蛋白质组学研究技术进展精选PPT.ppt
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1、关于蛋白质组学研究技术进展第1页,讲稿共47张,创作于星期三蛋白质组学背景随着人类基因组计划的完成和对基因组研究的深入,人们认识到单纯依靠基因组信息并不可能完全揭示生命的奥秘。这是因为蛋白质才是生物功能的体现者,所以必需考虑基因编码的蛋白质具有什么功能。第2页,讲稿共47张,创作于星期三不仅如此,基因在转录和翻译过程中存在转录和翻译水平的调控,蛋白质往往还要经过剪接、修饰、加工之后,最终才能成为有功能的蛋白质;而且生物体不同组织、不同分化程度和在不同环境下,所表达的蛋白质是不同的,所以单纯从基因组水平上并不能完全揭示生命活动的规律。在这种背景下,蛋白质组学应运而生。1994年,Marc Wil
2、kim在Siena双向凝胶电泳(twodimensional electrophoresis,2-DE)会议上最早提出了蛋白质组(proteome)概念,并于1995年7月的Electrophoresis(电泳)杂志上发表。第3页,讲稿共47张,创作于星期三蛋白质组学是以生物体的全部或部分蛋白为研究对象,研究它们在生命活动过程中的作用、功能。蛋白质组学较之前的基因组学对于生命现象的解释更直接、更准确。蛋白质对生命活动的直接作用比基因复杂得多对于某一种生物或有机体来说,基因组是唯一的,而蛋白质组随细胞的种类、功能、生理状态、环境条件和病理状态而不断变化,因此仅仅从基因的角度来研究是不够的。第4页
3、,讲稿共47张,创作于星期三随着对蛋白质组学的深入理解和具体工作的开展,人们逐渐认识到在短时间内建立蛋白质组学“完整的”数据库和实现网络资源共享是难以实现的,因为条件尚未成熟。于是结构蛋白质组学研究着重于寻找和筛选任何有意义的因素引起的2个样本之间的差异蛋白质谱,揭示细胞生理和病理状态的进程与本质、对外界环境刺激的反应途径,以及细胞调控机制,同时获得对某些关键蛋白的定性和功能分析,因此,差异蛋白质组学研究技术应运而生。第5页,讲稿共47张,创作于星期三1、双向凝胶电泳技术1975 年,意大利生化学家OFarrell(奥法雷尔)发明了双向电泳(twodimensional gel eldctro
4、pgoresis,2-DE)技术。该技术应用两个不同分离原理为依据进行分离,即利用蛋白质分子的等电点(PI)和相对分子量的不同进行分离第一向电泳是蛋白质的等电聚焦,根据蛋白质等电点差异进行分离,该分离技术采用固定pH梯度技术(IPG)可以实现等电点只差001pH单位的蛋白质的分离;第二向电泳是利用蛋白质相对分子量差异进行分离,可分离相对分子量在100103150103的蛋白质。第6页,讲稿共47张,创作于星期三第7页,讲稿共47张,创作于星期三例如:番茄种子空间搭载与地面后代叶片的差异蛋白质组研究。CK-2是对照组,MIR-2是实验组。第8页,讲稿共47张,创作于星期三图图1用不同裂解液裂解后
5、的用不同裂解液裂解后的CK-2双向电泳图双向电泳图左图裂解液中的去垢剂用的是左图裂解液中的去垢剂用的是CHAPS,右图裂解液中的去垢剂是右图裂解液中的去垢剂是NP-40。第9页,讲稿共47张,创作于星期三图图2 对照样品对照样品CK以及和平号搭载样品以及和平号搭载样品MIR 的双向电泳结果图的双向电泳结果图第10页,讲稿共47张,创作于星期三样品MIR-2和对照组CK-2的双向电泳结果进行了IMAGE MASTER 软件分析,共找到了42个表达差异2倍以上的蛋白质点,对其中26个差异比较明显的蛋白质点进行了ESIQ-TOF MS/MS质谱分析,共鉴定出10个蛋白质点,鉴定的蛋白质在对照组均表现
