酶联免疫吸附剂测定ELISA检测技术.docx
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1、酶联免疫吸附剂测定ELISA检测技术1971年Engvall和Perlmann发表了酶联免疫吸附剂测定(enzyme linked immunosorbent assay, ELISA)用于IgG定量测定的文章,使得1966年开始用于抗 原定位的酶标抗体技术开展成液体标本中微量物质的测定方法。这一方法的基本原 理是:使抗原或抗体结合到某种固相载体外表,并保持其免疫活性。使抗原或 抗体与某种酶连接成酶标抗原或抗体,这种酶标抗原或抗体既保存其免疫活性,又 保存酶的活性。在测定时,把受检标本(测定其中的抗体或抗原)和酶标抗原或抗 体按不同的步骤与固相载体外表的抗原或抗体起反响。用洗涤的方法使固相载体
2、上 形成的抗原抗体复合物与其他物质分开,最后结合在固相载体上的酶量与标本中受 检物质的量成一定的比例。加入酶反响的底物后,底物被酶催化变为有色产物,产 物的量与标本中受检物质的量直接相关,故可根据颜色反响的深浅刊物定性或定量 分析。由于酶的催化频率很高,故可极大地地放大反响效果,从而使测定方法到达 很高的敏感度。ELISA的原理ELISA的基础是抗原或抗体的固相化及抗原或抗体的酶标记。结合在固 相载体外表的抗原或抗体仍保持其免疫学活性,酶标记的抗原或抗体既保存其免疫 学活性,又保存酶的活性。在测定时,受检标本(测定其中的抗体或抗原)与固相 载体外表的抗原或抗体起反响。用洗涤的方法使固相载体上形
3、成的抗原抗体复合物 与液体中的其他物质分开。再加入酶标记的抗原或抗体,也通过反响而结合在固相 载体上。此时固相上的酶量与标本中受检物质的量呈一定的比例。加入酶反响的底 物后,底物被酶催化成为有色产物,产物的量与标本中受检物质的量直接相关,故 可根据呈色的深浅进行定性或定量分析。由于酶的催化效率很高,间接地放大了免 疫反响的结果,使测定方法到达很高的敏感度。ELISA的类型ELISA可用于测定抗原,也可用于测定抗体。在这种测定方法中有三个 必要的试剂:(1)固相的抗菌素原或抗体,即免疫吸附剂(immunosorbent); (2) 酶标记的抗原或抗体,称为“结合物(conjugate); (3)
4、酶反响的底物。根据试剂的 来源和标本的情况以及检测的具体条件,可设计出各种不同类型的检测方法。用于 临床检验的ELISA主要有以下几种类型:双抗体夹心法测抗原双抗体夹心法是检测抗原最常用的方法,操作步骤如下:间接法是检测抗体常用的方法。其原理为利用酶标记的抗抗体(抗人免疫球蛋白抗 体)以检测与固相抗原结合的受检抗体,故称为间接法。操作步骤如下:1)将特异 性抗原与固相载体联结,形成固相抗原。洗涤除去未结合的抗原及杂质。2)加稀释 的受检血清,保温反响。血清中的特异抗体与固相抗原结合,形成固相抗原抗体复 合物。经洗涤后,固相载体上只留下特异性抗体,血清中的其他成份在洗涤过程中 被洗去。3)加酶标
5、抗抗体。可用酶标抗人Ig以检测总抗体,但一般多用酶标抗人 IgG检测IgG抗体。固相免疫复合物中的抗体与酶标抗体抗体结合,从而间接地标 记上酶。洗涤后,固相载体上的酶量与标本中受检抗体的量正相关。4)加底物显色 本法主要用于对病原体抗体的检测而进行传染病的诊断。间接法的优点是只要变换 包被抗原就可利用同一酶标抗抗体建立检测相应抗体的方法。间接法成功的关键在于抗原的纯度。虽然有时用粗提抗原包被也能取得实际有效的 结果,但应尽可能予以纯化,以提高试验的特异性。特别应注意除去能与一般健康 人血清发生反响的杂质,例如以E.Coli为工程酶的重组抗原,如其中含有E.Coli成 份,很可能与受过E.Col
