2022年Agilent实验原理及步骤[收 .pdf
《2022年Agilent实验原理及步骤[收 .pdf》由会员分享,可在线阅读,更多相关《2022年Agilent实验原理及步骤[收 .pdf(8页珍藏版)》请在淘文阁 - 分享文档赚钱的网站上搜索。
1、Agilent 实验原理及步骤名师资料总结 - - -精品资料欢迎下载 - - - - - - - - - - - - - - - - - - 名师精心整理 - - - - - - - 第 1 页,共 8 页 - - - - - - - - - 一、总 RNA 抽提( TRIzol 法)1.每 2107细胞加入1 ml Trizol,在旋涡震荡器上混匀;对于组织样品,每100mg组织可以加入 1 ml Trizol,用液氮研磨或采用电动匀浆器充分打碎组织块。2.加入约 1/5 体积的氯仿,上下颠倒充分混匀1 分钟左右,室温下静置5 分钟。3.4, 12,000 rpm 离心 15 分钟后小心取
2、出上清液,将上清夜转入新的1.5 ml离心管,加入等体积的异丙醇,轻轻颠倒混匀,室温静置 5 分钟。 (15ml 离心管用7,500rpm 离心20min)4.4, 12000 rpm 离心 10 分钟后,去上清,向沉淀中加入2/5 体积的 70% 乙醇, 4 ,12000 rpm 离心洗涤沉淀15 分钟。 (15ml 离心管用7,500rpm 离心 20min)5.去上清,沉淀室温晾干后加入适量无RNA酶的水充分溶解沉淀,测定OD260和 OD280值。( optional) 对于从组织样本抽提的总 RNA,为了更好的去除基因组DNA 的污染, 可以采用无 RNA 酶的 DNA酶 I 处理,
3、从而提高样品纯度。二、总 RNA 质量检测(琼脂糖电泳以及Lab-on-a-chip 电泳检测 )(一)琼脂糖胶电泳1、配置用 DEPC 处理的电泳缓冲液 50 TAE ,高压灭菌后待用。2、使用电泳槽前用3H2O2浸泡 15min,然后用 DEPC处理的水冲洗,倒入适量1 TAE电泳缓冲液。3、称取适量琼脂糖,加入1 TAE电泳缓冲液,制备1的胶(注意使用专用的溶液和相关设备,避免引入外源RNA 酶) 。4、用专用 6 Loading buffer做指示剂,取 10l 上样电泳(电压 100 伏)15min。5、关闭电源,取出电泳胶,在凝胶成像仪上观测、拍照,保存图像。6、评价总 RNA或
4、mRNA 质量(见 FAQ ) 。通过目测28S 和 18S 的亮度比例可以初步评价总RNA的质量。一般认为名师资料总结 - - -精品资料欢迎下载 - - - - - - - - - - - - - - - - - - 名师精心整理 - - - - - - - 第 2 页,共 8 页 - - - - - - - - - 28S:18S 2 可以初步判定总 RNA 质量较好,如图1 所示。图 1 1agrose 胶电泳人胎盘总RNA28S 18S (二) Lab-on-chip 1、胶制备取出 400l RNA gel Matrix,加入Spinfiter柱子,离心过滤凝胶(1500 g, 1
5、0min ) 。2、 取出 130l 过滤胶到 1.5mlEppendorf 管中,再加入 2lRNA Dye Concentrate ,在 vortexer上振荡混匀。3、用 RNA ZAP 清洁操作区,同时在Electrode cleaner中加入 350lZAP,放入Lab on chip正确位置,合盖清洁探头1min。4、再用另外一 Electrode cleaner中加入 350lDEPC 处理的H2O,重复步骤 3。5、移开 Electrode cleaner,让探头自然干燥。6、取出一新的 RNA Chip,吸取 9l 步骤 2 制备的凝胶加入 G 孔中。7、 将 chip 放置
6、于带有活塞(plunger) 的水平台上(chip priming station) , 将 plunger拉杆向上拉倒 1ml 刻度出,再将 chip priming station 的盖子合上,压紧chip。同时向下推动拉杆至底部并维持30 秒左右,松开让拉杆自动弹开。8、从 chip priming station 上取出 chip,用放大镜检查是否有气泡存在,如果在微通道中有气泡, 需要重复步骤 7。再在标有 G 的两个孔中各加入9l 步骤 2 制备的凝胶,在标有的孔中加入5Lrna 6000 Nano Marker 。同时在 12 个加sample 的孔中滴加 5l RNA 6000
