2022年生物素标记蛋白操作方法推荐 .pdf
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1、抗体生物素标记操作方法一般每个抗体可以标记3-5个生物素,标记时,生物素与抗体的比率受抗体浓度影响,对于 10 mg/ml 的抗体溶液来说,生物素应超过蛋白12倍(摩尔数),对于2 mg/ml 的抗体溶液应超过 20倍,生物素也可以直接以粉末的形式加入蛋白溶液中。蛋白样品不得含有叠氮钠、BSA、甘氨酸、Tris 或其他任何有自由氨基的添加物。一、试剂和器材:1、标记反应溶液:0.1M pH 7.2 PBS(0.15M sodium chloride)NaCl 8.77 g;Na2HPO412H2O 32.3g;NaH2PO42H2O 4.5g;加双蒸水 900mL 左右,用 HCl/NaOH
2、调 pH至 7.2,最后定容为 1000mL 2、10mM NHS-dPEG4-Biotin 配方:称取0.56mg NHS-dPEG4-Biotin(分子量为587),溶解于 95 l 超纯水中,临用前配置,不可储存,立刻使用。NHS-PEG4-Biotin 容易潮解,开瓶前平衡至室温。也可以配置 200 nmol/L 储备液:20mg NHS-dPEG4-Biotin溶解于 170 l DMSO中,-20稳定几个月。由于NHS-PEG4-Biotin昂贵,而且使用量少,不能保存,配制时,直接将NHS-PEG4-Biotin 放入 1.5ml EP 管中,以实际称量的NHS-PEG4-Bio
3、tin 按比率加入超纯水。3、超滤管、Millipore超滤管 0.5ml 10KD:截留分子量 10KD,残留体积 200 l,蛋白回收率 95%,7500 g(允许的最大离心力 14000 g)离心 10min。、Millipore超滤管 0.5ml 50KD:截留分子量 50KD,残留体积 80 l,蛋白回收率 94%,7500 g(允许的最大离心力 14000 g)离心5 min。、Amicon Ultra-0.5ml离心超滤管(Millipore),效果更好,典型的最终浓缩物体积:5-15ul。名师资料总结-精品资料欢迎下载-名师精心整理-第 1 页,共 5 页 -二、抗体超滤处理标
4、记前需要应用截留分子量为50kDa 的超滤柱对抗体进行标记前纯化处理(如果不是抗体,一定要按蛋白分子量来确定超滤柱截留分子量),以除去蛋白样品中可能含有的叠氮钠、BSA、甘氨酸、Tris 或其他任何有自由氨基的添加物,防止干扰标记反应。具体操作步骤:1、于超滤柱中加入200l 标记反应溶液,加入 500ug 单克隆抗体,混匀。2、4,6000rpm,离心 2min。弃滤液。3、于超滤柱中加入 100l 标记反应溶液,混匀。4,Max 14000 g,2min。4、重复步骤 2 6 到 7 次。5、混匀超滤柱中的残留的液体,室温静置1min。6、将超滤柱反转倒置于一新的超滤管中,4,1000 g
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