6、i感染者血甭中的抗E.Coli抗体发生反响。抗原中也不能含 有与酶标抗人Ig反响的物质,例如来自人血浆或人体组织的抗原,如不将其中的Ig 去除,试验中也发生假阳性反响。另外如抗原中含有无关蛋白,也会因竞争吸附而 影响包被效果。间接法中另一种干扰因素为正常血清中所含的高浓度的非特异性。病人血清中受检 的特异性IgG只占总IgG中的一小局部。IgG的吸附性很强,非特异IgG可直接吸 附到固相载体上,有时也可吸附到包被抗原的外表。因此在间接法中,抗原包被后 一般用无关蛋白质(例如牛血清蛋白)再包被一次,以封闭(blocking)固相上的空 余间隙。另外,在检测过程中标本须先行稀释(1:401:200
7、),以防止过高的阴性本 底影响结果的判断。竞争法测抗体触凌厂网- -LT当抗原材料中的干扰物质不易除去,或不易得到足够的纯化抗原时,可用此法检测 特异性抗体。其原理为标本中的抗体和一定量的酶标抗体竞争与固相抗原结合。标 本中抗体量越多,结合在固相上的酶标抗体愈少,因此阳性反响呈色浅于阴性反响。 如抗原为高纯度的,可直接包被固相。如抗原中会有干扰物质,直接包被不易成功, 可采用捕获包被法,即先包被与固相抗原相应的抗体,然后加入抗原,形成固相抗 原。洗涤除去抗原中的杂质,然后再加标本和酶标抗体进行竞争结合反响。竞争法 测抗体有多种模式,可将标本和酶标抗体与固相抗原竞争结合,抗HBc ELISA 一
8、般采用此法。另一种模式为将标本与抗原一起加入到固相抗体中进行竞争结合, 洗涤后再加入酶标抗体,与结合在固相上的抗原反响。抗HBe的检测一般采用此法。2.2.5 竞争法测抗原小分子抗原或半抗原因缺乏可作夹心法的两个以上的位点,因 此不能用双抗体夹心法进行测定,可以采用竞争法模式。其原理是标本中的抗原和 一定量的酶标抗原竞争与固相抗体结合。标本中抗原量含量愈多,结合在固相上的 酶标抗原愈少,最后的显色也愈浅。小分子激素、药物等ELISA测定多用此法。2.2.6 捕获包被法测抗体k,f - kAIgM抗体的检测用于传染病的早期诊断中。间接法ELISA 一般仅适用于检测总抗 体或IgG抗体。如用抗原包
9、被的间接法直接测定IgM抗体,因标本中一般同时存在 较高浓度的IgG抗体,后者将竞争结合固相抗原而使一部份IgM抗体不能结合到固 相上。因此如用抗人IgM作为二抗,间接测定IgM抗体,必须先将标本用A蛋白 或抗IgG抗体处理,以除去IgG的干扰。在临床检验中测定抗体IgM时多采用捕获 包被法。先用抗人IgM抗体包被固相,以捕获血清标本中的IgM (其中包括针对抗 原的特异性IgM抗体和非特异性的IgM)。然后加入抗原,此抗原仅与特异性IgM 相结合。继而加酶标记针对抗原的特异性抗体。再与底物作用,呈色即与标本中的 IgM成正相关。此法常用于病毒性感染的早期诊断。甲型肝炎病毒(HAV)抗体的 检
10、测模式见图。 类风湿因子(RF)同样能干扰捕获包被法测定IgM抗体,导致 假阳性反响。因此中和IgG的间接法近来颇受青睐,用这类试剂检测抗CMV IgGM 和抗弓形虫IgM抗体已获成功。2.2.7 ABS-ELISA法 ABS为亲和素(avidin)生物素(biotin)系统(system)的略语。亲和 素是一种糖蛋白,分子量60000,每个分子由4个能和生物素结合的亚基组成。生 物素为小分子化合物,分子量244。用化学方法制成的衍生物素-羟基琥珀酰亚胺酯 可与蛋白质和糖等多种类型的大小分子形成生物素标记产物,标记方法颇为简便。 生物素与亲和素的结合具有很强的特异性,其亲和力较抗原抗体反响大得
