2022年实验动物的除毛、给药方法归纳 .pdf

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1、实验动物的除毛、给药方法一、实验动物的除毛在动物实验中，被毛有时会影响实验操作与观察，因此必须除去。除去被毛的方法有剪毛、拔毛、剃毛和脱毛等。( 一) 剪毛法： 剪毛法是将动物固定后，先用蘸有水的纱布把被毛浸湿，再用剪毛剪刀紧贴皮肤剪去被毛。不可用手提起被毛，以免剪破皮肤。剪下的毛应集中放在一容器内，防止到处飞扬。给狗、羊等动物采血或新生乳牛放血制备血清常用此法。( 二) 拔毛法：拔毛法是用拇指和食指拔去被毛的方法。在兔耳缘静脉注射或尾静脉注射时常用此法。( 三) 剃毛法：剃毛法是用剃毛刀剃去动物被毛的方法。如动物被毛较长，先要用剪刀将其剪短，再用刷子蘸温肥皂水将剃毛部位浸透，然后再用剃毛刀除

2、毛。本法适用于暴露外科手术区。( 四) 脱毛法：脱毛法是用化学药品脱去动物被毛的方法。首先将被毛剪短，然后用棉球蘸取脱毛剂，在所需部位涂一薄层，2 3分钟后用温水洗去脱落的被毛，用纱布擦干，再涂一层油脂即可。适用于狗等大动物的脱毛剂配方为：硫化钠10g，生石灰 15g，溶于 100ml 水中。适用于兔、鼠等动物的脱毛剂的配方为：1.硫化钠 3g, 肥皂粉 1g, 淀粉 7g, 加适量水调成糊状；2.硫化钠 8g, 淀粉 7g，糖 4g，甘油 5g，硼砂 1g, 加水 75ml；3.硫化钠 8g 溶于 100ml 水中。二、实验动物的给药在动物实验中，为了观察药物对机体功能、代谢及形态引起的变化

3、，常需要将药物注入动物体内。给药的途径和方法多种多样，可根据实验目的、实验动物种类和药物剂型、剂量等情况确定。( 一) 注射给药法1. 皮下注射注射时用左手拇指及食指轻轻捏起皮肤，右手持注射器将针头刺入, 固定后即可进行注射。一般小鼠在背部或前肢腋下，大鼠在背部或侧下腹部；豚鼠在后大腿内侧、背部等脂肪少的部位；兔在背部或耳根部注射；蛙可在脊背部淋巴囊注射；狗多在大腿外侧注射，拔针时，轻按针孔片刻，防药液逸出。2. 皮内注射此法用于观察皮肤血管的通透性变化或观察皮内反应。如将一定量的放射性同位素溶液、颜料或致炎物质、药物等注入皮内，观察其消失速度和局部血液循环变化，作为皮肤血管通透性观察指标之一

4、。方法是：将动物注射部位的毛剪去，消毒后，用皮试针头紧贴皮肤皮层刺入皮内，然后使针头向上挑起并再稍刺入，即可注射药液。注射后可见皮肤表面鼓起一白色小皮丘。3. 肌肉注射当给动物注射不溶于水而混悬于油或其他溶剂中的药物时, 常采用肌肉注射。肌肉注射一般选用肌肉发达、无大血管经过的部位，多选臀部。注射时针头要垂直快速刺入肌肉，如无回血现象即可注射。给大、小鼠作肌肉注射时，选大腿外侧肌肉进行注射。4. 腹腔注射先将动物固定 , 腹部用酒精棉球擦试消毒，然后在左或右侧腹部将针头刺入皮下，沿皮下向前推进约 0.5 厘米，再使针头与皮肤呈45 度角方向穿过腹肌刺入腹腔，此时有落空感，回抽无肠液、尿液后，缓

5、缓推入药液。此法大小鼠用的较多。名师资料总结 - - -精品资料欢迎下载 - - - - - - - - - - - - - - - - - - 名师精心整理 - - - - - - - 第 1 页，共 3 页 - - - - - - - - - 5. 静脉注射是将药液直接注射于静脉管内，使其随着血液分布全身, 迅速奏效。但排泄较快，作用时间较短。小鼠、大鼠的静脉注射：常采用尾静脉注射。鼠尾静脉共有3根，左右两侧和背侧各1根，两侧尾静脉比较容易固定，故常被采用。操作时，先将动物固定在暴露尾部的固定器内( 可用烧杯、铁丝罩或粗试管等物代替 ), 用 75酒精棉球反复擦试使血管扩张, 并可使表皮角

