标本采集法讲稿.ppt
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1、关于标本采集法第一页,讲稿共五十七页哦一、血液标本的采集一、血液标本的采集第二页,讲稿共五十七页哦血标本的分类和目的血标本的分类和目的全血:全血:用作用作血沉、血常规、糖化血红蛋白或血沉、血常规、糖化血红蛋白或测定血液测定血液中某些物质的含量等中某些物质的含量等血清:血清:全血自然凝固后析出的液体全血自然凝固后析出的液体,用于用于生物化学、免生物化学、免疫学检测疫学检测等,如血清酶、脂类、电解质、肝功能等,如血清酶、脂类、电解质、肝功能血培养标本:血培养标本:查找血液中的致病菌查找血液中的致病菌第三页,讲稿共五十七页哦KHB 真空采血管产品基本类型真空采血管产品基本类型 第四页,讲稿共五十七页
2、哦正确粘贴检验标签正确粘贴检验标签不遮盖刻度,留有观察空间第五页,讲稿共五十七页哦v真空采血器排序:真空采血器排序:血培养血培养 无抗凝管无抗凝管 抗凝管抗凝管v注射器法:注射器法:血培养血培养 抗凝管抗凝管 无抗凝管无抗凝管v温馨提示温馨提示:vEDTA管(紫)最好不要放在血清管前,因其中的抗凝剂含钾离子,可能影响血清钾管(紫)最好不要放在血清管前,因其中的抗凝剂含钾离子,可能影响血清钾的检验值。的检验值。v采血管数较多时,蓝色凝血管先采十分必要,因为随着采血时间的延长,凝血采血管数较多时,蓝色凝血管先采十分必要,因为随着采血时间的延长,凝血因子会发生变化。但不建议首采。因子会发生变化。但不
3、建议首采。标本试管排序标本试管排序第六页,讲稿共五十七页哦温馨提示:注意试管及注意试管及进血针的角进血针的角度度第七页,讲稿共五十七页哦正确的混合血液和抗凝剂第八页,讲稿共五十七页哦温馨提示::v一般情况下不在输液时留取血标本。如因抢救等原一般情况下不在输液时留取血标本。如因抢救等原因需要在输液同时采血的,因需要在输液同时采血的,一定要在输液对侧采集一定要在输液对侧采集标本标本v止血带使用时间应少于止血带使用时间应少于1分钟分钟(建议在针头穿刺进(建议在针头穿刺进入血管后即放松止血带),以免引起血液淤滞,局部组入血管后即放松止血带),以免引起血液淤滞,局部组织缺氧,造成血液某些成分的改变,特别
4、是测定乳酸时织缺氧,造成血液某些成分的改变,特别是测定乳酸时不可使用止血带,否则结果偏高。不可使用止血带,否则结果偏高。第九页,讲稿共五十七页哦v温馨提示:下列原因可能会至血标本溶血,应避免发生温馨提示:下列原因可能会至血标本溶血,应避免发生 v注射器采血时抽吸力太大;注射器采血时抽吸力太大;v 血液与抗凝剂比例失调;血液与抗凝剂比例失调;v 混匀标本时过度振荡;混匀标本时过度振荡;v 注射器或盛血容器带水或容器污染;注射器或盛血容器带水或容器污染;v全血放置时间长或突然受冷或受热;全血放置时间长或突然受冷或受热;v注射器中的血沫注入试管;注射器中的血沫注入试管;v真空采血时如未采满至相应刻度
5、,可由于残存负压造成红真空采血时如未采满至相应刻度,可由于残存负压造成红细胞破裂;细胞破裂;v标本离心时离心力过大等等。标本离心时离心力过大等等。第十页,讲稿共五十七页哦血培养血培养1、预防败血症、预防败血症2、确定致病细菌,确定抗生素、确定致病细菌,确定抗生素3、监控抗生素的浓度和细菌杀死的情况、监控抗生素的浓度和细菌杀死的情况第十一页,讲稿共五十七页哦肉汤肉汤琼脂琼脂第十二页,讲稿共五十七页哦 一套血培养标本一套血培养标本Aerobic rubik 需氧瓶需氧瓶Anaerobic neirubik 厌氧瓶厌氧瓶第十三页,讲稿共五十七页哦抽血培养的注意事项:抽血培养的注意事项:1、严格、严格
