试验一人基因组DNA的提取.doc

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1、Four short words sum up what has lifted most successful individuals above the crowd: a little bit more.-author-date试验一人基因组DNA的提取试验一人基因组DNA的提取第二篇细胞的遗传物质第一章细胞内核酸的提取人类基因组计划的完成以及后基因组学研究的不断深入，标志着现代医学的发展已逐步进入“基因组医学”的时代。疾病分子机制的研究也将为包括疾病的分子诊断、分子治疗在内容的“分子医学”的发展提供动力。核酸是遗传信息以及基因表达的物质基础，是重要的生物信息分子,也是分子生物学研究的主要对

2、象。它与生命的正常活动，如种族遗传、生长等有密切联系；它与生命的异常活动，如肿瘤的发生、放射损伤以及抗癌、抗病毒药物的作用机理等也有密切的关系。因此，核酸是现代生命科学体系中重点研究的课题之一。核酸分为DNA和RNA两大类。核酸的提取是分子生物学实验技术中基本的操作之一，第一节真核细胞基因组DNA的分离与纯化DNA主要在细胞核内，核外也有少量称为核外基因的线粒体DNA等。真核细胞的DNA分子比原核生物的DNA分子大得多，并且以核蛋白体形式存在于细胞中。真核细胞基因组DNA提取的主要步骤包括裂解和纯化两大步骤。裂解是使样品中的核酸游离在裂解体系中的过程，纯化则是去除体系中的其它成分，如蛋白质、多

3、糖、脂类及其它不需要的核酸（RNA）等生物大分子的过程。一、裂解细胞破碎的手段常为超声波、组织匀浆、液氮破碎以及包埋组织的超薄切片等方法。为了获得大量完整的DNA，一般采用裂解液等温和的方法破碎细胞。裂解液一般都含有去污剂 (如 SDS、Triton X-100、NP-40、Tween 20 等) 和盐 (如 Tris、EDTA、NaCl 等)。去污剂的作用是通过使蛋白质变性，破坏膜结构及去除与核酸相连接的蛋白质，从而实现核酸游离在裂解体系中。盐的作用，一方面提供一个合适的裂解环境 (如 Tris)，另一方面可抑制核酸酶在裂解过程中对核酸的破坏 (如 EDTA)、维持核酸结构的稳定 (如 Na

4、Cl) 。裂解体系中还可以加入蛋白酶；利用蛋白酶将蛋白质消化成小的片段，促进核酸与蛋白质的分开，便于后面的纯化操作以及获得更纯的核酸。二、纯化根据DNA本身的特征使用不同方法进行核酸提纯。三、DNA提取的实验步骤（一）材料与设备1.试剂 消化液（100mmol/L NaCl,10mmol/L Tris-HCl，pH8.0，25mmol/L EDTA，0.5%SDS，0.1mg/ml蛋白酶K）；pH8.0，25mmol/L EDTA；PBS；TES饱和酚；氯仿；异戊醇； 95%乙醇溶液；70%乙醇溶液；TE；0.1%SDS；1g/ml RNA酶；2.仪器 培养皿、培养瓶、微量离心管、滴管；刻度吸

5、管；加样器；枪头；离心机、液氮罐、组织匀浆器、恒温培养箱（二）主要步骤1.如果材料为组织块，可将组织块（约2001000mg）剪碎后，置入液氮中。随后用冰冷的组织捣碎器捣碎，每100mg组织加入1.2ml消化液（100mmol/L NaCl,10mmol/L Tris-HCl，pH8.0，25mmol/L EDTA，0.5%SDS，0.1mg/ml蛋白酶K）。2.如果材料是悬浮细胞，收集细胞于微量离心管中，500g5min离心；如果材料是贴壁细胞，弃上清后，胰酶消化收集细胞，500g5min离心。随后用冰冷的PBS缓冲液洗涤细胞，500g5min离心，弃上清，重复一次，并用一倍体积的消化液重悬

