现代生物技术综合实验PPT课件.pptx
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1、实验一 质粒DNA的制备与质量(zhling)鉴定一、实验目的 学习并掌握基因工程操作技术中最常用的载体质粒DNADNA的提取(tq)(tq)方法。第1页/共44页第一页,共44页。二、实验原理 在碱性溶液中,双链DNADNA氢键断裂,DNADNA双螺旋结构遭破坏而发生变性,但由于质粒DNADNA分子量相对较小,且呈环状超螺旋结构,即使在高碱性pHpH条件下,两条互补链也不会完全分离,当加入(jir)(jir)中和缓冲液时,变性质粒DNA DNA 又恢复到原来的构型;而线性的大分子量细菌染色体DNADNA则不能复性,与细胞碎片、蛋白质、SDSSDS等形成不溶性复合物,通过离心沉淀,细胞碎片、染
2、色体DNADNA及大部分蛋白质等可被除去,而质粒DNADNA及小分子量的RNARNA则留在上清液中,再用酚/ /氯仿处理,可去除残留蛋白质,混杂的RNARNA可用RNARNA酶(RNAase)(RNAase)消除。第2页/共44页第二页,共44页。三、实验材料与主要试剂 实验材料: 含pEGFP质粒的大肠杆菌DH5 主要试剂: 溶液I:50 mM葡萄糖,10 mM EDTA, 25 mM Tris-HCl(pH8.0),用前加溶菌酶4 mg/L 溶液II: 0.2 mol/L NaOH溶液(内含1% SDS),现配现用 溶液III(pH4.8): 60 mL 5 mol/L醋酸(c sun)钾
3、,11.5 mL 冰醋酸(c sun), 28.5 mL H2O; 饱和酚/氯仿/异戊醇(25:24:1)、酚/氯仿(1:1,V/V) TE缓冲液(pH8.0): 10 mM Tris-HCl,1 mM EDTA, 含RNA酶(RNaseA): 20 g/ml 醋酸(c sun)钠(pH5.2)、70%乙醇、无水乙醇第3页/共44页第三页,共44页。第4页/共44页第四页,共44页。四、实验步骤1) 吸取1.4 ml菌液至1.5 ml离心(lxn)管中。2) 离心(lxn)(8 000r/min,1min),弃上清液(根据菌液浓度判断是否需要重复12次)。3) 加入150 L 溶液,用旋涡振荡
4、器充分悬浮菌体。4) 加入200 L溶液,加盖后温和颠倒56次,直至呈透明状。此步骤在5分钟内完成。5) 加入150 L预冷的溶液,加盖后反复颠倒混匀,直至出现白色絮状沉淀,冰浴5min。6) 离心(lxn)(14 000r/min,5min),移取上清液于另一干净离心(lxn)管。第5页/共44页第五页,共44页。7)7)向上向上(xingshng)(xingshng)清液中加等体积的苯酚清液中加等体积的苯酚/ /氯仿氯仿/ /异戊醇异戊醇(25:24:125:24:1),振荡混匀抽提,离心),振荡混匀抽提,离心(14 000 r/min(14 000 r/min,5min)5min),溶液
5、将出现分层。,溶液将出现分层。8) 8) 移取上层水相溶液(约移取上层水相溶液(约450500450500L L)于另一干净离心管,)于另一干净离心管,加等体积氯仿,振荡混匀抽提,离心加等体积氯仿,振荡混匀抽提,离心(14 000 r/min(14 000 r/min,5min)5min),溶液将出现分层。,溶液将出现分层。9)9)移取上层水相溶液于另一干净离心管,加入移取上层水相溶液于另一干净离心管,加入1/101/10体积的醋体积的醋酸钠(酸钠(pH5.2pH5.2)和)和2 2倍体积无水乙醇混匀,冰浴倍体积无水乙醇混匀,冰浴30min30min。10) 10) 离心离心(14 000r/
6、min(14 000r/min,10min10min,4)4),倒掉上清液。,倒掉上清液。第6页/共44页第六页,共44页。11) 加0.5 ml 预冷的70% 酒精振荡,洗DNA沉淀一次,离心5 min,倒掉上清液。12)真空抽干或室温自然干燥.13)加2030L TE缓冲液使DNA完全溶解,室温放置10min,降解RNA杂质,少量用于琼脂糖凝胶质量检测(jin c),剩余质粒-20保存备用。14) 1%琼脂糖凝胶配制:称取1g琼脂糖粉末,加入100ml 0.5倍TBE溶液,加热熔化,稍降温后,加入5L溴化乙锭(EB),混匀,制备凝胶板,冷却后备用。第7页/共44页第七页,共44页。15)