6、质软化，以左手拇指和食指捏住鼠尾两侧，使静脉充盈,注射时针头尽量采取与尾部平行的角度进针。开始注射时宜少量缓注，如无阻力,表示针头已进入静脉, 这时用左手指将针和尾一起固定起来，解除对尾根部的压迫后，便可进行注射。如有白色皮丘出现，说明未穿刺入血管，应重新向尾部方向移动针头再次穿刺。注射完毕后把尾部向注射侧弯曲以止血。如需反复注射，尽量从尾的末端开始。一次的注射量为每10g 体重 0.1-0.2ml。豚鼠的静脉注射：一般采用前肢皮下头静脉。鼠的静脉管壁较脆，注射时应特别注意。兔的静脉注射：一般采用外耳缘静脉，因其表浅易固定。注射部位除毛，用75的酒精消毒，手指轻弹兔耳，使静脉充盈，左手食指和中

7、指夹住静脉的近心端，拇指绷紧静脉的远心端，无名指及小指垫在下面，右手持注射器，尽量从静脉的远端刺入血管，移动拇指于针头上以固定，放开食、中指，将药液注入，然后拔出针头，用手压迫针眼片刻以止血。狗的静脉注射：狗的静脉注射多采用前肢外侧静脉或后肢外侧的小隐静脉。注射部位除毛后，在静脉血管的近心端用橡皮带扎紧，使血管充盈，从静脉的远心端将注射针头平行血管刺入，回抽注射器针栓，如有回血，即可放开像皮带，将药液缓缓注入。6. 淋巴囊注射蛙类常采用此法, 其皮下有数个淋巴囊，注入药物甚易吸收。腹部淋巴囊和头部淋巴囊常作为蛙类给药途径。一般多选用腹部淋巴囊给药。注射时将针头从蛙大腿上端刺入，经大腿肌层入腹壁

8、肌层，再进入腹壁皮下，即进入淋巴囊，然后注入药液。( 二) 经口给药法1. 口服法：把药物放入饲料或溶于饮水中让动物自动摄取。此法优点在于简单方便，缺点是不能保证剂量准确。 一般适用于对动物疾病的防治或某些药物的毒性实验，制造某些与食物有关的人类疾病动物模型。2. 灌胃法：在急性实验中, 多采用灌胃法。此法剂量准确。灌胃法是用灌胃器将所应投给动物的药灌到动物胃内。灌胃器由注射器和特殊的灌胃针构成。小鼠的灌胃针长约45cm ，直径为 1mm ，大鼠的灌胃针长约 68cm ，直径约 1.2mm 。灌胃针的尖端焊有一小圆金属球，金属球为中空的。焊金属球的目的是防止针头刺入气管或损伤消化道。针头金属球

9、端弯曲成20左右的角度，以适应口腔、食道的生理弯曲度走向。鼠类的灌胃法：用左手固定鼠，右手持灌胃器，将灌胃针从鼠的口腔插入，压迫鼠的头部，使口腔与食道成一直线 , 将灌胃针沿咽后壁慢慢插入食道，可感到轻微的阻力, 此时可略改变一下灌胃针方向，以刺激引起吞咽动作，顺势将药液注入。一般灌胃针插入小鼠深度为34cm ，大鼠或豚鼠为46cm 。常用灌胃量小鼠为 0.2 1ml, 大鼠 14ml, 豚鼠 15ml。狗、兔的灌胃法：先将动物固定，再将开口器的小孔插入动物口中，再慢慢沿上鄂壁插入食道，将灌胃管的外端浸入水中，如有气泡逸出，则说明灌胃管误入气管，需拔出重插。插好后，将注射器连于灌胃管将药液推入

10、。 灌胃结束后， 先拔出灌胃管， 再拿出开口器。 一次灌胃能耐受的最大容积兔为80100ml，狗为 200 250ml。名师资料总结 - - -精品资料欢迎下载 - - - - - - - - - - - - - - - - - - 名师精心整理 - - - - - - - 第 2 页，共 3 页 - - - - - - - - - ( 三) 其它途径给药方法1. 呼吸道给药：呈粉尘、气体及蒸气或雾等状态的药物或毒气, 均需要通过动物呼吸道给药。如实验时给动物乙醚作吸入麻醉、用锯末烟雾制作慢性气管炎动物模型等，特别在毒理学实验中应用更为广泛。2. 皮肤给药：为了鉴定药物或毒物经皮肤的吸收作用、

11、局部作用、致敏作用和光感作用等，均需采用经皮肤给药方法。如兔和豚鼠常采用背部一定面积的皮肤脱毛后，将一定的药液涂在皮肤上，药液经皮肤吸收。3. 脊髓腔内给药：此法主要用于锥管麻醉或抽取脑脊液。4. 脑内给药： 此法常用于微生物学动物实验, 将病原体等接种于被检动物脑内，然后观察接种后的各种变化。5. 直肠内给药：此种方法常用于动物麻醉。兔直肠内给药时, 常采用灌肠的胶皮管或用14 号导尿管代替。6. 关节腔内给药：此法常用于关节炎的动物模型复制。名师资料总结 - - -精品资料欢迎下载 - - - - - - - - - - - - - - - - - - 名师精心整理 - - - - - - - 第 3 页，共 3 页 - - - - - - - - -