7、 Nano Marker (不能空一个孔) 。9、取 1l RNA 6000 ladder 滴加到标有的孔中,再各取1l 样品( RNA )名师资料总结 - - -精品资料欢迎下载 - - - - - - - - - - - - - - - - - - 名师精心整理 - - - - - - - 第 3 页,共 8 页 - - - - - - - - - 加入 12 个样品孔中,并将chip 放入 IKA Vortexer上,在 set-point振幅处振动 1min(注意:必须卡紧 chip ,否则在振动过程中会跳出来) 。10、振荡好后的 chip 在 5min 之内必须放入 Agilent
8、 2100分析仪上,按照软件提示进行 RNA 电泳操作。11、评价 RNA 质量。见( FAQ )如图 3 所示,为经过 Agilent 2100分析得到的完整的人胎盘总RNA 。Fluor escenceTime (seconds)0510152025 19 24 29 34 39 44 49 54 59 64 69具体操作步骤参考人cDNA表达谱芯片使用手册, SBC-H-HC-100-22 ,具体结果见样品质检报告 。 Lab-on-chip参照 Agilent 2100 分析仪操作手册, 制备凝胶, 按照软件提示进行RNA电泳操作,评价RNA 质量。三、总 RNA 的纯化(QIAGEN
9、 RNeasy Mini Kit)如果总RNA的纯度不高,会影响探针的标记效率和芯片杂交结果。所以使用QIAGEN RNeasyKit 纯化总 RNA ,详细操作原理和方法见RNeasy Mini Protocol 。1、取总 RNA100 g 溶解于 100 l RNase free 水中,加入350 lBuffer RLT 并充分混匀。2、加入 250 l 无水乙醇, Tip 头充分混匀。3、将共计 700 l 含总 RNA 的溶液转入套在2 ml 离心管内的RNeasy 柱子内,8000 g 离心15-30sec,弃去滤过液。4、吸取 500 lBuffer RPE 到 RNeasy m
10、ini 柱子内,8000 g 离心洗涤1530sec,弃去滤过液, 再用 500 lBuffer RPE 在 8000 g 离心洗涤 2 min, 弃去滤过液和2 ml 的套管,将 RNeasy mini 柱子转入一新的1.5 mlEppendorf 管中。5、吸取40 lRNase free 的水,8000 g 离心洗脱 1 min。6、重复步骤5 一次。四、cDNA 第一链和第二链一步法合成1、 取 2ug total RNA 于 1.5ml 离心管中,如下配置反应溶液:名师资料总结 - - -精品资料欢迎下载 - - - - - - - - - - - - - - - - - - 名师精
11、心整理 - - - - - - - 第 4 页,共 8 页 - - - - - - - - - 总 RNA 2ug T7 Promotor primer 5ul Rnase-free Water X ul 总体积11.5ul 2、 65保温 10 分钟,冰浴5 分钟注意:5First Strand Buffer 在使用之前于65保温 3-4 分钟,并震荡混匀后离心。3、 配置如下 cDNA合成体系:5First Strand Buffer 4ul 0.1M DTT 2ul 10mM dNTP mix 1ul MMLV-RT 1ul RNase OUT 0.5ul 总体积8.5ul 2.2r(u
- 配套讲稿:
如PPT文件的首页显示word图标,表示该PPT已包含配套word讲稿。双击word图标可打开word文档。
- 特殊限制:
部分文档作品中含有的国旗、国徽等图片,仅作为作品整体效果示例展示,禁止商用。设计者仅对作品中独创性部分享有著作权。
- 关 键 词:
- 2022年Agilent实验原理及步骤收 2022 Agilent 实验 原理 步骤
限制150内