水体成组生物毒性评价.docx
《水体成组生物毒性评价.docx》由会员分享,可在线阅读,更多相关《水体成组生物毒性评价.docx(11页珍藏版)》请在淘文阁 - 分享文档赚钱的网站上搜索。
1、水体成组生物毒性评价在淮河流域安徽段某区域采集了3个地表水样和12个地下水样,通过大型溞急性毒性(活动抑制)、微核及SOS/umu试验,分析了这些水样的急性毒性及遗传毒性。结果表明,急性毒性测试中,该区域地表水及大部分地下水的急性毒性均未超过USEPA废水排放毒性的控制要求(0.3TU),有2个位点的地下水样毒性当量为0.31TU,超过限值;经t-test分析,地表水的急性毒性显著高于地下水。SOS/umu检测中,2个地表水样和7个地下水样的结果呈阳性,表现出DNA损伤效应,其诱导率IR在(2.200.063)(3.360.067)之间,对应的致癌风险P基本处在10-610-7水平。微核检测结
2、果表明,3个地表水样具有较严重的染色体损伤效应,9个地下水样表现为阴性。总之,该区域地表水急性毒性及遗传毒性相对较高;部分浅层地下水也存在一定程度的急性毒性和遗传毒性,致癌风险处在可接受范围,但仍可能对周围居民的健康产生潜在威胁;而深层地下水没有检测到任何毒性效应。研究为周边居民饮水安全和人体健康提供了基础信息。关键词:大型溞;成组生物毒性;微核;SOS/umu;淮河流域淮河流域水质的恶化和周边癌症的高发已使其水污染境况倍受关注,根据(淮河流域重点地区死因回首性调查分析报告)中的结果,2006年,淮河流域部分区域总癌死亡率处于高发水平,十分是胃癌、肝癌、消化系统癌。基于此,有不少学者开展了相关
3、研究,表明淮河流域居民饮用水中多环芳烃(PAHs)及邻苯二甲酸酯等有机污染物含量超标1,酞酸酯类检出率也很高2,主要无机污染物包括致癌物质亚硝酸盐3,且当地居民长期饮用浅层地下水、饮用水井与水质已呈恶化的地表河流、河沟距离太近,受污染威胁的饮用水成为该地区肿瘤高发的重要因素1。淮河流域的这些特征污染物中,多环芳烃(PAHs)具有致癌、致畸、致突变的危害4,在国内外的饮用水标准中已有明确的控制要求;酞酸酯类是激素类污染物有遗传毒性5-7。对于淮河流域的污染的研究已经开展了很多,但研究缺乏生物毒性的分析,而这对于从生物角度进一步评估水体的安全性就显得非常重要。利用大型溞作为受试生物的毒性测试是一类
4、非常重要的生物活体毒性测试,因其易于观察,繁衍速度快,对毒性物质具有较高的敏感性等特点,被国内外广泛应用于水体及化学品的毒性分析中8。其急性毒性(活动抑制)测试方法具有终点易于观察,测试周期短,而且能反映出最明显的有害影响的特点9-10,不仅在化学品毒性11-13、各类型工业废水14-15生物毒性中开展了研究,也有不少研究集中在环境水体16、饮用水安全16等领域。微核及SOS/umu试验属于离体生物毒性测试技术,是两类非常有代表性的遗传毒性检测方法。SOS/umu试验以DNA损伤诱导umu操纵子表达作为检测由终点,所以其能够检测出由DNA损伤引起的遗传毒性,已被列为ISO环境水样及废水遗传毒性
5、监测的标准方法17。微核试验以染色体损伤的构造和数量变化作为检测终点,所以其检测的是染色体异常所引发的遗传毒性18,两者检测的终点不同,反映的遗传毒性作用机制也不同,能够互补。本研究利用大型溞活动抑制试验、微核试验和SOS/umu试验对淮河流域某区域的地下水和地表水进行了急性毒性和遗传毒性分析,研究结果为周边居民饮水安全和人体健康提供了理论参考根据。1材料与方法(Materialsandmethods)11试剂和仪器4-硝基喹啉-1-氧化物(4-NQO,Sigma)、二甲基亚砜(DMSO,Sigma)、二氯甲烷、甲醇、丙酮(色谱纯,美国DIMA)、胰蛋白胨(OXIOD)、羟乙基哌嗪硫磺酸(Si