7、每位同学各取5L质粒DNA加入1L 6loading buffer,混匀,进行点样。16)电泳条件:120v,40 min;电泳完成后,胶块通过凝胶成像系统检测,观察(gunch)实验结果,并拍照记录。五、实验结果 观察(gunch)并分析电泳图片六、实验报告 按实验内容完成实验报告及教材上的思考题。第8页/共44页第八页,共44页。实验(shyn)二 质粒DNA的片断化及分离 一、实验目的 1、学习利用紫外分光光度法鉴定DNA质量 2、采用型限制性核酸内切酶切割(qig)质粒DNA,并通过琼脂糖凝胶电泳分析酶切效果。第9页/共44页第九页,共44页。二、实验原理 DNA吸收光谱峰在260 n
8、m处,测定此波长下DNA溶液的OD值,当OD260=1时,双链DNA含量约为50 g/mL,据此可用紫外分光光度计测定溶液中DNA含量。由于蛋白质吸收峰在280 nm处,在测定DNA含量时,通过计算OD260/OD280值,可了解所测DNA的纯度,如该值为1.82.0时,DNA纯度高。 已知型限制性核酸内切酶能专一识别碱基序列,并在该处切断双链DNA,形成(xngchng)一定长度和序列的DNA片段。酶切反应需Mg2+等金属离子以及一定浓度的盐离子,不同内切酶对盐离子有不同的要求,如盐离子浓度使用不当或甘油含量过高(5%),会使酶的识别位点发生改变,产生星活性。绝大多数酶的反应温度37。第10
9、页/共44页第十页,共44页。三、实验材料: 实验一提取的质粒DNA四、试剂 限制性核酸内切酶Xba I;缓冲液10M Buffer;0.1%BSA; 0.5TBE Buffer;1%琼脂糖五、实验步骤 1、DNA的测定 空白测定(Blank):吸取(xq)200 l TE缓冲液至比色杯,进行空白测定。 DNA测定(Sample):取质粒DNA 1 l至一干净的离心管,加入199 l TE缓冲液稀释混匀,所有溶液加入到干净的比色杯中,测定260 nm及280 nm的光吸收值;计录DNA浓度及OD260/OD280比值。第11页/共44页第十一页,共44页。第12页/共44页第十二页,共44页。
10、2 2、酶切反应 酶切反应液的配制: : Xba I Xba I 1l1l 10 10M buffer 2lM buffer 2l 0.1%BSA 0.1%BSA 2l 2l DNA DNA 5l (5l (根据质粒浓度来确定用量) ) ddH2O ddH2O 10l 10l 酶切反应条件:3737水浴2 23 3小时(xiosh)(xiosh)。3 3、电泳检测 反应结束后,向反应液中加入2.5l 2.5l 1010loading bufferloading buffer,混匀,用以停止酶切反应,所有22.5l22.5l样品均点在同一个点样孔中。电泳条件:120V, 20120V, 20分钟
11、左右。第13页/共44页第十三页,共44页。六、实验结果 观察并分析(fnx)(fnx)电泳图片。七、实验报告 按实验内容完成实验报告及教材上的思考题。第14页/共44页第十四页,共44页。实验三 大分子DNA的制备和质量(zhling)鉴定 一、实验目的 采用(ciyng)CTAB(十六烷基三甲基溴化铵)法从植物组织中提取基因组DNA,并进行DNA纯度分析和琼脂糖凝胶电泳检测。第15页/共44页第十五页,共44页。二、实验原理 核酸是生物有机体的重要成分,在细胞中核酸常与蛋白质结合(jih)在一起,以核蛋白形式存在。在制备核酸时,通过研磨破坏细胞壁和细胞膜,使核蛋白被释放出来。 在浓NaCl
12、溶液(12mol/L)中,DNA核蛋白的溶解度很大,RNA核蛋白的溶解度很小;而在稀NaCl溶液(0.14mol/L)中,DNA核蛋白的溶解度很小,RNA核蛋白的溶解度很大。因此,可利用不同浓度的NaCl溶液将DNA核蛋白和RNA核蛋白从样品中分别抽提出来。CTAB是一种阳离子去污剂,具有从低浓度盐溶液中沉淀核酸与酸性多聚糖的特性。在高浓度盐溶液中CTAB与蛋白质和多聚糖形成复合物,只是不能沉淀核酸。 分离得到核蛋白后,可用氯仿等将蛋白等杂质除去。第16页/共44页第十六页,共44页。有效制备大分子DNA的两个原则:1)防止和抑制内源DNase对DNA的降解。2)尽量减少对溶液中DNA的机械剪
13、切破坏;所有操作均须温和,避免(bmin)剧烈震荡。 第17页/共44页第十七页,共44页。三、实验材料:植物叶片约0.2克四、实验试剂 1M Tris-HCl (pH8.0)(提供一个缓冲环境,防止核酸(h sun)被破坏) CTAB分离缓冲液:2% CTAB,1.4mol/L NaCl,20mmol/L EDTA,100mmol/L Tris-HCl(pH8.0),0.2%巯基乙醇 (EDTA螯合Mg2+或Mn2+离子,抑制DNase活性;NaCl 提供高盐环境,使DNA充分溶解,存在于液相中;-巯基乙醇是抗氧化剂,有效地防止酚氧化成醌,避免褐变,使酚容易从基因组DNA中除去) 洗涤缓冲液
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