临床常见标本的微生物检验课件.ppt
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1、关于临床常见标本的微生物检验现在学习的是第1页,共94页主要内容主要内容1.临床常见标本的微生物检验临床常见标本的微生物检验u一、血、骨髓、静脉导管标本一、血、骨髓、静脉导管标本u二、痰及下呼吸道标本二、痰及下呼吸道标本u三、尿液标本三、尿液标本u四、大便标本四、大便标本u五、生殖道系统标本五、生殖道系统标本u六、化脓和创伤标本六、化脓和创伤标本u七、穿刺液标本七、穿刺液标本u八、眼、耳、鼻、咽拭子标本八、眼、耳、鼻、咽拭子标本u九、组织标本九、组织标本现在学习的是第2页,共94页一、血、骨髓、静脉导管标本一、血、骨髓、静脉导管标本现在学习的是第3页,共94页(一)血培养检测采血指征(一)血培
2、养检测采血指征 临床上疑为败血症、脓毒血症或其他血液感染的患者 1. 发热(38)或低温(36) 2. 寒战 3. 白细胞增多(10109/L,特别有“核左移”未成熟的或杆状核白细胞增多) 4. 粒细胞减少(成熟的多核白细胞1109/L) 5. 血小板减少 6皮肤粘膜出血 7昏迷,休克、多器官衰竭 8 CRP升高 在评估可疑新生儿败血症时,除发热或低烧外,很少培养出细菌,应该补充尿液尿液和脑脊液脑脊液培养。 对入院危重感染患者未进行系统性抗菌药物治疗之前,应及时采集血培养。 骨髓炎或长期使用抗菌药物者骨髓培养阳性率高于血培养。 现在学习的是第4页,共94页(二)血培养检测消毒程序(二)血培养检
3、测消毒程序 1.皮肤消毒程序:严格执行三步法(防止皮肤寄生菌污染)(1)用75%酒精擦拭静脉穿刺部位待30s以上;(2)然后用1%-2%碘酊作用30秒或10%碘伏作用60秒,从穿刺点向外画圈消毒,至消毒区域直径达3cm以上; (3)最后用75%酒精脱碘,待酒精挥发干燥后采血。 新生儿及对碘过敏的患者,只能用75%酒精消毒60s,待穿刺部位酒精挥发干燥后穿刺采血。 2.培养瓶消毒程序:(1)用75%酒精消毒血培养瓶橡皮塞,作用60秒。(2)用无菌纱布或无菌棉签清除橡皮塞表面剩余的酒精,然后注入血液。现在学习的是第5页,共94页。 无论采用何种采血方法,血培养可接受的污染率通常是3%。1.严格无菌
4、操作,避免被体表或腔道正常菌群污染;2.不要和血气、血沉的取血同时进行;3.穿刺点消毒不使用低效消毒剂,切勿在静滴的静脉处取切勿在静滴的静脉处取血血;4.不宜从静脉导管或静脉留置口取血,若从该部位取血,应在申请单上注明;最好同时静脉取血,以求进行比对;5.不推荐静脉血直接入瓶,以免血量控制不好或对患者不利;6.不主张换针头入瓶,以免增加污染的机会。7.采血前把血培养瓶从冰箱拿出后,待恢复至室温后采集,采集后切勿放回冰箱。现在学习的是第6页,共94页(三)血培养标本采集和运送(三)血培养标本采集和运送1.1.采集时间采集时间 患者出现寒战、体温升高前; 使用抗菌药物前; 患者已使用抗菌药物的情况
5、下,若出现明显的发热前期症状,可在寒战前或寒战后1h内采血;若无明显的寒战阶段,应在第二次服抗菌药物前采血; 对于无明显感染病灶或未找到发热原因的发热患者,先在不同部位采集2-3份血标本,间隔大于或等于1h,24h-36h后再次采集2份以上; 疑似沙门菌感染的患者在病程第1-2周采集静脉血; 建议 : 同时采集同时采集2-3瓶瓶(不同部位)(不同部位); 需氧菌、厌氧菌各一份,采集后同时送检; 在采血后的2-5天无需重复采血培养;现在学习的是第7页,共94页 2.采集部位采集部位 要求:从两侧上肢静脉采血,“双瓶双侧”采血培养。至少做到“双侧双瓶”。必要时从下肢静脉采血做第三套血培养。 不建议
