最新Western-Blot蛋白免疫印迹法.doc

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1、精品资料Western-Blot蛋白免疫印迹法.3 Western blot3.1 试剂配制1）30%聚丙烯酰胺储备液（Acr/Bis）：丙烯酰胺（Acr），29g；N,N-亚甲基双丙烯酰胺（Bis），1g，去离子水溶解，37水浴助溶，定容至100mL。0.45m滤器过滤，棕色瓶4避光保存。2）10%十二烷基硫酸钠（SDS）：SDS，10g；H2O，80mL。68加热溶解，浓HCl调pH至7.2，定容至100mL，室温保存。3）10%过硫酸铵（AP）：AP，1g；H2O，10mL。避光，4保存。（42周）4）分离胶缓冲液（1.5MTris-HCl pH8.8）：Tris，18.17g；H2O

2、80mL。用浓HCl调pH至8.8，定容至100mL，4保存。5） 浓缩胶缓冲液（1.0MTris-HCl pH6.8）：Tris，12.11g；H2O 80mL。用浓HCl调pH至6.8，定容至100mL，4保存。6） 电泳缓冲液（10）：甘氨酸（Glycine），188g；Tris 30.2g；SDS，10g；H2O，800mL。调节pH至8.3，定容至1L，4保存（用时稀释为1）。7）5SDS-PAGEloadingBuffer（5mL）：1MTris-HCl（pH6.8），1.25mL；SDS，0.5g；溴酚蓝（BPB），25mg；甘油，2.5mL；加去离子水定容至5mL。充分混匀，分

3、装成500L/份，室温保存。使用前每份加入25L-巯基乙醇（2-ME），加入2-ME的loading buffer可在室温下保存一个月左右。8） 考马斯亮蓝染色固定液：40%双蒸水, 10% 醋酸, 50%甲醇，室温保存9） 考马斯亮蓝染色液：考马斯亮蓝R-250，250mg；甲醇，45ml；冰醋酸，10ml；H2O，定容至100ml。室温保存。10） 考马斯亮蓝染色脱色液：醋酸，100ml；乙醇，50ml；dH2O 850ml，充分混合，室温保存11） 膜转移缓冲液：甘氨酸，2.9g；Tris，5.8g；SDS，0.37g；加H2O 600mL充分溶解，加200mL甲醇，混匀，定容至1L，室

4、温保存。12） TBS缓冲液：NaCl，8.8g；1M Tis-HCL(pH 8.0)，20ml，加入约800 H2O搅拌溶解，定容至1L，4保存。13） TBST缓冲液：NaCl，8.8g；1M Tis-HCL(pH 8.0)，20ml，加入约800 H2O搅拌溶解，加入0.5 ml Tween 20后充分混匀，去离子水定容至1L，4保存。14）1M Tis-HCL(pH 8.0)：Tris 121.1g 置于1L烧杯，加入约800ml去离子水，充分搅拌，加入浓HCL约42ml ，定容至1L，高压灭菌，室温保存。3.2 Western blot电泳、转膜及显色过程3.2.1 清洗将玻璃板洗净

5、，用ddH2O冲洗，然后晾干。封板时保证支架与底座胶条契合，固定时两边同时均匀用力旋动齿轮把手，固定即可，不要用力过大以免压碎玻璃。封好后可装ddH2O试试，确定不漏后再灌胶。2、制胶SDS-PAGE分离胶配方表（12% Gel）各种组分名称各种凝胶体积对应的各种组分的取样量(ml)10 ml15 ml20 mlH2O3.34.96.630%Acrylamide4.06.08.01.5MTris-Hcl (pH8.8)2.53.85.010% SDS0.10.150.210%过硫酸铵（AP）0.10.150.2TEMED0.0040.0060.008SDS-PAGE浓缩胶（5% Acrylam

6、ide）配方表各种组分名称各种凝胶体积对应的各种组分的取样量(ml)4 ml5 ml6 mlH2O2.73.44.130%Acrylamide0.670.831.01.0MTris-Hcl (pH6.8)0.50.630.7510% SDS0.040.050.0610%过硫酸铵（AP）0.040.050.06TEMED0.0040.0050.0063、封胶按前面方法配分离胶，加入TEMED后立即摇匀即可灌胶。灌入2/3的分离胶后应立即封胶，胶上加一层水，液封后的胶凝的更快。（灌胶时开始可快一些，胶面快到所需高度时要放慢速度。操作时胶一定要沿玻璃板流下，这样胶中才不会有气泡。加水液封时要很慢，否

7、则胶会被冲变型。当水和胶之间有一条折射线时，说明胶已凝了（至少等30-40min）。再等3min使胶充分凝固就可倒去胶上层水并用吸水纸将水吸干。按前面方法配5%的浓缩胶,加入TEMED后立即摇匀即可灌胶。将剩余空间灌满浓缩胶然后将梳子插入浓缩胶中。灌胶时也要使胶沿玻璃板流下以免胶中有气泡产生。插梳子时要使梳子保持水平。由于胶凝固时体积会收缩减小，从而使加样孔的上样体积减小，所以在浓缩胶凝固的过程中要经常在两边补胶。4、拔梳子灌好浓缩胶，约40-60min凝胶后均匀用力拔除梳子，若上样孔有变形，可用适当粗细的针头拨正。5、上样测完蛋白浓度后，计算含20-40g蛋白的溶液体积即为上样量。取出上样样