6、为上调,在空间站搭载样品中表现为下调。第11页,讲稿共47张,创作于星期三2-DE 的局限性:重复性差;自动化程度低,费时费力;对过大(100 ku)和过小(10ku)的分子量的蛋白质、低丰度蛋白质(1000 copies)、极酸或极碱和难溶的蛋白质如膜蛋白等分离困难。第12页,讲稿共47张,创作于星期三2、双向差异凝胶电泳技术 双向差异凝胶电泳(two dimension difference gel electrophoresis,2D-DIGE)是一种新出现的荧光标记的定量蛋白质组学技术,比经典的2-DE 具有更高的动力学范围和灵敏性。该方法通过引入内标使得多个样品在一块胶上分离,进而减
7、少了实验条件不一致引起的误差。DIGE 技术可检测到表达差异小于10的蛋白,统计学可信度达到95以上。第13页,讲稿共47张,创作于星期三DIGE 系统基于荧光差异凝胶电泳(2D-DIGE)技术,是利用电荷和分子量的差异分离蛋白质混合物,并通过多通道激光扫描分析不同蛋白质的第二向SDS-PAGE 凝胶图像。DIGE 系统结合了新型荧光技术、样品多路技术(sample multiplexing)和图像分析等特有的技术,是一套优于经典的2-DE 的完整的系统。第14页,讲稿共47张,创作于星期三 DIGE的试验流程Amersham Pharmacia Biotech,Life Science Ne
8、ws,7,2001 第15页,讲稿共47张,创作于星期三例如:曹晓艳等利用双向差异凝胶电泳技术和质谱检测技术在“新世纪”杏的小蕾期、大蕾期、自花授粉后24h、异花授粉24h后的花柱中共检测到1500个蛋白点,其中66个差异表达的蛋白点,证明“新世纪”杏花花柱对自体与异体花粉感应在蛋白质组水平上有差异。第16页,讲稿共47张,创作于星期三a 小蕾期小蕾期b 大蕾期大蕾期c 自花授粉后自花授粉后24hd 异花授粉后异花授粉后24h第17页,讲稿共47张,创作于星期三DIGE技术与传统的2-DE方法相比,优点在于:重复性大大提高、蛋白质样品的差异表达更精确直观、动态范围更宽、染色时间短、荧光标记不会
9、影响质谱分析结果。缺点是其标记方法只适用于含有赖氨酸的蛋白质;对于赖氨酸含量少的蛋白质的D IGE标记有一定的困难。因为只有一小部分蛋白质被标记,大部分蛋白质在Cy3、Cy5标记的谱图上看不到。第18页,讲稿共47张,创作于星期三3、同位素亲和标签技术同位素亲和标记(isotope-coded affinity tags,ICAT)技术最早由Gygi等提出。ICAT技术是利用一种新的化学试剂-同位素亲和标签试剂预先选择性地标记某一类蛋白质,分离纯化后,质谱(mass spectrometry,MS)鉴定。并根据质谱图上不同ICAT试剂标记的一对肽段离子的强度比例,定量分析它的母体蛋白质在原来细
10、胞中的相对丰度。第19页,讲稿共47张,创作于星期三ICAT试剂由三部分组成。试剂与蛋白质反应的基团,这个基团特异结合肽链中半胱氨酸残基的巯基;中间的连接子,可以结合稳定的同位素;亲和标签-生物素(Biotin),可以和卵白素结合,选择分离ICAT标记的多肽。试剂分为两种形式,分别称之为“重”(连接子含有8 个氘原子)和“轻”(连接子含有8个氢原子);由8 个氘原子与8 个氢原子分别标记的ICAT质量正好相差8Da。第20页,讲稿共47张,创作于星期三 ICAT技术的具体操作流程是:两种来源密切相关而不同状态的细胞裂解,蛋白质被还原;两种样品中各加入不同的ICAT试剂标记;标记完全后的两种样品
11、混合,胰酶水解成大小不同的肽段;固相阳离子柱交换,除去所有残留的胰酶、去垢剂、还原剂和ICAT试剂;第21页,讲稿共47张,创作于星期三标记与未标记的肽段经卵白素亲和层析分离;标记的肽段洗脱后经液相色谱(liquidchromatography,LC)再次分离,串联质谱(tandem mass spectrometry,MS/MS)分析,通过比较峰型完全一样的一对肽段峰的离子强度,可以推断出两种样品中同一种蛋白的相对含量,再将质谱检测数据提交数据库检索,鉴定相对应的蛋白质。第22页,讲稿共47张,创作于星期三Han等通过乙酸肉豆蔻佛波醇(PMA)诱导人类骨髓白血病细胞(HL-60)的细胞表面蛋
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