸剂及外用制剂等。各种药物成分在体外就有可能发生相互作用,进入体内后在消化、吸收及体内转化过程中,也会有互相作用发生,这无疑也会成为发生不良反应的原因。鉴于此，中药免疫毒性特别是变态反应的研究是不可忽视的临床前安全性评价的重要内容之一。请教临床免疫专家（免疫学会，协和医院张宏誉），明确过敏原、免疫原、变

8、应原三、适用应范围该技术指导原则适用于拟用人和/或已上市的中药、天然药物的免疫毒性研究。这些药物指非口服给药途径的中药、天然药物，包括中药注射剂及其他局部用药的制剂。四、重点内容本技术指导原则的重点内容主要包括免疫毒性、变态反应试验和光敏试验的相关内容。基本内容一、基本原则免疫毒性研究过程必须执行药品非临床研究质量管理规范（GLP）。在进行试验设计中，应遵循随机、对照、重复的统计学原则。应在遵循安全性评价普遍规律的基础上，运用具体问题具体分析的方法，结合受试物的自身特点，充分考虑和结合药学、药效学、其他毒理学（长毒、急毒）及拟临床应用情况等信息，体现整体性、综合性的原则，在阐明其研究方法或手段

9、科学、合理的前提下进行规范性试验，对试验结果应进行全面分析和综合评价，以达到免疫毒性研究的目的。二、免疫毒性原则性地介绍（包括免疫增强和免疫抑制），不详细介绍方法1 明确适用范围2 明确何种情况下需结合长毒试验进行3 明确何种情况下需进行进深入的研究4 列出相应的检测指标药物对机体的免疫毒性常涉及免疫器官、免疫细胞和免疫分子。药物暴露后的免疫毒性可表现为淋巴细胞器官重量或组织学的改变，或骨髓及外周淋巴细胞的改变。药物对免疫系统影响的评价与免疫反应性有关，不能仅通过组织病理学和血液学的方法对淋巴组织进行单一检查，一般认为组织病理学变化通常不是敏感药物诱发免疫毒性的指标，而仅见于相对较高的剂量时，

10、且并不一定与功能性免疫改变相对应。因此，检测免疫毒性要通过多项指标来进行综合性评价。实验方法应建立在公认的免疫学理论和免疫实验技术基础之上；实验观察指标应标准、灵敏、系统、全面；通常由多剂量毒性实验、病理组织学和/或免疫组化方法完成。（一）、适用范围及评价指标需进行免疫毒性评价的受试物：由于免疫系统是一增生活跃的系统，因此对毒物非常敏感，但每一种化学物质都有其特定的靶器官，因此不必盲目地对所有受试物进行免疫毒性监测，而是选择性地对某些受试物特别是以免疫系统为靶器官的毒物进行研究。用于某些适应症的药物，因其作用机制的特殊性，对人体免疫系统可能产生影响，如感染HIV的病人，免疫系统已遭到严重损伤，

11、故对用于AIDS的治疗剂进行免疫毒理学评价极为重要。另外，当受试物是已知的免疫调节剂的情况，或在安全性评价过程中初步发现对免疫系统有明显影响的药物也应进行免疫毒性的评价。在何种试验中进行免疫毒性的观察：建议在现有的长期毒性试验中，增加免疫系统损伤的评价指标。现长毒试验中对免疫器官变化关注的较少，进行病理组织学检查的主要是脾脏和胸腺。对脾、胸腺、淋巴结的详细检查，包括重量及病理组织学检查及骨髓的病理组织学检查更能反应出对免疫系统的损伤作用。即应将临床前安全性试验与确定药物对免疫系统功能影响的特殊评价结合起来， 应合理选择综合性评价指标。进行免疫毒性评价时，通常需对免疫器官、免疫细胞、免疫分子（包