8、品至0.5ml离心管中，加入5SDS上样缓冲液至终浓度为1。将加入loading buffer的蛋白样品放沸水中煮5-10分钟，高速离心30s即可上样。上样总体积一般不超过15l，加样孔的最大限度可加30l体积。加足够的电泳液后开始准备上样，电泳液至少要漫过内测的小玻璃板，外侧漠过底部。所有蛋白样品调至等浓度后上样，样品两侧的泳道用等体积的1loading buffer上样。非预染蛋白Maker准备：1M DTT 2l与5loading buffer 20l混合成稀释液22l,然后再加入protein MW maker（LOW）5l、灭菌蒸馏水73l,混合成蛋白Maker,混合均匀后，煮沸处理

9、5min，分装-20保存，取5l进行10%-15%凝胶电泳。6、电泳先稳流30mA电泳至上下胶分界时改稳流45mA直接调总时间1.5h，到时候直接调电流。当loading buffer泳动到胶下缘时结束。电泳时间较长时，应用冰块放电泳槽两边防止溶胶。7、转膜剥胶：轻启玻璃板，将胶卸下，切除浓缩胶及无用胶，右上切角标记，在冷的电转液中平衡20-60min。材料准备：转一张膜需要2张滤纸（伯乐专用滤纸）和1张0.45um PVDF膜，切滤纸和膜时一定要戴手套，因为手上的蛋白会污染膜。将切好的硝酸纤维素膜置于水上浸2h才可使用。用镊子捏住膜的一边轻轻置于有超纯水的平皿里，要使膜浮于水上，只有下层才与

10、水接触。这样由于毛细管作用可使整个膜浸湿。若膜沉入水里，膜与水之间形成一层空气膜，这样会阻止膜吸水。处理：将与胶同样大小的滤纸放在转移液中浸泡片刻，PVDF膜需浸泡甲醇1-2min，再孵育于冰的电转液中5min。电转仪转膜：A、打开保护罩，按照如下准备凝胶三明治：B、从底部铂金正极开始放置：l 预湿-滤纸l 预湿-膜l 已平衡的胶l 预湿-滤纸注意：每层之间赶走气泡C、连接顶部不锈钢阴极，盖上保护罩D、不同蛋白需要不同优化的条件：参考范围：小胶 10V 30min 或者15V 15min大胶 25V 30min 或者15V 60min注意：当前不要超过25V，且大胶不要超过3mA/cm2、小胶

11、不要超过5.5 mA/cm2E、关闭电源，拔掉电极，移除胶注：为了防止溶胶，可将转移缓冲液提前放4冰箱预冷过夜膜上蛋白检测：丽春红2%的丽春红储备液（10）：0.4g丽春红、6g三氯乙酸、6g磺基水杨酸溶于20ml。丽春红染色工作液：2%的丽春红储备液1:10稀释，即加9倍的ddH2O染色方法：将膜放入TBST洗一次，再置于丽春红染色工作液中，在室温下摇动染色5分钟，大量的水洗膜直至水变清无色，marker条带处用铅笔做好标记。回收PVDF膜需用甲醇再活化后用TBST洗后进行封闭。8、膜的封闭膜用TBST洗完后，移至含有封闭液加入一定量的磷酸酶抑制剂1-2ul/20ml的平皿中，室温下脱色摇床

12、上摇动封闭1h。再用TBST洗5秒，进入下一步抗体的孵育。配制5%脱脂奶粉或BSA溶液：每100ml TBST中加入5g脱脂奶粉或BSA，混匀后过滤，如不过滤会导致膜污染上细微黑颗粒。9、一抗的孵育一抗的准备：将一抗按适当的比例用抗体稀释液稀释。加入一定量的磷酸酶抑制剂1-2ul/20ml孵育buffer：按抗体说明书建议的稀释倍数，用TBST稀释一抗。一般参考推荐的稀释倍数1:100-1:3000，1:1000一抗浓度过高会导致产生非特异性条带。将PVDF膜浸没于含有一抗的抗体稀释液中室温（25左右）轻摇3小时或放4冰箱过夜。若放入4冰箱过夜则第二天还应放室温缓慢摇荡1小时。10、洗涤：一抗

13、孵育结束后，用TBST漂洗膜后再浸洗三次（漂洗后应换容器浸洗），每次10min，以去除残留的一抗。洗涤结束后进行二抗的孵育。11、二抗的孵育孵育buffer和稀释倍数：用TBST按说明书推荐的倍数稀释二抗。常规稀释倍数1:1000-1:20,0001:1000，二抗的浓度过高也会导致非特异性条带。根据一抗来源选择合适的二抗（HRP标记），按相应比例用抗体稀释液稀释，室温轻摇1-2小时。12、洗涤：二抗孵育结束后，用TBST漂洗膜后再浸洗三次（漂洗后应换容器），每次10min，最后用TBS清洗一次。注：抗体稀释液稀释的一抗或二抗可回收重复利用数次，抗体稀释液稀释后的抗体可4保存约半个月时间。13

14、、显色-DAB辣根过氧化物酶显色试剂盒（生工）溶液A在使用之前，37温育10分钟，以免产生沉淀。在免疫印迹实验中，先将相应的HRP（辣根过氧化物酶）标记的二抗覆盖膜后，在37的情况下，于震荡器摇床上，震荡轻摇一个半小时左右，再用TBST洗涤膜34次，最后一次用TBS洗涤膜，再将膜转移到阴暗处。显色前在干净棕色瓶子中配制显色工作液，充分混匀。反应液10 ml 大培养皿5ml 小培养皿溶液A200 l100ul溶液B100 l50ul溶液C20 l10ul在阴暗处，将显色液加入膜上，将膜覆盖，在37的情况下，摇床反应5min左右即可，这时棕褐的条带出现倒掉反应液，双蒸水冲洗条带34次，自然干燥照相记录实验结果