6、采集(1)动脉血,因其诊断价值没有比静脉血更大;(2)静脉留置导管,因其常伴有高污染率。现在学习的是第8页,共94页 所谓“双瓶双侧”,是指从一个部位采血接种一套培养瓶,再从另一部位采血接种另一套培养瓶。(通常是双臂) 所谓“双侧双瓶”,是指从一个部位采血接种一个需氧瓶,再从另一部位采血接种另一个厌氧瓶。 一次静脉采血注入到多个培养瓶中应视为单个血培养。现在学习的是第9页,共94页3.3.采集次数采集次数要求: 对怀疑菌血症、真菌血症的成人患者,推荐同时采集23套套(不同部位)血培养标本。(即双瓶双臂同时双瓶双臂同时采集血培养标本采集血培养标本。) 婴幼儿患者,推荐同时采集2次次(不同部位)血
7、培养标本。现在学习的是第10页,共94页为什么要求多次采血?为什么要求多次采血?v(1)菌血症有)菌血症有“持续性持续性”和和“暂时性暂时性”之分,多次采血可提高阳性检出之分,多次采血可提高阳性检出率,减少漏检;率,减少漏检; 两瓶或以上血培养以上血培养结果阳性,细菌鉴定结果相同,判断为两瓶或以上血培养以上血培养结果阳性,细菌鉴定结果相同,判断为感染菌,作药敏并报告临床。感染菌,作药敏并报告临床。送检两瓶或以上血培养,仅送检两瓶或以上血培养,仅1瓶结果为阳性,且为潜在的污染菌(如瓶结果为阳性,且为潜在的污染菌(如表皮葡萄球菌、微球菌、气球菌、棒状杆菌等),一般作为污染菌。表皮葡萄球菌、微球菌、
8、气球菌、棒状杆菌等),一般作为污染菌。 出现多种细菌在排除污染可能后,可考虑出现多种细菌在排除污染可能后,可考虑“复数菌复数菌”败血症的诊断。败血症的诊断。仅送检仅送检1瓶血培养,且培养出上述潜在的污染菌。则其临床意瓶血培养,且培养出上述潜在的污染菌。则其临床意义不能确定,需与临床医生讨论其可能的临床价值。义不能确定,需与临床医生讨论其可能的临床价值。v(2)血液感染有原发性和继发性之分,多次采血培养有助于循环外感)血液感染有原发性和继发性之分,多次采血培养有助于循环外感染部位的诊断;染部位的诊断;v(3)菌血症患者多数为间歇性,病原菌周期性出现在血液中,在无)菌血症患者多数为间歇性,病原菌周
9、期性出现在血液中,在无菌时期不管临床症状经历的严重程度,患者血液中的病原菌浓度水菌时期不管临床症状经历的严重程度,患者血液中的病原菌浓度水平相当低,因此要求多次采血,但平相当低,因此要求多次采血,但24h内一般不超过内一般不超过3次次。现在学习的是第11页,共94页4.4.采血量采血量要求: 成年患者推荐的采血量为每套不少于10ml,每瓶不少于5ml。 婴幼儿患者推荐的采血量为每瓶不少于2ml。说明:血标本采集的量是影响检出率的最重要的因素。成人血培养采血量在230ml之间,病原菌检出率与采血量成正比例增长。每增加1ml的血液,病原菌的检出率增加3.2%。儿童患者因为血液中病原菌浓度较高,血培
10、养量无需等同于成人。对血液病患者或者血容量相对较低的患者建议使用儿童瓶来减少血液的采集量增加病原菌的检出率。现在学习的是第12页,共94页5.血培养标本的运送血培养标本的运送要求:(1)采集后的血培养瓶应在1小时之内送往实验室。 (2)血培养瓶在接种前和接种后均不得冷藏和冷冻。现在学习的是第13页,共94页血液标本的处理血液标本的处理v1.自动化血培养系统:v立即放入仪器内,直到仪器报警提示阳性瓶后进行下一步操作。v2.传统血培养瓶:v放入35 温箱孵育,每日观察,若有生长情况立即转种,若第7天仍无菌生长,需要进行末次接种。现在学习的是第14页,共94页双相培养瓶现在学习的是第15页,共94页