11、多,两者 一经结合就极为稳定。由于一个亲和素可与4个生物素分子结合,因此如把ABS 与ELISA法可分为酶标记亲和素-生物素(LAB)法和桥联亲和素-生物素(ABC) 法两种类型。两者均以生物素标记的抗体(或抗原)代替原ELISA系统中的酶标抗 体(抗原)。在LAB中,固相生物素先与不标记的亲和素反响,然后再加酶标记的 生物素以进一步提高敏感度。在早期,亲和素从蛋清中提取,这种卵亲和素为碱性 糖蛋白,与聚苯乙烯载体的吸附性很强,用于ELISA中可使本底增高。从链霉菌中 提取的链霉亲和素那么无此缺点,在ELISA应用中有替代前者的趋势。由于 ABS-ELISA较普通ELISA多用了两种试剂,增加
12、了操作步骤,在临床检验中 ABS-ELISA应用不多。在临床检验中一般采用商品试剂盒进行测定。前文(2.2)已述,ELISA中有三个 必要的试剂:免疫吸附剂、结合物和酶的底物。 完整的ELISA试剂盒包含以下 各组分:(1)已包被抗原或抗体的固相载体(免疫吸附剂);(2)酶标记的抗原或抗 体(结合物);(3)酶的底物;(4)阴性对照品和阳性对照品(定性测定中),参考 标准品和控制血清(定量测定中);(5)结合物及标本的稀释液;(6)洗涤液;(7) 酶反响终止液。2.2.8 吸附剂 已包被抗原或抗体的固相载体在低温(28)干燥的条件下一般 可保存6个月。有些不完整的试盒,仅供应包被用抗原或抗体,
13、检测人员需自行包 被。以下简述固相载体和包被过程。1.1.1 固相载体 固相载体在ELISA测定过程中作为吸附剂和容器,不参与化学反响。 可作ELISA中载体的材料很多,最常用的是聚苯乙烯。聚苯乙烯具有较强的吸附蛋 白质的性能,抗体或蛋白质抗原吸附其上后仍保存原来的免疫学活性,加之它的价 格低廉,所以被普遍采用。聚苯乙烯为塑料,可制成各种形式。ELISA载体的形 状主要有三种:微量滴定板、小珠和小试管。以微量滴定板最为常用,专用于EILSA 的产品称为ELISA板,国际上标准的微量滴定板为8x12的96孔式。为便于作少量 标本的检测,有制成8联孔条或12联孔条的,放入座架后,大小与标准ELIS
14、A板 相同。ELISA板的特点是可以同时进行大量标本的检测,并可在特制的比色计上迅 速读出结果。现在已有多种自动化仪器用于微量滴定板型的ELISA检测,包括加样、 洗涤、保温、比色等步骤,对操作的标准化极为有利。聚苯乙烯经射线照射后,其 吸附性能特别是对免疫球蛋白的吸附性能增加,应用于双抗体夹心法可使固相上抗 体量增多,但用于间接法测抗体时空白值较大。良好的ELISA板应该是吸附性能好,空白值低,孔底透明度高,各板之间、同一板各孔之间、同一板各孔之间性 能相近。聚苯乙烯ELISA板由于原料的不同和制作工艺的差异,各种产品的质量差 异很大,因此,每一批号的ELISA板在使用前须事先检查其性能。常