6、gma)、邻硝基苯酚半乳糖苷(ONPG,Sigma)、RP-MI-1640培养基(Hyclone)、澳洲产胎牛血清(Gibco)、TK6人成淋巴细胞(美国ATCC)。氮吹仪(美国OrganomationAssociates)、人工气候箱(上海一恒)、连续波长酶标仪(MultiskangoUSA)、CO2培养箱(上海博讯)、离心机(湖南湘仪)。12样品采集和处理121采样位点在淮河流域安徽段某区域设置15个采样位点(见图1),S1、S2、S3为地表水;S4S14为分散式浅层地下水,S15为深层地下水。采样时间为2014年4月。122水样的富集用棕色玻璃瓶采集6L水样,于在4保存,用0.45m的玻
7、璃纤维滤膜及真空泵进行抽滤,将抽滤后的水样用活化后的HLB固相萃取小柱(6mL,500mg,watersoasis)进行浓缩,控制水样的流速在68mLmin-1,并于48h内完成。同一水样用3个小柱同时过滤,每根小柱最多富集2L水样。富集完的HLB柱于-20保存待洗脱定容用。123水样的洗脱和定容用610mL丙酮对抽干水分的小柱进行洗脱,洗脱至样品为无色为止。将同一样品的洗脱溶液合并,大型溞活动抑制试验洗脱溶液用氮吹仪吹至丙酮的量小于0.6L后,将其转移到容量瓶中用标准稀释液定容至600mL,同时丙酮含量在1以内。定容样品作为毒性试验备用。微核及SOS/umu试验用氮吹仪吹至完全枯燥,用DMS
8、O定容,-20保存,待生物毒性分析备用。13毒性测试131大型溞活动抑制试验方法参照USEPA毒性测试方法进行19,采用大型溞毒性测试试剂盒(欧陆科仪DAPHTOXKIFFTMMAGNA)进行试验。详细方法如下:用标准稀释水将浓缩水样稀释为5个浓度梯度(即10,5,2.5,1.25及0.5),以标准稀释水为空白,每个浓度组设4个平行,每个平行放置5个出生24h内的幼溞,并以1丙酮做溶剂对照,于人工气候箱20下暗光培养。根据抑制情况计算半数抑制浓度EC50,并按下面公式计算毒性当量(TU)20:TU=100%/EC50(%)(1)132SOS/umu试验试验菌株选用鼠伤寒沙门氏菌(Salmone
9、llaty-phimurium)TA1535/pSK1002。首先对菌株进行复苏和培养,将-80冻存的受试菌株TA1535/pSK1002缓慢解冻后混匀,汲取100L原菌液参加到10mLTGA培养基中,于150180rmin-1,(371)下振荡孵育过夜。第2天用TGA培养液10倍稀释,于37振荡孵育1.53h。经过中以TGA培养基为空白对照,测定菌液在600nm处的吸光度值为0.250.30时,细菌到达指数生长期,将此时菌液作为暴露备用。暴露试验参照ISO13829进行17。详细方法如下:试验以500ngmL-1的4-NQO作为阳性对照,以无菌水为阴性对照、以DMSO为溶剂对照,空白为无菌水
10、(不含菌液)。在酶标板内用无菌水将水样进行梯度稀释,配置成6个暴露组(暴露量为0.8L,0.4L,0.2L,0.1L,0.05L,0.025L),稀释后体积为180L,每个暴露组做3个平行;阳性对照组参加4-NQO180L,终浓度为500ngmL-1;溶剂对照组参加153L无菌水和27L30%的DMSO;再向以上各组每个测试孔内参加20L10TGA(胰蛋白10g,NaCl5g,羟乙基哌嗪硫磺酸11.9g,葡萄糖2g于100mL蒸馏水中,高压灭菌后,参加50mg氨卞青霉素),再参加70L菌液,反响总体积为270L。将酶标板于(371),120150rmin-1下振荡培养2h。取另一酶标板,每孔参
- 配套讲稿:
如PPT文件的首页显示word图标,表示该PPT已包含配套word讲稿。双击word图标可打开word文档。
- 特殊限制:
部分文档作品中含有的国旗、国徽等图片,仅作为作品整体效果示例展示,禁止商用。设计者仅对作品中独创性部分享有著作权。
- 关 键 词:
- 水体 成组 生物 毒性 评价
限制150内