12、括细胞因子）等进行分析。一种化合物或其代谢产物对淋巴细胞存活的直接效应，可通过受试物与特定的淋巴细胞体外共培养确定，并在不同时间里监测细胞活力。如果某些受试物体内给药能减少一种或多种细胞类型，而在体外培养时无此作用，则可能间接的作用于淋巴细胞。有些化合物可能抑制免疫功能而不显著影响细胞数目，因此有必要对免疫功能进行分析。如用吞噬细胞摄取颗粒的能力和肿瘤活性的能力来评价某些受试物对其的影响。NK细胞抗肿瘤活性的测量，通常用标记YAC-1的肿瘤细胞作为靶细胞分析51Cr-的释放量来评价。淋巴细胞的信号传递途径和增殖能力，可通过有丝分裂原或者生理活性因子激活细胞来评价等。即应结合具体情况，选择合适的

13、评价指标。（二）、试验中应考虑的问题1、1、动物选择：用于检测潜在免疫毒性的临床前试验的受试动物应为健康动物，通常用啮齿类动物。受试动物在试验前应在试验场所进行适应性饲养。免疫毒性试验设计中要充分考虑到动物免疫系统的成熟程度等。2、给药途径：应与拟用临床途径一致（如有特殊情况，需说明）。3、给药剂量：建议设置三个剂量，低剂量应不低于药效试验有效剂量。应考虑出现免疫毒性的剂量和引起其他毒性的剂量的关系；注意观察出现免疫毒性的可逆性。4、给药时间：每日给药，连续1个月或与长毒试验周期一致。5、检测指标：用于检测受试物引起动物免疫毒性的指标应包括以下两级：（1）第一级：血液学（如白细胞计数等）、重量

14、（如体重、脾重、胸腺重、肾脏重和肝重等）、脾细胞数和骨髓细胞数、淋巴器官组织学观察、IgM抗体形成空斑细胞（PFCS）、T淋巴细胞转化、混合淋巴细胞反应、B淋巴细胞转化和NK细胞活性；（2）第二级：B淋巴细胞、T淋巴细胞表面标志、IgG抗体形成空斑细胞计数、T淋巴细胞的细胞毒效应、ADCC作用、I型超敏反应（全身或局部）、迟发性超敏反应及宿主对实验性感染或肿瘤移植的抵抗作用等。6、环境因素：特定环境的环境，如群养、单养、温度、禁食、禁水、光照、固定、手术、给药方法和应激都会对实验动物的免疫系统产生影响。应尽量注意避免。在任何免疫毒性研究中，受试物的剂量、给药时间、给药方式应与发现不良反应的实验

15、相一致。7、免疫功能的检测方法7.1体液免疫功能（见后）： 包括皮肤被动过敏试验、皮肤主动过敏试验、全身主动过敏试验及抗体滴度测定等。7.2细胞免疫功能： 包括淋巴细胞增殖反应， K细胞、NK细胞、巨噬细胞、抗原递呈细胞功能，以及宿主抵抗力试验（对抗原的抵抗试验及肿瘤细胞攻击试验）等。三、超敏反应试验（一）、试验中应考虑的问题中药、天然药物应进行何种变态反应研究，可根据药物自身特点、临床适应症和给药方式确定。通常局部给药发挥全身作用的药物（如注射剂和透皮吸收剂等）需考察型变态反应，如注射剂需进行全身主动过敏试验和皮肤被动过敏试验，透皮吸收剂需进行皮肤主动过敏试验等。和型变态反应可在进行长期毒性

16、试验中选择相关指标进行观察，如观察动物的体征、一般表现及免疫系统损伤的评价指标等。经皮给药制剂（包括经皮给药发挥全身作用或局部作用的药物）应进行IV型变态反应试验。具体试验方法的选择应根据给药途径、过敏反应发生机制、影响因素和临床意义等为基础进行选择，如皮肤主动过敏试验、全身主动过敏试验、皮肤被动过敏试验、小鼠耳廓肿胀试验（MEST）、啮齿类局部淋巴结实验（LLNA）、Buehler分析法、豚鼠最大值法（GPMT）等，也可采用其它的检测方法，但需阐明其合理性并说明具体方法及操作流程。过敏试验均应设立阳性对照和阴性对照。可选择多个剂量进行试验，尽可能找出无过敏反应的剂量，以提示临床进行脱敏处理的