15、用的检查方法 为:以一定浓度的人IgG (一般为10ng/mD包被ELISA板各孔,洗涤后每孔内加 入适当稀释度的酶标抗人IgG抗体,保温后洗涤,加底物显色,终止酶反响后,分 别测每孔溶液的吸光度。控制反响条件,使各孔读数在吸光度0.8左右。计算全部 读数的平均值。所有单个读数与全部读数的均数之差,应小于10%0 与聚苯乙烯 类似的塑料是聚氯乙烯。作为ELISA固相载体,聚氯乙烯的特点为质软板薄,可剪 害I,价廉,但光洁度不如聚苯乙烯板,孔底亦不如聚苯乙烯平整。聚氯乙烯对蛋白 质的吸附性能比聚苯乙烯高,但空白值也略高。为比拟不同固相在某一 ELISA 测定中的优劣,可应用如下的试验:用其他免疫
16、学测定方法选出一个典型的阳性标 本和阴性标本,将它们进行一系列稀释后,在不同的固相载体上按预定的ELISA操 作步骤进行测定,然后比拟结果。在哪一种载体上阳性结果与阴性结果差异最大, 这种载体就是这一 ELISA测定工程的最合适的固相载体。在ELISA中,用作固相载体的小珠一般为直径0.6cm的圆珠,外表经磨砂处理后吸附面积大大增加。 ELISA板孔的吸附面积约为200mm2,小珠均为1000mm2,将近ELISA板孔的5 倍。吸附面积的增大即意味着固相抗原或抗体量的增加。再者,球型小珠的外表弧 度更有利于吸附的抗原决定簇或抗体结合位点的暴露面处于最正确反响状态,因此珠 式ELISA的反响往往
17、更为灵敏。小珠的另一特点是更易于使洗涤彻底,使用特殊的 洗涤器,使小珠在洗涤过程中滚动淋洗,其洗涤效果远较板孔的浸泡式为好。但由 于磨砂工艺的难度较大,小珠的均一性较差。小试管作为固相载体也有较大的吸 附外表,而且标本的反响量也相应增加。板式及珠式ELISA的标本量一般为 100-200U1,而小试管可根据需要加大反响体积,标本反响量的增加有助于试验敏感 性的提高。小试管还可以当作比色杯,最后直接放入分光光度计中比色。也有应 用聚苯乙烯胶乳或其他材料制成的微粒作为ELISA固相载体的。其优点是外表积极 大,反响在悬液中进行,其速率与液相反响近似。以含铁的磁性微粒作为ELISA固 相载体,反响后
18、用磁铁的吸引进行别离,洗涤方便,试剂盒一般均配以特殊仪器。1.1.2 包被的方式 将抗原或抗体固定在过程称为包被(coating)。换言之,包被即是 抗原或抗体结合到固相载体外表的过程。蛋白质与聚苯乙烯固相载体是通过物理吸 附结合的,靠的是蛋白质分子结构上的疏水基团与固相载体外表的疏水基团间的作 用于。这种物理吸附是非特异性的,受蛋白质的分子量、等电点、浓度等的影响。 载体对不同蛋白质的吸附能力是不相同的,大分子蛋白质较小分子蛋白质通常含有 更多的疏水基团,故更易吸附到固相载体外表。IgG对聚苯乙烯等固相具有较强的 吸附力,其联结多发生在Fc段上,抗体结合点暴露于外,因此抗体的包被一般均采 用
19、直接吸附法。蛋白质抗原大多也可采用与抗体相似的方法包被。当抗原决定簇存 在于或邻近于疏水区域时,抗原与固相载体的直接吸附可使抗原决定簇不能充分暴 露,在这种情况下,直接包被效果不佳,可以采用间接的捕获包被法,即先将针对 该抗原的特异抗体作预包被,其后通过抗原抗体反响使抗原固相化。此间接结合在 固相上的抗原远离载体外表,其抗原决定簇也得以充分暴露。间接包被的抗原经固 相抗体的亲和层析作用,包被在固相上的抗原纯度大大提高,因此含杂质较多的抗 原也可采用捕获包被法(见2.2.4),试验的特异性、敏感性均由此得以改善,重复 性亦佳。间接包被的另一优点是抗原用量少,仅为直接包被的1/10乃至于“00。不
