细胞生物学实验报告.docx
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1、细胞生物学实验报告 细胞生物学试验报告细胞生物学试验报告细胞生物学试验报告小鼠脾细胞原代培育姓名:杜旭学号:201*00230155系年级:201*级临七一班同组者:赵伟日期:201*/4/25学习并驾驭动物细胞培育的无菌操作技术。了解原代细胞培育的基本方法及操作过程。学习细胞计数及养分液的配制。细胞原代培育原代细胞培育是指干脆从动物体内获得的细胞、组织和器官,经体外培育后,直到第一次传代为止。这种培育,首先用无菌操作的方法,从动物体内取出所需的组织(或器官),经消化,分解成单个游离细胞,在人工培育下,使其不断的生长及繁殖。细胞培育是一种操作繁琐而又要求非常严谨的试验技术。要使细胞能在体外长期
2、生长,必需满意两个基本要求:一是供应细胞存活所必需的条件,如适量的水、无机盐、氨基酸、维生素、葡萄糖及其有关的生长因子、氧气、相宜的温度,留意外环境酸碱度与渗透压的调整。二是严格限制无菌条件。细胞死活鉴定死活细胞的鉴定方法有许多种,常用的有染色法和仪器分析法。染色法是常用的细胞死活鉴定方法,简便,易于操作。不同的死活细胞鉴定方法有各自不同详细的反应机理,但无论采纳何种方法,都是利用了死活细胞在生理机能和性质上的差异。染色法分化学染色法和荧光染色法,依据染色机理的不同,染料或使死细胞着色,或使活细胞着色。死活细胞在生理机能和性质上的差异主要包括:死活细胞细胞膜通透性的差异:活细胞的细胞膜是一种选
3、择性膜,对细胞起爱护和屏障作用,只允许物质选择性的通过;而细胞死亡之后,细胞膜受损,通透性增加。常用的以台盼蓝鉴别细胞死活的方法就是利用了这一性质。台盼蓝,又称锥蓝,是一种阴离子型染料,不能透过完整的细胞膜。所以经台盼蓝染色后只能使死细胞着色,而活细胞不被着色。甲基蓝有类似的染色机理。植物细胞的质壁分别也可鉴定死活。死活细胞在代谢上的差异:是采纳美蓝染料鉴定酵母细胞死活的依据。美蓝是一种无毒染料,氧化型为蓝色,还原型为无色。由于活细胞中新陈代谢的作用,使细胞内具有较强的还原实力,能使美蓝从蓝色的氧化性变为无色的还原型,因此美蓝染色后活的酵母细胞无色;而死细胞或代谢缓慢的老细胞,则因它们的无还原
4、实力或还原实力极弱,使美蓝处于氧化态,从而被染成蓝色或淡蓝色。除此之外,还有一些细胞器的专有染料。如液泡系的专有染料中性红。中性红是一种低毒性染料,可以使活细胞液泡着红色,而细胞质和细胞核不被着色;死细胞的液泡不被着色或浅染,染料弥散于整个细胞中,细胞核和细胞质被染成红色。有时侯为了增加染色效果可以将两种染料结合运用,如甲基蓝-中性红混合染色法。材料小白鼠试剂台盼蓝、伊红、PBS缓冲液、细胞培育液(含生长因子)器材剪子、棉球、75%酒精、移液枪、无菌操作台、正置光学显微镜、倒置光学显微镜、解剖盘、滴管、离第1页细胞生物学试验报告心管、离心机、注射器、Eppendorf管、培育皿、酒精灯、塑料培
5、育皿、载玻片、盖玻片、血细胞计数板取材取小鼠一只,采纳断头法处死。清水洗小鼠浸入75%酒精中消毒3min,取出转入超净工作台内的解剖盘中,无菌操作打开腹腔,取出其脾脏,除去其四周的脂肪组织,并用PBS液自上而下淋洗1-2次,转入无菌培育皿中待用。分别脾细胞用滴管向培育皿中注入30滴PBS缓冲液,再用“L”型针头注射器在皿中吸取0.2毫升PBS液注入脾脏,注射时沿长轴注射。然后再用针头在脾脏上扎眼,并用“L”型针头轻轻刮出脾细胞。在匀称吹匀脾脏细胞。吸取上述分别的单个脾细胞悬液,放入Eppendorf管中,使量至1mL,以1000r/min离心5min。培育脾细胞取塑料培育皿一套,用移液枪吸取培