17、起始剂量；也可避免因剂量过低而出现假阴性结果；另外，可帮助判断阳性结果是否因强刺激反应而引起。（二）、型超敏反应试验1、定义型超敏反应又称速发型，药物分子本身为变应原,进入机体刺激免疫系统产生相应的IgE抗体,IgE抗体附着在肥大细胞及嗜碱性细胞上使之致敏,当同一变应原再次进入机体后,即与肥大细胞及嗜碱性细胞表面的IgE抗体发生抗原抗体反应,导致肥大细胞及嗜碱性细胞脱颗粒并释放生物活性介质,作用于不同的组织和器官,产生不同的病理生理反应。临床表现为过敏性休克、支气管哮喘、变应原鼻炎、胃肠道与皮肤过敏反应等。型超敏反应通常用皮肤主动过敏试验（ACA）、全身主动过敏试验（ASA）和皮肤被动过敏试验

18、（PCA）等考察，对于吸入途径药物常采用呼吸道敏感性检测。2、主动皮肤过敏试验（Active Cutaneous anaphylaxis, ACA ）皮肤过敏是一种受试物产生免疫学传递的皮肤反应。当动物初始接触受试物后至少1周，再进行受试物的激发接触，有可能导致过敏状态。本试验的目的就是要观察受试物经皮肤重复接触受试物后，机体免疫系统反应在皮肤上的表现，即有无过敏反应及过敏强度如何。将试验方法列在附录中21动物选择：建议选用豚鼠。给药前背部两侧脱毛，脱毛区应不小于33cm2。22受试物：受试物应与用于人体的制剂一致，应为含活性成分和赋形剂或含透皮促进剂的混合制剂。受试物应采用制备工艺稳定的样品

19、，应明确受试物提供单位、批号、含量（或浓度）、配制方法等。若受试物为膏剂或液体，则一般不稀释；若受试物为固体粉末，则需适量水或赋形剂混匀，以保证受试物与皮肤的良好接触。当使用赋形剂时，应考虑其对受试物透皮吸收的影响。23对照设置：应设置阳性对照药组和阴性或赋形剂对照组，阳性药可选择2，4-二硝基氯代苯（1%的致敏浓度和0.1%的激发浓度）。24给药范围及停留时间：在受试物的致敏接触阶段，应充分保证其在皮肤上的停留时间（6小时）和接触皮肤的范围。25致敏：在第0、第7和第14天，以同样的方法局部给药。末次给受试物致敏后14天，在激发接触阶段，再次将受试物涂于脱毛区，6小时左右后，观察72小时内皮

20、肤过敏反应情况，并按皮肤过敏反应评分标准进行评分。26结果描述：应详细叙述实验方法，列表记录各组各时间的平均分值，同时应密切观察动物是否有哮喘、战立不稳或休克等严重的全身性过敏反应出现。27 结果判断：根据试验组和对照组动物皮肤反应的差别，判断受试物对皮肤过敏反应的性质，并计算致敏发生率（即将出现皮肤红斑、水肿或全身过敏反应的动物例数除以受试物总数）。致敏发生率为0-10%，11-30%，31-60%，61-80%，81-100%分别为无致敏性、轻度、中度、高度和极度致敏性。3、主动全身超敏试验（Active systemic anaphylaxis, ASA）当药物作为抗原或半抗原初次进入体

21、内，刺激机体产生相应的抗体（IgE）。当同样药物再次进入机体，抗原与抗体结合形成的抗原抗体复合物，刺激肥大细胞及嗜碱性细胞释放活性介质，从而引起局部水肿、抓鼻、竖毛、呼吸困难、窒息、痉挛，甚至休克死亡。本试验的目的即观察受试物给药后对动物引起的过敏反应。中药注射剂引起的过敏反应临床上较多见，尤其是引起全身性过敏反应，甚至过敏性休克等非常严重的副反应。因此，中药注射剂全身主动过敏试验更显得有特殊意义。是否要求攻击时必须一次性静脉注射（腹腔注射可因脱敏作用使得致敏程度降低）31动物选择：常选用豚鼠。做过敏试验后的豚鼠不能再进行重复应用。32受试物：大部分受试物进行过敏试验时，可直接用受试物本身作为

