流式细胞仪检测细胞周期操作技巧步骤.doc
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1、.-流式细胞仪检测细胞周期操作步骤取对数生长期的A549细胞,按1106 cells/ mL以1mL接种于100mm培养皿内24h后,进行所需的处理(比如加药,照射)特定时间后终止培养,进行下一步的实验收集原培养液,洗后的PBS和消化后的细胞,将三者混匀放入15ml离心管中1000rpm离心5min(短时低速离心)弃上清,用1.5ml预冷PBS,1000rpm离心5min后去除PBS和细胞悬液内的细胞碎片加入1.5ml预冷PBS,在涡旋状态下加入3.5ml无水乙醇,混匀后,于4固定30min,或-20长期保存。1000r/min,离心5min将乙醇吸除,加PBS清洗混匀1000r/min,5m
2、in再离心一遍,将残留在细胞上的乙醇除去吸除离心管内PBS,加入200ul PBS和2ul的RNA酶(0.25mg/ml)(37下孵育30min)加入0.5ml的50ug/ml的PI溶液室温下避光染色30min 将离心管内的细胞过滤(300um尼龙网膜)至含有PBS的EP管中(PI具有很强的粘附性,容易使细胞聚团),标记EP管提前一天网上预约开机(先开仪器后开软件)流式细胞仪的结构一般分为5部分:流动室及液流驱动系统; 激光光源及光束成形系统; 光学系统; 信号检测、存贮、显示、分析系统; 细胞分选系统。检测前先涡旋使细胞混匀悬浮呈单个细胞,然后插入流式细胞仪上流动室内充满鞘液,细胞排成单列由
3、喷嘴中心喷出,形成细胞液柱液柱与激光束相交,细胞上的荧光染料被激发产生荧光(488nm激发光源)荧光信号变成电信号输出到计算机,软件分析(荧光染料和细胞DNA分子特异性结合,可以检测出细胞周期各时相细胞比例)在用第三方软件分析之前,将流式结果按如下所示导出结果分析Modfit软件分析Flowjo软件分析FCM-DNA 量分析 1 个细胞增殖群时,可将DNA 含量分布组方图分为三部分,即 G0/1、S、G2M。G0/1和G2M 细胞峰的 DNA 分布均为正态分布,S 期可以认为是一个加宽的正态分布检测结果刻录光盘保存关机(先关软件后关仪器,关机前需清洗)正常细胞DNA含量:2n-4n凋亡细胞:核
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