11、二二.导管相关性血流感染的标本培养导管相关性血流感染的标本培养v导管相关性血流感染:v最常见的为血管内导管相关性血流感染(CRBSI),发生率与导管种类、导管相关医疗操作的频率、患者病情等因素有关。v短期留置的血管内导管,皮肤定值菌通过皮下隧道移植到导管尖端,随后引发感染;v长期留置的血管内导管,导管头被细菌污染,导管腔发生细菌定植,引发感染;v血行传播的细菌可定值在血管内导管中,引发新的病灶。现在学习的是第16页,共94页皮肤凝固酶阴性葡萄球菌定植于输液管皮肤凝固酶阴性葡萄球菌定植于输液管现在学习的是第17页,共94页v怀疑导管相关性血流感染的患者,可采用培养方法(建议同时进行):v1.用M
12、aki半定量培养法对血管内导管尖端片段进行培养:v 采集: 用75%酒精消毒导管周围皮肤;移动导管,无菌剪刀剪取尖端末端5cm,直接置入无菌试管中;立即送检,防止干燥,常规培养不超过15min,4保存不超过2h。v 接种: 用无菌镊子将5cm导管在血琼脂平皿上交叉滚动4次,然后弃之,放入5%二氧化碳35 温箱。v 处理:若24h后血琼脂平皿生长15个菌落,提示有潜在导管相关性血流感染。 不推荐使用增菌肉汤培养,因为增菌扩大了污染的几率,导致结果不可靠。v2.采集外周静脉血培养:v 采集至少2份血培养,至少1份经外周静脉血穿刺采血,至少1份从导管中心或静脉留置口隔膜取血,两者之间采血时间应5mi
13、n。现在学习的是第18页,共94页Maki 滚动法滚动法现在学习的是第19页,共94页二二 、 痰及下痰及下呼吸道标本呼吸道标本现在学习的是第20页,共94页咳痰途经口咽部 不可避免地受到污染v唾液中口咽部定植菌的浓度可达108 109/ml。v研究显示,国内常规痰标本中约半数存在唾液严重污染现象。现在学习的是第21页,共94页(一)采集指征(一)采集指征v凡是发热、咳嗽和咳痰,痰呈脓性、粘稠或血性,并伴有胸痛、气急,肺部闻及湿罗音,外周白细胞总数及中性粒细胞比例明显增高,X线检查提示肺部有炎性浸润或胸腔积液,甚至出现感染性休克和呼吸衰竭等患者,应采集痰液或下呼吸道标本。v对可疑烈性呼吸道传染
14、病(如SARS、肺炭疽、肺鼠疫等)患者采集检验标本时必须注意生物安全防护。现在学习的是第22页,共94页(二)采集时间(二)采集时间v在抗生素应用前采集痰标本;v标本采集后12h内必须立即进行实验室处理;v咳痰标本应用最早且广泛,但也是最受争议的标本 ;v取标本前应摘去牙托,清洁口腔如刷牙和漱口;v深咳,采集标本过程中要有专业的医务人员指导;v对于细菌性肺炎,痰标本送检每天1次,连续23天;不建议24h内多次采集,除非痰液外观性状改变;v怀疑分枝杆菌感染者,应连续收集3天清晨痰液送检。现在学习的是第23页,共94页(三)采集方法(三)采集方法v自然咳痰法自然咳痰法 以晨痰为佳。用清水反复漱口,
15、用力咳出呼吸道深部的痰,痰液直接吐入无菌容器中,尽快送检。否则有的细菌(如肺炎链球菌、流感嗜血杆菌)在外界可能死亡。不能及时送检的标本,室温保存2h。要求采到肺深部的痰液,不要唾液。现在学习的是第24页,共94页v2.创伤性取痰方法创伤性取痰方法(均由医生操作均由医生操作):v 经支气管镜抽吸法(支气管肺泡灌洗液、防污染样本毛刷等)v直接从肺部感染病灶采集高浓度的病原菌,较为安全,但不能避免咽喉部正常菌群污染。v 经人工气道吸引分泌物(导管吸痰、防污染灌洗等)v较为采用,但人工气道常有致病菌或定值菌存在,建议采集前先做细胞血筛查。v 经气管穿刺吸引物v 采集到的下呼吸道标本不受上呼吸道污染,常