22、致敏液，某些产品可用其原料的半水解物或受试物与佐剂1：1的混合液作为致敏原，以提高试验灵敏度。加佐剂可使过敏反应强度增加可溶性受试物，对肌肉注射制剂，若为混悬液不能静脉注射者，可用腹腔注射途径进行攻击。33致敏：致敏时常选择容易产生抗体的方法，如皮下、腹腔或肌肉注射等。如给豚鼠隔日肌肉注射受试物0.5ml，共3-5次。剂量设置：通常设置两个剂量组，低剂量一般采用临床拟用量的最高剂量，高剂量组为低剂量组的10倍或数倍？。（请王老师、顾老师查阅相关文献，可行性如何？）34攻击：分两组，分别于首次注射后第14-21天一次攻击（请王秀文、顾立刚老师查相关依据）。攻击途径通常采用静脉注射途径，以致敏剂量

23、的2-5倍经静脉，观察注射后有无过敏症状。若采用其他给药途径常引起脱敏。35对照设置：试验应设立阳性对照药组、赋形剂对照组等，阳性对照药可选用1-5mg/只的牛血清白蛋白或卵蛋白或其他已知的致敏阳性物质 人血白蛋白等。36 环境因素：过敏反应试验过程，尤其是攻击（还是激发？）时室温不应低于18。37结果判断：症状评分表攻击注射后，若发现有过敏反应症状时，可应取健康未致敏豚鼠2只，自静脉注射攻击剂量的受试物2ml，观察有无由于药物作用引起的类似过敏反应症状，以供结果判断时参考。若出现过敏反应，最好必要时可进行过敏的剂量效应关系研究，争取找出无过敏反应的剂量，以提示临床进行脱敏处理的起始剂量。38

24、判断标准：无症状；+不安、哆嗦、搔鼻、喷嚏、排尿、呼吸急促等；+除上述症状外，呼吸困难和运动障碍；+除上述症状外，呼吸衰竭直至痉挛，但可恢复；+死亡。4、被动皮肤过敏试验（Passive Cutaneous Anaphylaxis, PCA）被动皮肤过敏试验是一种较敏感的测试特异抗体滴度的方法。将受试物致敏动物的血清（含丰富的IgE抗体）给正常动物皮内注射，IgE的Fc端与皮肤的肥大细胞表面的特异受体结合，形成IgE的复合物，使肥大细胞致敏。当抗原攻击时，抗原与肥大细胞表面上IgE的Fab端结合，导致IgE分子结构的改变，引起肥大细胞脱颗粒，释放过敏介质如组胺、慢反应物质等，使皮肤局部血管的通

25、透性增加，使静脉注射抗原的同时注入的伊文思蓝染料在该皮肤处渗出着色。根据局部皮肤蓝染范围或程度，可判定血管通透性变化的大小，继而判定皮肤过敏反应的程度。41试验动物的选择：PCA反应常用的动物是大鼠，亦用小鼠，有时根据试验需要用家兔豚鼠。选择动物时应注意因这些动物PCA反应是由IgE介导的。豚鼠因其PCA反应主要是由IgG介导的，现已较少采用。42试验分组：应设立阴性、阳性对照组和受试物不同2个剂量组。阴性对照组应给予同体积的溶媒，阳性对照组给予卵白蛋白或天花粉或已知致敏阳性药物。43致敏途径及方式：应按临床拟给药途径。隔日致敏一次，共3-5次。末次致敏后10天左右采血，制备抗血清。44试验方