20、 易吸附在聚苯乙烯载体上的非蛋白质抗原可采用特殊的包被方式。例如,在检测抗 DNA抗体时,需用DNA作为包被抗原,而普遍的固相载体一般不能直接与核酸结 合。可将聚苯乙烯板先经紫外线照射(例如30W紫外灯,75cm照射12小时),以 增加其吸附性能。固相载体先用碱性蛋白质,如聚赖氨酸、鱼精蛋白等作预包被, 也可提高核酸的结合力。也可用亲和素生物素系统作间接包被,即用亲和素先包被 载体,然后加入生物素化的DNA,这种包被方法均匀、牢固,已扩大应用于各种抗 原物质的定量测定。脂类物质无法与固相载体结合,可将其在有机溶剂(例如乙 醇)中溶解后加入ELISA板孔中,开盖置冰箱过夜或冷风吹干,待酒精挥发后
21、,让 脂质自然干固在固相外表。抗心磷脂抗体的ELISA试剂一般采用这种包被方式。1.1.3 包被用抗原用于包被固相载体的抗原按其来源不同可分为天然抗原、重组抗原和合成多肽抗原三大类。天然抗原可取自动物组织、微生物培养物等,须经提 取纯化才能作包被用。如HBsAg可以从携带者的血清中提取,一般的细菌和病毒抗 原可以从其培养物中提取,蛋白成份抗原可从富含此抗原的材料中提取等(例如AFP 从脐带血或胎肝中提取)。重组抗原是抗原基因在质粒体中表达的蛋白质抗原,多以 大肠杆菌或酵母菌为质粒体。重组抗原的优点是除工程菌成份外,其他杂质少,而 且无传染性,但纯化技术难度较大。以大肠杆菌为质粒体的重组抗原如不
22、能充分除 大肠杆菌成份,用于ELISA,在反响中可出现假阳性,因不少受检者受大肠杆菌感 染而在血清中存在抗大肠杆菌抗体。重组抗原的另一特点是能用基因工程制备某些 无法从天然材料中别离的抗原物质。例如丙型肝炎病毒(HCV)尚不能培养成功, 而且丙肝病人血清中HCV抗原含量极微。目前检测抗HCV ELISA中所用包被抗 原大多为根据HCV的基因克隆表达而制备的重组抗原。在传染病诊断中,不少重 组抗原如HBsAg、HBeAg和HIV抗原等均在ELISA中取得应用。合成多肽抗原是 根据蛋白质抗原分子的某一抗原决定簇的氨基酸序列人工合成的多肽片段。多肽抗 原一般只含有一个抗原决定簇,纯度高,特异性也高,
23、但由于分子量太小,往往难 于直接吸附于固相上。多肽抗原的包被一般需先使其与无关蛋白质如牛血清白蛋白 质(BSA)等偶联,借助于偶联物与固相载体的吸附,间接地结合到固相载体外表。 应用多肽抗原的另一注意点为他仅能检测与其相应的抗体。一种蛋白质抗原往往含 有多个不同的能引起抗体产生的决定簇,因此在受检血清中的其他抗体就不能与该 多肽抗原发生反响。另外,某些微生物发生变异时往往发生抗原结构变化,在这种 情况下,用个别多肽抗原进行包被可引起其他抗体的漏检。1.1.4 包被用抗体包被固相载体的抗体应具有高亲和力和高特异性,可取材于抗血 清或含单克隆抗体的腹水或培养液。如免疫用抗原中含有杂质(即便是极微量
24、的), 在抗血清中将出现杂抗体,必须除去(可用吸收法)后才能用于ELISA,以保证试 验的特异性。抗血清不能直接用于包被,应先提取IgG,通常采用硫酸镂盐析和 Sephadex凝胶过滤法。一般经硫酸钱盐析粗提的IgG已可用于包被,高度纯化的IgG 性质不稳定。如需用高亲和力的抗体包被以提高试验的敏感性,那么可采用亲和层析 法以除去抗血清中含量较多的非特异性IgGo腹水中单抗的浓度较高,特异性亦较 强,因此不需要作吸收和亲和层析处理,一般可将腹水作适当稀释后直接包被,必 要时也可用纯化的IgGo应用单抗包被时应注意,一种单抗仅针对一种抗原决定簇, 在某些情况下,用多种单抗混合包被,可取得更好的效
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