2022年第三章细胞生物学研究方法总结.docx
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1、精选学习资料 - - - - - - - - - 第三章 细胞生物学讨论方法第一节 细胞形状结构的观看方法辨论率:肉眼 0.2mm 光镜 0.2 m 电镜 0.2nm 一、光学显微镜技术( light microscopy )(一)一般复式光学显微镜技术a光学放大系统:目镜和物镜光镜 照明系统:光源、折光镜和聚光镜,有时另加各种滤光片组成 机械和支架系统b辨论率 D:分开两个质点间的最小距离;伊红和美蓝: 特异结合061 其中: 为光源波长 蛋白质; 品红特异显示D 为物镜镜口张角 DNA 所在部位;Nsin /2 N 为介质折射率 c. 一般光镜样品制备:固定(如甲醛) 、包埋(如石蜡) 、
2、切片(约 5 m)、染色(二)荧光显微镜技术(fluorescence microscopy 光镜水平对特异蛋白定性定位)1 FM 包括免疫荧光技术和荧光素直接标记技术2 不同荧光素的激发光波长范畴不同,所以同一样品可以同时用两种以上荧光素标记;荧光显微镜中只有激发荧光可以成像;(三)激光共焦点扫描显微镜技术(laser scanning confocal microscopy )1特点:瞬时只用很小一部分光照明,保证只有来自焦平面的光成像,成像清楚 辨论率比一般荧光显微镜提高 1.41.7 倍;通过转变焦平面位置可以观看较厚样品的内部构造,进行三维重构;2 共焦点是指物镜和聚光镜同时聚焦到同
3、一小点;(四)相差和微分干涉显微镜技术 1相差显微镜(phase-contrast microscopy)光线通过不同密度物质产生相位差,相差显微镜将其变成振幅差;它与一般光镜的不同是其物镜后有一块“ 相差板”,夸大了不同密度造成的相位差;2微分干涉显微镜(differential interference microscopy )用的是平面偏振光光经棱镜折射成两束,通过样品相邻部位,再经棱镜汇合, 使样品厚度上的微小差别转化为明暗区分,使样品产生很强的立体感;二、电子显微镜技术(electron microscope)(一)电子显微镜基本学问1与光镜的基本区分:电子束作光源、电磁透镜聚焦、镜
4、筒高真空、荧光屏等成像2辨论本事与有效放大倍数:辨论率 0.2nm,比肉眼放大 10 6 倍 有效放大倍数辨论本事指电镜处于正确状态下的辨论率;实际情形中,辨论率受样品限制;3电子显微镜 电子束照明系统:电子枪、聚光镜基本构造 成像系统:物镜、中间镜、投影镜等真空系统:用两级真空泵不断抽气记录系统:荧光屏或感光胶片成像(二)主要电镜制样技术介绍制样要求:要求样品很薄(数十纳米)要求保持精细结构1超薄切片技术固定:保持样品形状结构,甚至超微和分子水平上结构;固定剂:常用饿酸(OsO4)和戊二醛等,另外有物理方法如高频微波;名师归纳总结 - - - - - - -第 1 页,共 4 页精选学习资料
5、 - - - - - - - - - 脱水包埋:使样品中各种微小结构得到支撑,使切片连续完整并有足够强度;包埋剂常用环氧树脂;切片:厚度 40-50nm,通过样品杆的金属热膨胀或机械伸缩来掌握;切片刀:玻璃或钻石刀,常用玻璃刀;切片置于覆有支持膜的载网上;染色:用重金属盐染色;如锇酸染脂肪、铅盐染蛋白质、醋酸铀染核酸等;通过电子束振幅的转变只能得到黑白图像;2负染色技术(negative staining )仍可以与其他技术结合;用的是重金属盐,如磷钨酸或醋酸双氧铀,载网上铺上重金属盐,衬托出样品;3冷冻断裂和冷冻蚀刻电镜技术 冷冻断裂:快速低温冷冻样品(液氮或液氦中),然后样品在其结构相对脆
6、弱的部 位断裂;用另一些方法增强成效;冷冻蚀刻( freeze etching):主要用来观看膜断裂面的蛋白颗粒和膜表面结构,不需包埋也不需固定;冷冻深度蚀刻技术(quick freeze deep etching)4电镜三维重构技术 基本步骤:对生物样品在电镜中的不同倾角下拍照,得到的电镜图片再经变换处理 形成复合物三维结构的电子密度图;低温电镜技术、玻璃态、结构生物学;5扫描电镜技术(scanning electron microscope ,SEM )主要用来观看样品表面的形貌特点,用CO 2临界点干燥法解决表面张力问题;扫描电镜景深长,成像具有剧烈的立体感;辨论本事可达 0.7nm ;
7、三、扫描隧道显微镜(scanning tunneling microscope ,STM )利用量子力学中的隧道效应观测物质表面的形貌;主要装置: XYZ 三个方向扫描的压电陶瓷、靠近装置、电子学反馈掌握系统和数据采集、处理、显示系统;主要特点:原子原子尺度的高辨论本事,侧辨论率0.1-0.2nm,纵辨论率 0.001nm 可以在真空、大气、液体等多种条件下工作;非破坏性测量;其次节原子力显微镜(atomic force microscope )等十余种扫描探针显微镜;细胞组分的分析方法一、用超速离心技术分别细胞器与生物大分子及其复合物 差速离心( differential centrifug
8、ation ):利用不同的离心速度所产生的不同离心力,将各种亚细胞组分和各种颗粒分开;密度梯度离心: 将要分别的组分铺放在含有密度逐步增加的、形成密度梯度的、高溶解性的、惰性物质溶液表面进行离心,形成不同的沉降带;二、细胞内核酸、蛋白质、酶、糖类与脂质等的显示方法 利用显色剂与被检物质的特别基团反应显色来判定;DNA :福尔根( Feulgen)反应特异显示 DNA 分布;多糖: PAS 反应(即醛基与希夫 脂肪酸:四氧化饿(结果呈黑色)蛋白质:许多检测方法,如米伦(schiff 试剂反应呈紫红色)、苏丹(深红色) 、苏丹黑 Millon )反应(红色沉淀) 、重氮反应、 “ SH”酶:大多数
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