26、法选择：可采用大鼠同种被动皮肤过敏试验、小鼠被动皮肤过敏试验或小鼠耳异种皮肤过敏试验。45试验操作：将各组含IgE的抗血清分别用生理盐水稀释成不同倍数（通常采用1:10-1:50稀释度），在动物背部脊柱两侧脱毛区皮内注射各对应组的抗血清，24或48小时后，各组动物进行抗原攻击，静脉注射与致敏剂量相同的激发抗原（含0.5-1%的伊文思文斯蓝兰染料），30分后将动物处死，摘出背部皮肤，测量皮肤里层内侧的蓝色反应斑直径，同时拍摄照片。直径在5mm以上者判定为阳性。或用比色法测定46评价方法：有两种方法，一种是呈阳性反应的最高稀释倍数的抗体效价为指标。另一种是固定的血清稀释倍数后以色斑的大小或光密度值

27、为指标。直径在5mm以上者判定为阳性。应提供蓝斑照片。47蓝色反应斑的测定：色斑大小的测定可采用直接测定法或比色测定法。直接测定法是指取对照组和用药组两组的蓝色斑直径的平均值，计算出变化百分率。比色测定法是将蓝色斑片剪下，剪碎后加入丙酮-生理盐水（7:3）混合液5-6ml，浸泡后次日离心，在610nm波长处测定其吸收度。取两组的吸收度平均值，计算出变化百分率。 5、抗体滴度测定IgE是引起I型变态反应的主要原因，检测血清或体液中的IgE水平对明确是否存在I型变态反应和认识药物诱发变态反应的机制具有重要意义。IgE的检测可利用放射免疫法（RIA）等进行。如取静脉血，分离血清后，可用双抗体夹心酶联

28、免疫吸附法测定（Enzyme-linked immunosorbent assay）。有研究认为临床理想条件下，血清IgE检测和皮肤试验两者的结果高度一致具有较好的相关性，因此认为两种方法联合检测可提高诊断的结果判断的敏感性和准确性。过敏试验出现阳性或可疑阳性，以及一些具有潜在致敏性的物质，建议进行本试验。6、试验方法可参见附录中试验方法。（三）、型和超敏反应试验型变态反应又称细胞毒或溶细胞型。药物分子进入机体后附着在细胞膜（通常是血细胞）上，并刺激免疫系统产生相应抗体，参与的抗体主要是IgG和IgM，特点是由抗体直接与靶细胞膜上的抗原结合而导致细胞溶解。临床可表现为药物性溶血性贫血、粒细胞减

29、少和血小板减少性紫癜等。型变态反应又称免疫复合物型或血管炎型。药物分子进入机体刺激免疫系统产生相应抗体（IgG, IgM），当抗原抗体两者呈一定比例时形成免疫复合物，沉积于组织的血管基底膜上，导致血管壁的损伤及炎症反应。常见反应如血清病、变应性肾小球肾炎、全身性红斑狼疮样反应等。尚无标准的临床前试验进行预测。当药理学和毒理学试验结果提示有潜在的II和III型超敏反应时，建议可进行进一步的相关试验研究。可参照附录中的试验方法。型变态反应试验方法放在附录中引起型变态反应的抗原需持续存在，以利于与相应抗体结合形成免疫复合物。可采用家兔（最易形成Arthus反应）或大鼠Arthus反应试验进行评价。将

30、受试物或阳性药卵白蛋白和Freunds完全佐剂给家兔每周肌肉注射1ml，共4次。末次注射后第10天，背部剪毛后皮内注射受试物或1%卵白蛋白，每点注射0.2ml，抗原攻击后2，3，4，6，8，12，24小时观察每点局部皮肤红肿的最大直径与反应程度，求平均值。反应程度按分级进行分析、判断。受试物的给药途径和给药时间由受试物的药效学、临床拟用药情况等特点决定。（四五）、IV型变态反应试验又称迟发型。药物直接作用于T淋巴细胞使之致敏，当同一药物再次接触已致敏的淋巴细胞，则激发致敏淋巴细胞释放介质而导致组织损伤。 此类反应无抗体参与，发生较慢，一般在再次接触相同抗原2448-72小时后才出现临床表现。主