6、细胞。3.组织或细胞混悬液移入带盖的离心管中，50消化1218h。4.冷却至4，加等体积15 mo1L TES饱和酚。5.轻轻振摇，使水相和酚层充分混匀。6. 45000rpm8000rpm离心15min20min。此时DNA溶液在上层，酚位于下层，中间是变性蛋白层。7.用吸管小心吸取上层粘稠溶液，移至另一离心管。注意尽量不要带出中间蛋白层。8. DNA溶液再加等体积15 mo1L TES饱和酚抽提一次，按6、7离心并吸至另一离心管。9.加等体积氯仿/异戊醇按步骤（5、6）抽提，离心5min。10.吸出DNA溶液后，再步骤（9）抽提一次。11.用吸管将DNA溶液移至Eppendorf中，冰浴至

7、0。12.加2.5倍体积95%冷乙醇震摇，可见DNA白色沉淀析出。13.用75%冷乙醇清洗34次。14.室温干燥或冷冻干燥DNA。15.加适量TE溶液溶解DNA。四、结果鉴定1紫外分光光度计检测：可检测DNA的纯度和含量。一般而言核酸在260nm时吸光度最大，而蛋白质在280nm时吸光度最大。取2l DNA溶解液，适量稀释，紫外分光光度计测定260nm、280nmOD值，计算OD260/OD280比值，比值在1.72.0:1之间，说明DNA纯度可。在260nm处，1OD双链DNA的浓度为50mg /ml，据此可计算DNA的浓度（mg /ml）=50(OD260) 稀释倍数。2电泳检测：可检测核

8、酸的完整性和大小。取2l DNA溶解液与适量上样缓冲液混合后，经1%琼脂糖凝胶电泳。电泳结束后紫外光下观察，拍照；如果观察到一条清晰的电泳带，无明显的拖尾，说明DNA完整性好。第二节真核细胞总RNA的分离提取RNA是基因表达产物，由以下几类分子组成，rRNA（占细胞总RNA的80%85%）、tRNA和核内小分子RNA（占1015%）、mRNA（占15%）。其中mRNA是分子生物学的主要研究对象，分离制备mRNA是克隆基因，分析基因表达以及建立cDNA文库的首要步骤。真核细胞总RNA分离提取的目的是要获得高纯度的具有充分长度的RNA分子，包括RNA的纯度和完整性。RNA分离的关键是尽量减少RNA

9、酶的污染。RNA酶活性非常稳定，分布广泛，除细胞内源性的RNA酶外，环境中也存在RNA酶。因此在提取RNA时，应尽量创造一个无RNA酶的环境，包括去除外源性RNA酶的污染和抑制内源性RNA酶活性。主要是采用RNA酶的阻抑蛋白RNasin和强力的蛋白质变性剂盐酸胍或异硫氰酸胍抑制内源性RNA酶，采用焦碳酸二乙酯（DEPC）去除外源性RNA酶。一、RNA提取 的关键真核细胞RNA的提取过程有四个关键点，即样品（细胞或组织）的有效破碎；有效地使核蛋白复合体变性；对内源RNA酶的有效抑制；有效地将RNA从DNA和蛋白混合物中分离；其中最关键的是抑制酶活性。提取的RNA可以用于核酸杂交、cDNA合成以及

10、体外翻译等。二、组织RNA提取的基本步骤1.仪器：匀浆器、低温离心机、离心管。2.试剂：氯仿、75%乙醇、异丙醇、DEPC溶液、1%甲醛变性胶、37%甲醛、3%过氧化氢、甲酰胺、RNA上样缓冲液。3.主要步骤（1）取组织50100mg，加0.8ml Trizol冲洗匀浆器，移入同一离心管，冰上静置5min。（2）加0.2ml氯仿，充分震荡混匀，静置3min，4，12000g15min离心。弃沉淀。（3）取上清，加入0.5ml异丙醇，颠倒混匀。20静置2h，4，12000g10min离心。（4）弃上清，取沉淀，加入1ml 75%乙醇溶液，漂洗沉淀，4，7500g5min离心。（5）弃上清，沉淀真