16、用于厌氧菌培养,但患者不易接受。v 经胸壁针刺吸引物v 偶尔用于原因不明的肺炎或贴近胸壁的病灶。v 胃内采痰法v 用于结核杆菌感染的婴幼儿患者v 小儿取痰法v 用压舌板向后压舌,用棉拭子伸入咽部,小儿受刺激后咳出分泌物。v 雾化取痰法v 无痰或痰量极少时可用,使用5%NaCl雾化导痰。哮喘患者不能用该法。现在学习的是第25页,共94页痰标本的运送、保存痰标本的运送、保存v1.标本采集后2小时内送至实验室;否则可导致肺炎链球菌、流感嗜血杆菌等苛养菌死亡;v2.延迟送检或待处理标本应置于4 冰箱保存(疑似肺炎链球菌、流感嗜血杆菌等苛养菌的例外),但应在24小时内处理;v3.对可疑烈性呼吸道传染病(
17、SARS、炭疽、鼠疫等)的标本,必须全过程注意生物安全;v4.经口腔部污染的标本均不可以做厌氧菌培养。现在学习的是第26页,共94页痰标本的处理v一.痰标本的革兰染色涂片检测:v 其目的是判定标本是否适合做细菌培养,并初步判定有否病原菌,病原菌的数量级类别,有助于初步报告、培养基选择和培养结果的判定。v一般认为来自下呼吸道的合格标本应该是含脓细胞和支气管柱状上皮细胞较多,而受唾液污染的来自于颊黏膜的扁平上皮细胞较少,其判定标准如下表:现在学习的是第27页,共94页vA、B级的痰标本适合进行培养;vC、D级的标本须高倍镜镜下观察区分,根据视野内的白细胞或纤毛柱状上皮细胞的数量,以及细菌的种类及分
18、布等结果进行判定;vE级为不合格标本。现在学习的是第28页,共94页v二二.痰标本洗净:痰标本洗净:v目的:尽量排除上呼吸道正常菌群的污染:v方法:将痰加入含有15-20ml灭菌生理盐水的试管中,剧烈振荡5-10s,然后用接种环将沉淀于管底的脓痰小片沾出,再放另一个无菌试管中,将同样的方法反复2次。现在学习的是第29页,共94页v三三.痰标本的均质化处理:痰标本的均质化处理:v目的:有助于痰核内部细菌的暴露,以提高痰培养标本的阳性培养率。v方法:向痰液内加等量的用无菌的PH7.6的磷酸盐缓冲液配制的1%的胰蛋白酶溶液,放置37 温箱内消化90min即能使痰液均质化,而对细菌培养无影响。此外,还
19、可用玻璃组织研磨器或振荡器。现在学习的是第30页,共94页痰标本的处理痰标本的处理(常规)(常规)v取痰液分区3区划线接种于血平板(及麦康凯平板MAC)上,若需培养嗜血杆菌,再接种于加入抗生素(每毫升巧克力琼脂内加万古霉素50mg,杆菌肽30mg,氯林可霉素1mg)的嗜血杆菌选择性巧克力平板(HA)。v血平板置于35普通温箱,巧克力平板置于5%CO2温箱内。v18-24小时后观察。现在学习的是第31页,共94页痰培养的结果判断v 在培养出细菌时都面临判断该细菌是致病在培养出细菌时都面临判断该细菌是致病菌或携带菌的问题,而这些标本的采集很难菌或携带菌的问题,而这些标本的采集很难不污染携带菌。不污
20、染携带菌。 v 现代感染的特点是,低免疫人群大大增现代感染的特点是,低免疫人群大大增多,条件致病菌、非致病菌引起的感染增多多,条件致病菌、非致病菌引起的感染增多,这些特点给致病菌的判断带来了困难。,这些特点给致病菌的判断带来了困难。现在学习的是第32页,共94页痰标本在平板上的菌落量化指标v未列入规范要求(参考)现在学习的是第33页,共94页有意义的痰培养结果v合格痰标本培养优势菌中度以上生长合格痰标本培养优势菌中度以上生长( (+)+)v合格痰标本少量生长,但与涂片镜检结果一合格痰标本少量生长,但与涂片镜检结果一致致( (肺炎链球菌、流感嗜血杆菌、卡他莫拉菌肺炎链球菌、流感嗜血杆菌、卡他莫拉