31、要表现为药疹、接触性皮炎、剥脱性皮炎等。介绍型变态反应包括的试验方法，方法学的优缺点，目前被各国接受和认可的程度。（请李波老师帮助撰写）可参照具体方法学放在附录中的试验方法。1 Buehler分析和豚鼠最大值法（GPMT）试验动物皮内或涂皮给予诱导剂量，经过1014天的诱导期，此时免疫反应发生，然后给予激发剂量，以观察是否出现了过敏反应。在诱导期和攻击期的皮肤反应及其程度均应进行对比，并与伪处理组进行比较。31实验动物：最好选择年轻成年的豚鼠。动物数量和性别取决与所选择的试验方法，两种性别均可使用。如果使用雌性动物，应选择未产和未孕的动物。Buehler试验试验组不少于20只、对照组不少于10

32、只。GPMT试验试验组不少于10只、对照组不少于5只。32对照：推荐的阳性对照物有巯基苯并噻唑，苯佐卡因，二硝基氯苯，331环氧树脂等。为确保激发反应源于过敏性而非刺激性，应设立溶剂对照组，所选择的溶剂应不干扰或改变试验结果的判断。33给药剂量：取决与所选择的方法。Buehler试验中，致敏剂量应足够高，以产生轻微的刺激性，激发剂量为不产生刺激性的最高剂量。GPMT试验中，致敏剂量应足够高以产生轻中的皮肤刺激性且能很好地全身耐受，激发剂量为不产生刺激性的最高剂量。34结果观察：皮肤反应应分级并在方法学所确定的激发时间进行判定和记录，一般为24和48小时。对于异常的反应，应相应地调整时间。应记录

33、开始和结束时动物的体重。35试验步骤：（1） Buehler试验在第0，6-8和13-15天用封闭片局部给药以诱导，在第27-28天在未给药的胁腹部贴6小时以局部激发。去除封闭片24和48小时后观察结果。如果结果难以判定，一周后再次激发，可采用原来的对照组或新的对照组。（2）GMPT试验采用皮内注射给药，使用或者不使用佐剂进行诱导，局部诱导58天后，第2022天给予激发剂量24小时，在去除激发剂量24和48小时后观察结果。同Buehler试验一样，如果结果难以判定，一周后再次激发，如果初试选择的动物数量只有10只而结果难以判断，应再增加10只试验动物和5只对照动物。 36数据分析：试验数据建议

34、以表格的形式整理，包括每一动物的皮肤反应，根据方法所确定的诱导和激发的时间。至少应该包括红斑和水肿的分级资料和异常反应的记录，提供每一组过敏的比例和每一动物过敏程度（轻、中、重）。2啮齿类局部淋巴结试验（LLNA）产生皮肤过敏的受试物可刺激所管辖的淋巴结内的淋巴细胞增生，在合适的条件下，这种增生与剂量成比例。该项试验可客观、定量的对受试物引起的过敏反应进行评价。21试验动物：应选择812周CBA/Ca or CBA/J系雌性小鼠（未产和未孕），按年龄配对（最好相差不到一周）。22受试物的制备：固体受试物使用前应用合适的溶剂或赋形剂溶解和稀释。液体受试物可直接进行试验和稀释以后使用。23溶剂选择

35、：根据受试品的最大浓度选择溶剂，推荐的溶剂有丙酮/橄榄油（4：1 v/v）, N，N-二甲基甲酰胺,丁酮, 丙烯, 乙二醇, 二甲亚砜，其它合适的溶剂也可以选择。所选择的溶剂应不干扰试验结果的评价，其最大浓度应能达到该物质的最大皮肤暴露浓度，应尽量保证亲水性物质能润湿皮肤并不立即挥发。24对照：应设立阳性和阴性对照组。阳性对照应保证方法的可行性，阳性对照物在合适的暴露水平应能产生阳性结果（刺激指数（SI）3，刺激指数是受试组3H-甲基胸腺嘧啶脱氧核苷或125I碘苷（125IU）进入淋巴结的量与溶剂对照组的比率），优先选择的阳性对照物为桂皮醛和巯基苯并噻唑，其它合适的对照物也可以选择，氨基苯甲酸