11、空干燥10min。（6）加40l DEPC溶液，充分溶解RNA。4.结果鉴定（1）紫外分光光度计检测：取RNA溶解液，按一定比例稀释后，紫外分光光度计测定260nm、280nmOD值，计算OD260/OD280比值，如果比值在1.72.0：1之间，说明RNA纯度可。标准样品当OD2601时，RNA浓度约为40g/ml，根据下述公式计算RNA浓度：RNA浓度（g/ml）OD260稀释倍数40。（2）电泳检测：1%甲醛变性胶电泳观察RNA质量，电泳槽及制胶板先用3%过氧化氢浸泡过夜；制1%甲醛变性凝胶板：4.5l RNA，2ul 5甲醛胶电泳缓冲液，3.5l 37%甲醛，10ul甲酰胺，离心混匀，

12、65变性15min后，迅速置冰浴中；再加入2l RNA上样缓冲液，离心混匀后上样，6V/cm电压，电泳12h；暗室内紫外光下观察，拍照；如果观察到清晰的18S、28S RNA电泳带，无大量小分子RNA，说明RNA无明显降解，样品70保存备用。三、注意事项1、所有玻璃器皿160180高温干烤6h以上，非耐高温器皿经0.1% DEPC液浸泡后，经高温（15磅，20min）处理灭活RNA酶，所用试剂均用DEPC水配制，然后高压处理。2、实验用水要经DEPC处理，但含Tris的试剂不能用DEPC处理。3、实验操作过程中要戴一次性手套，以避免RNA酶污染。第三节 质粒DNA的碱裂解法提取与纯化细菌质粒是

13、一类双链共价闭合环状、大小约1kb200kb 的DNA，存在于细胞质中、独立于细胞染色体之外的可自主复制的遗传成份。通常情况下可持续稳定地处于染色体外的游离状态，但在一定条件下也会可逆地整合到寄主染色体上，随着染色体的复制而复制，并通过细胞分裂传递到后代。质粒是目前最常用的基因克隆的载体分子之一，获得大量纯化的质粒DNA是基因克隆的前提条件。一、碱裂解法提取质粒DNA的原理 碱裂解法是一种应用最为广泛的制备质粒DNA的方法，其基本原理为：共价闭合环状DNA与线性DNA的拓扑学性质不同。在PH1212.5时,线性DNA会完全变性,而共价闭合环状DNA只是氢键断裂，经酸中和后，共价闭合环状DNA可

14、迅速准确的复性。而线性DNA不能准确复性，只能聚合成网状结构，离心后与变性的蛋白质、RNA一起沉淀下来。上清液中的质粒DNA可用乙醇沉淀出来。二、基本步骤1材料：含质粒的大肠杆菌2试剂：溶液（ 50mM葡萄糖，25mM Tris-HCl(pH 8.0)，10mM EDTA(pH 8.0）)、溶液（0.2N NaOH，1% SDS）用时临时配制。pH 4.8的醋酸钾（KAc）缓冲液（5M KAc 300ml，冰醋酸 57.5ml，加ddH2O至500ml）、 TE缓冲液（10mM Tris-HCl(pH 8.0)，1mM EDTA(pH 8.0)）、苯酚/氯仿/异戊醇（25：24：1）、乙醇（无

15、水乙醇、70%乙醇）、 5TBE（Tris 碱54g，硼酸27.5g，EDTA-Na22H2O 4.65g，加ddH2O 至1000ml）。10mg/ml溴化乙锭（EB）、琼脂糖、10mg/ml RNase A（RNA酶A）、6上样缓冲液（0.25%溴酚蓝，0.25%二甲苯青FF，40%（W/V）蔗糖水溶液）。3仪器：离心机、电泳仪、水平式电泳槽 4.主要步骤 （1）挑取LB固体培养基上生长的大肠杆菌单菌落，接种于2.0ml LB（含相应抗生素）液体培养基中，37振荡培养过夜。（2）取1.5ml培养物转移入微量离心管中，室温离心8000g1min，弃上清，将离心管倒置，使液体尽可能流尽。（3）