21、菌) )v多次培养到相同细菌;多次培养到相同细菌;现在学习的是第34页,共94页无意义的痰培养结果v痰培养有上呼吸道正常菌群的细菌痰培养有上呼吸道正常菌群的细菌( (如草绿色如草绿色链球菌、表皮葡萄球菌、非致病奈瑟菌、类链球菌、表皮葡萄球菌、非致病奈瑟菌、类白喉杆菌等白喉杆菌等) )v痰培养为多种病原菌少量痰培养为多种病原菌少量(+)(105CFU/ml 或革兰阳性球菌数104CFU/ml时有临床诊断意义。 (不是绝对的,受多因素影响,综合判断)v2. 尿液标本的采集和培养中的问题是污染杂菌,故应严格进行无菌操作。v3. 尿标本采集后应立即送检,以免污染,尿液中不得加防腐剂和消毒剂。现在学习的
22、是第44页,共94页v4.除非是流行病学调查,长期留置导尿管患者常规尿培养没有临床意义,大量病原菌常可在这类患者中检出,导尿管留置时间延长易导致与引起患者尿道感染不一致的微生物定植生长;v5.不可从集尿袋的下端管口留取标本,集尿袋内的尿液也不能用于培养,可能会引起污染;v6.临床常让患者留取清洁中段尿,应该在医护人员监督指导下让患者正确的留取清洁中段尿;v7.由于种种原因,患者常常不能正确地留取清洁中段尿,实验室只是针对尿液标本培养的结果进行评估,或常常由于分析前尿液标本污染了多种细菌无法正确解释的结果,可能延误了临床的正确诊断和治疗。现在学习的是第45页,共94页下列因素可使尿液中细菌数量减
23、少,判断结果时应下列因素可使尿液中细菌数量减少,判断结果时应注意注意使用抗生素治疗,细菌生长受到抑制;使用抗生素治疗,细菌生长受到抑制;尿液稀释,尿比重尿液稀释,尿比重1.0031.003,营养成分减少,细菌生长迟缓;,营养成分减少,细菌生长迟缓;尿尿PHPH5.05.0或或8.58.5,细菌生长受阻;,细菌生长受阻;尿频时,膀胱内细菌停留时间短,菌落数减少;尿频时,膀胱内细菌停留时间短,菌落数减少;尿道口消毒液混入标本中,影响细菌繁殖,菌落数减少;尿道口消毒液混入标本中,影响细菌繁殖,菌落数减少;不同种类的细菌生长速度不同、营养要求不同,菌落计数有所不同种类的细菌生长速度不同、营养要求不同,
24、菌落计数有所不同。不同。现在学习的是第46页,共94页接种方式v接种于血平板;置于35普通温箱;18-24小时后观察。采用1ul或者10ul定量接种环。现在学习的是第47页,共94页尿培养的划线方式尿培养的划线方式1ul接种环:菌落数*1000/ml10ul接种环:菌落数*100/ml5ul接种环:菌落计数*200/ml现在学习的是第48页,共94页尿培养结果评价v正常情况下从肾脏排泌至膀胱的尿液是无菌正常情况下从肾脏排泌至膀胱的尿液是无菌的,但膀胱中的尿液经尿道排出体外时可受的,但膀胱中的尿液经尿道排出体外时可受到下尿道中正常菌群的污染而出现细菌。因到下尿道中正常菌群的污染而出现细菌。因此对
25、不同方法获取的尿液标本培养结果需正此对不同方法获取的尿液标本培养结果需正确评价,才能有效指导临床合理治疗。一般确评价,才能有效指导临床合理治疗。一般认为,清洁中段尿标本中单种细菌菌落数认为,清洁中段尿标本中单种细菌菌落数10105 5CFU/mlCFU/ml可能为感染;可能为感染;5 510104 4CFU/mlCFU/ml可能可能为污染,在两者之间需要根据具体情况进行为污染,在两者之间需要根据具体情况进行评估(表评估(表1 1)。)。现在学习的是第49页,共94页表表1 1 不同方法采集的尿标本培养结果评价不同方法采集的尿标本培养结果评价标本来源标本来源 菌落数菌落数CFU/ml CFU/m
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