36、乙酯应尽可能避免。阳性对照物应该溶解在能引起一致反应的溶剂里（如丙酮/橄榄油），以使其产生持久的反应。如果选择的是非标准的溶剂，此溶剂必须在评价结果前，首先进行LLNA试验。25试验方法：应至少设立三个剂量。剂量的选择可参考毒性，溶解性，刺激性，结构活性关系和其它试验结果等信息。为避免假阴性，应选用尽可能高的浓度。最大浓度应避免明显的系统毒性和过度的局部刺激，LLNA的结果为阴性时，同时进行的阳性对照相对于阴性对照的SI必须大于3。26实验步骤：第1天于每鼠耳廓背部涂抹受试物25ul，连续3天。第4和第5天无处理。第6天由每鼠的尾静脉注射包含20uCi 3H胸腺嘧啶脱氧核苷或2uCi 125I

37、U 和105M氟脱氧尿嘧啶核苷的PBS250ul。5小时后，取小鼠耳部淋巴结置于PBS溶液中，用200网的不锈钢滤网过滤制成淋巴结细胞（LNC）单细胞悬液，用PBS洗2次，5三氯醋酸中4沉淀18小时后提取DNA。3H胸腺嘧啶脱氧核苷测定：沉淀用1mlTCA分散，转入10ml闪烁液体中，用B闪烁计数器读取数据并以每分钟衰变数/只小鼠表示；对于125IU法，1mlTCA沉淀直接转入gamma计数器计数并以每分钟衰变数/只小鼠表示。27结果观察：每天最少观察一次，包括局部的刺激性和全身毒性作用等，在给药前和尸解时称重，以有助于判断系统毒性。28评价和计算结果：淋巴结细胞的增生反应用除去背景值后的每一

38、动物每分钟放射性元素蜕变率来表达。应计算每组平均值和标准差。最后的结果以SI表示，SI=试验组的平均衰变率/溶剂对照组的平均衰变率。除了评价SI的比值外，还应对量效关系进行统计分析（如ANOVA）并对SI进行配对比较。29数据分析：至少在一个浓度下，试验组SI3，可视为LLNA试验阳性，可认为该药物为皮肤过敏剂。然而SI的大小不是唯一的评价指标，应对每一个体的数据进行统计学分析，以提供全面的评价。影响评价的因素包括SI的确定、统计分析、量效关系的强度、化学毒性、溶解性、溶剂和阳性对照的一致性。强烈的刺激性可通过产生显著的淋巴细胞增生而导致LLNA试验出现假阳性，但由于刺激性导致的淋巴细胞增生量

39、效关系范围窄，因此量效关系可以帮助判断强刺激反应，同时结合耳廓部位肿胀情况可以帮助从强刺激性中区分出弱的过敏反应。应详细报告实验方法，列表记录各组每只动物的每分钟衰变数/只小鼠、SI值及他们的平均值和标准差、毒性症状，说明量效关系。3 小鼠迟发型变态反应试验（FDA尚未广泛用于安全性评价）若药物为一半抗原，将其涂抹于小鼠腹壁皮肤后，可与皮肤蛋白结合形成全抗原，由此刺激T淋巴细胞增殖成致敏淋巴细胞，4-7天后再将其涂抹于耳部或足爪皮肤，可使局部产生迟发型变态反应，故通过测定小鼠耳廓或足爪肿胀度来评价其迟发型变态反应。试验中应选择二硝基氟苯（DNFB）作为阳性对照药。四、光敏试验光敏反应（phot

40、osensitivety reactions）是用药后皮肤对光线产生的不良反应，包括光毒反应（phototoxic reactions）和光变态反应或光过敏反应（photoallergic reactions）两类，均由受试物所含的感光物质引起，但两者机制不同，实验方法、临床表现及意义亦不同，应分别进行检测。光敏反应可由局部给药和系统给药诱发，并不仅限于局部给药。因此，原则上所有给药途径的药物，只要有皮肤分布，则均应进行光敏检测。若受试物的化学结构或某些组成（包括药物和赋形剂）文献报道有光敏作用者，或其化学结构与已知光敏剂相似者，曾有报道具有光敏作用的中药制剂，以及用于皮肤暴露部位的外用制剂，