6、育液2mL加入塑料皿中,并将皿标记待用。取离心后的Eppendorf管,弃去上清液,用移液枪(200ul)吸取塑料皿中的培育液400ul加入弃去上清的Eppendorf管中,用枪头吹匀管底的脾细胞,吸取200ul脾细胞悬液接种于上述塑料皿中,混匀后放入37C,5%CO2的培育箱中培育。配制染液用生理盐水配成5%台盼蓝染液,备用。染色取0.5mL细胞悬浊液放入试管中,加入1-2滴染液。混合。2-5min后将细胞放在血细胞计数板上视察死活状况,留意不要有气泡产生,放大倍数为10x10。染色后活细胞不着色,死细胞显示蓝色。留意染色时间不能超过15min,否则染液将细胞毒杀。计数在10x10倍的显微镜
7、下视察,计算血细胞计数板的4个4小方格的细胞数量。包括细胞总数与死细胞数量。压线者计上不计下,计左不计右。计算细胞活力依据公式:细胞活力=(总细胞数-死细胞数)/总细胞数100%第2页细胞生物学试验报告台盼蓝染色后的细胞(10x10)伊红染色后的细胞(10x10)总细胞数和活细胞数统计表(1010)项目自己培育细胞老师培育细胞总细胞数个/ml活细胞数个/ml细胞活力1.41067.51053.01055.510521.4%73.3%结果分析本次试验中我们小组自己培育细胞所测细胞活力为21.4%,并不算高,分析得应有以下缘由可能影响试验结果(包括误差):若在无菌操作的过程中操作不规范,导致染菌,
8、会极大的影响视察,导致试验失败。若在离心分别呈单细胞的过程中离心机转速过快或时间过长很可能会导致细胞裂开,导致小鼠脾细胞大量死亡。染色时间过长,或视察时间过长都会导致染色试剂将细胞杀死,使细胞活力骤降,这是导致细胞活力比较低的重要缘由。试验中的一些操作不正确或不规范的状况、计算带来的误差等也会干脆导致试验误差。留意事项严格进行动物消毒,需用75%酒精消毒。严格进行无菌操作,防止细菌、霉菌、支原体污染,避开化学物质污染。吸取液体前,瓶口和吸管硬行火焰消毒;吸取液体时,避开碰撞。离心管入台前,管口、管壁应消毒。试验者离开超净台时,要随时用肘部关闭工作窗。器材运用时既要留意用火焰消毒,又要防止烫伤、
9、烫死细胞。第3页扩展阅读:细胞生物学试验报告试验六细胞膜的渗透性一、试验目的了解细胞膜1的渗透性及各类物质进入细胞的速度2二、试验原理1、在等渗溶液中,细胞对各种溶质的透过性不同。有的溶质可以进入,有的溶质不能渗入。2、渗入的溶质能提高细胞的渗透压,促进水分子进入细胞,引起溶血现象3。3、不同的溶质渗入到细胞内的速度不同,因此溶血时间也不同。三、试验材料簇新血液(鸡血、猪血、牛血等)四、试验器材试管(1.5cmX18cm)、试管架、10ml移液管、1ml移液管、200ml烧杯(2个)、250ml容量瓶、移液枪、胶头滴管、菜刀、吸球、电子天平、显微镜、盖玻片、载玻片、秒表五、试验药品及试剂0.1
10、7MNaCl、0.17MNH4Cl、0.17MNH4Ac、0.17MNaNO3、0.12MNa2SO4、0.12M草酸铵、0.32M葡萄糖、0.32M甘油、0.32M乙醇、0.32M丙酮、肝素抗凝剂4六、试验步骤1、制备血液稀释液(1)抗凝剂的制备:首先称取1克肝素钠粉末,然后加入0.17MNaCl溶液10ml(110的比例),混合匀称,制成肝素抗凝剂。(2)血液稀释液的制备:取簇新血液,按比例(肝素抗凝剂:血液=110)混合匀称,配制成经肝素抗凝的血液56。(3)按比例(经肝素抗凝的血液0.17MNaCl溶液=110)混合匀称,形成一种不透亮的红色液体7。2、低渗溶液(空白比照)的视察取试管
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