16、将细菌沉淀重悬于100l预冷的溶液中，剧烈振荡。（4）加200l新鲜配制的溶液于离心管中，颠倒数次混匀（不要剧烈振荡），并将离心管放置于冰上2-3min，使细胞膜充分裂解。（5）加入150l预冷的醋酸钾（KAc）缓冲液，将管温和颠倒数次混匀，见白色絮状沉淀，可在冰上放置3-5min。（6）加入450l的苯酚/氯仿/异戊醇混合液，振荡混匀，4离心12000g 10min。（7）小心移出上清于另一微量离心管中，加入2.5倍体积预冷的无水乙醇，混匀，室温放置2-5min，4离心12000g15min。（8）加入1ml预冷的70%乙醇洗涤沉淀2次，4离心8000g7min，弃上清，将沉淀在室温下晾干。

17、（9）沉淀溶于20l TE（含RNase A 20g/ml），37水浴30min以降解RNA分子，-20保存备用。5.结果鉴定：1%琼脂糖凝胶电泳检测。方法同前核酸DNA的鉴定。第四节线粒体DNA的提取线粒体DNA是染色体遗传物质，哺乳类动物的线粒体DNA为共价闭合环状的双链DNA。它变异快、结构相对简单，经母系遗传，对真核生物基因组的结构、复制、转录、调控机理等方面都起着重要作用。近年来被广泛用于近缘种间或种内种群间亲缘关系的研究。线粒体DNA最早是用氯化铯梯度离心方法获得，该法提取的线粒体DNA纯度高，但所需仪器设备昂贵，实验周期长，限制其在群体遗传研究中的应用。继而出现了Triton法、

18、碱变性法与改进高盐沉淀法等线粒体DNA的提取方法。一、碱变性法线粒体DNA提取的原理 线粒体DNA的结构与质粒DNA的结构相似，均为共价闭合环状的双链DNA，实验原理与质粒DNA提取相同 。二、主要实验步骤1、材料：新鲜小鼠肝组织2、仪器：玻璃匀浆器、高速离心机、离心管、吸管3、试剂：50mmol/L葡萄糖、10mmol/L Na2EDTA，25mmol/L Tris-HCl pH8.0、1%SDS、0.2N NaOH、3M NaAc pH4.8、95%乙醇、75%乙醇、TE缓冲液4、主要步骤（1）取50mg新鲜小鼠肝组织，加1ml冷匀浆液，用玻璃匀浆器匀浆，随即以1000g3min， 4，离

19、心，弃沉淀。（2）取上清，12000g10min，4，离心，沉淀即为粗线粒体。（3）将沉淀溶于100ml（50mmol/L葡萄糖、10mmol/L Na2EDTA，25mmol/L Tris-HCl pH8.0）溶液中，充分混匀。（4）加200ml新鲜配制的（1%SDS，0.2N NaOH）溶液，轻轻摇匀，冰浴5min。（5）再加150ml（3M NaAc pH4.8）溶液，轻轻摇匀，冰浴5min。12000g10min，4，离心（6）取上清加等体积（酚、氯仿、异戊醇之体积比为25:24:1）溶液，抽提24次，界面无白色物质，10000g5min离心。（7）取上清加2倍体积95%乙醇，室温静置15min，然后12000g10min离心。（8）弃上清，沉淀用75%乙醇洗涤1次，以12000g5min离心。（9）弃上清，取沉淀，真空干燥后即得线粒体DNA。将其溶于适量的TE缓冲液中，20保存。5.实验结果鉴定用紫外分光光度仪测定，A260：A280为2.0左右。若纯度较高，能直接用限制性内切酶进行酶切图谱分析。（上海中医药大学王晓玲）-