41、建议作光敏试验。本试验的目的为观察受试物接触皮肤或应用后遇光照射是否有光敏反应。（一）、皮肤光变态反应试验光变态反应系药物吸收光能后成激活状态，并以半抗原形式与皮肤中的蛋白结合成为药物-蛋白质结合物（全抗原），经表皮的郎罕氏细胞（Langerhans）传递给免疫活性细胞，引起过敏反应的作用。光变态反应属IV型（迟发型）变态反应，是与结构相关的交叉反应。其发生时间相对较长，且有一定的潜伏期。通常5-10天的连续用药和光照射可诱导免疫系统产生光过敏反应。再次给药时，药物和日照作用24-48小时之内即会有光过敏性反应发生。可参照附录中的试验方法。1致敏：于脱毛区（24cm2）四角个注射弗氏完全佐剂各

42、0.1ml。并于脱毛区涂20%十二烷基硫酸钠溶液，再将受试物涂于该部位，一定时间后拭去表面残留药物。2照射：以280-400nm波长紫外线照射涂药部位，以产生显著红斑为准。隔日重复涂抹十二烷基硫酸钠和给受试物，并照射涂药部位的步骤，共5次。3激发：于末次致敏后2周，在准备的皮肤区再次涂药，浓度宜低于致敏浓度，以免刺激和光毒反应。同上，以不引起红斑反应的亚红斑量紫外线照射。4结果判断：照射后1-72小时内观察皮肤反应。凡与受试物多次接触并在紫外线照射后出现皮肤炎症、甚至全身反应者，均可认为是该受试物引起光变态反应的光感物质。（二三）、光变态光敏试验中应考虑的问题1、动物选择：建议首选白色豚鼠或家

43、兔。2、照射光源及波长的选择：可采用氙灯、石英灯或混合光源（包括UVA和UAB）或单纯紫外光源（UVA）。波长宜包括中、长波紫外线280-400nm波段，因结构不同的药物敏感波长不同，应利用对不同受试物敏感的波长段进行试验。通过预试验，对照射剂量、光强度和照射时间及照距等进行确定。3、受试物：建议选用临床用药浓度（或等效剂量），光变态反应激发浓度可用适当稀释的浓度，以除外光毒反应。4、阳性光感对照物：光变态反应可选用溴化水杨酰苯胺。5、给药时间：光照前应尽量保证受试物及对照物有足够的时间穿透皮肤角质层，以与表皮细胞发生作用，一般在60min左右为宜。6、给药象限的选择：若为系统给药，则给药象限

44、及不给药象限，以及阳性对照物象限都应在不同动物组中分别进行。7、结果表述：光敏试验的主要环节均应以照片记录及表示。8、试验系统：完善的光敏反应评价系统是评价药物光敏反应的基础。合理的评价系统应依据药物的光敏反应机制，由体外光化学模型、体外生物学模型及实验动物模型共同组成。在光化学反应模型中利用不同波长的UVA照射，先确定受试物发生光敏反应的最敏感波长，以为进一步的生物学评价奠定基础。五、数据分析及评价（一）1、应详细论述实验方法，说明分组、给药剂量、动物数、用药次数等；应详细描述超敏反应的表现、反应持续时间、恢复情况及时间、死亡动物数及病理组织学检查结果，并提供相应的照片，以利用对结果的分析和

45、判断。（在主动全身超敏反应试验中出现动物死亡时，应进行解剖，若有明显病变则应进行病理组织学检查）（二）、2应根据试验结果，按评分方式对不同剂量（或浓度）下反应发生情况及严重程度进行表述，分析超敏反应的量效关系和时效关系及其可逆性，判断数据变化是否与受试物有关，确定超敏反应剂量、安全剂量及安全范围等。（三）、3 8结合药效学及其他毒理学试验结果进行综合分析，整体评价，注意不能将动物结果不加分析外推到人，也不能忽略甚至故意舍掉个别出现毒性反应的动物，应实事求是地反映受试物的毒性，根据试验结果得出受试物在临床应用的意义及注意事项等提示。（四）、9引起机体免疫系统的免疫应答过程是一个十分复杂并需要不断认知的过程