6、无菌无菌操作操作2、检查培养瓶的有效期、检查培养瓶的有效期3、一般血培养的采血量为、一般血培养的采血量为5ml,亚急性心内膜炎亚急性心内膜炎患者,患者,为提高培养阳性率,采血量增至为提高培养阳性率,采血量增至1015ml第十四页,讲稿共五十七页哦“何时采血进行血培养,无特殊时间要求。”关于采血时机关于采血时机第十五页,讲稿共五十七页哦03060时间(分钟)体温体温血培养采血时机血培养采血时机细菌浓度细菌浓度时间(分钟)体温体温血培养采血时机血培养采血时机细菌浓度细菌浓度第十六页,讲稿共五十七页哦采集血培养样本的最佳时间采集血培养样本的最佳时间v尽可能在患者寒战或开始发热时采血v在患者接受抗生素
7、治疗前采血v如患者已经应用抗菌药物进行治疗,应在下一次用药之前采血培养 第十七页,讲稿共五十七页哦“每瓶采集多少血液无特殊要求。”关于采血量关于采血量第十八页,讲稿共五十七页哦采血量(ml)与检出率的关系 Overall血培养物每增加一毫升,真性菌血症血培养物每增加一毫升,真性菌血症成年人微生物的检出率增加成年人微生物的检出率增加3 但并非越多越好,超过一定数量的采血量会稀释培养瓶内但并非越多越好,超过一定数量的采血量会稀释培养瓶内的肉汤,使肉汤无法有效中和血中的抑制物质(补体、抗体、抗的肉汤,使肉汤无法有效中和血中的抑制物质(补体、抗体、抗生素)。所以血液与肉汤的最佳比例为生素)。所以血液与
8、肉汤的最佳比例为1:41:10血培养物每增加一毫升,真性菌血症血培养物每增加一毫升,真性菌血症成年人微生物的检出率增加成年人微生物的检出率增加3 但并非越多越好,超过一定数量的采血量会稀释培养瓶内但并非越多越好,超过一定数量的采血量会稀释培养瓶内的肉汤,使肉汤无法有效中和血中的抑制物质(补体、抗体、的肉汤,使肉汤无法有效中和血中的抑制物质(补体、抗体、抗生素)。所以血液与肉汤的最佳比例为抗生素)。所以血液与肉汤的最佳比例为1:41:10血培养物每增加一毫升,真性菌血症血培养物每增加一毫升,真性菌血症成年人微生物的检出率增加成年人微生物的检出率增加3第十九页,讲稿共五十七页哦关于采集血液量关于采
9、集血液量v采血量是影响灵敏度最关键因素v成人一份标本2 2个个培培养养瓶瓶(需需氧氧厌厌氧氧),每每瓶瓶5 510ml10ml,共共1020ml1020ml;采血量不足时应优先保证需氧瓶,因临床9090以上的感染为需氧菌或兼性需氧菌感染 第二十页,讲稿共五十七页哦培养瓶的消毒程序培养瓶的消毒程序1.1.1.1.去掉培养瓶口的塑料瓶盖。去掉培养瓶口的塑料瓶盖。去掉培养瓶口的塑料瓶盖。去掉培养瓶口的塑料瓶盖。2.2.2.2.75%75%75%75%酒精酒精酒精酒精消毒血培养瓶橡皮塞子消毒血培养瓶橡皮塞子消毒血培养瓶橡皮塞子消毒血培养瓶橡皮塞子1515秒。秒。秒。秒。3.3.3.3.自然待干。自然待
10、干。自然待干。自然待干。将标本注入培养瓶内。将标本注入培养瓶内。将标本注入培养瓶内。将标本注入培养瓶内。5.5.5.5.颠倒混匀标本与肉汤,以避免血液凝集。颠倒混匀标本与肉汤,以避免血液凝集。颠倒混匀标本与肉汤,以避免血液凝集。颠倒混匀标本与肉汤,以避免血液凝集。第二十一页,讲稿共五十七页哦动脉采血动脉采血第二十二页,讲稿共五十七页哦普通注射器法普通注射器法1、部位选择、部位选择 桡动脉桡动脉:穿刺点在前臂掌侧腕关节上:穿刺点在前臂掌侧腕关节上2cm 动脉搏动明显处动脉搏动明显处 股动脉:股动脉:腹股沟扪及搏动最明显处腹股沟扪及搏动最明显处 2、局部消毒:直径大于、局部消毒:直径大于5cm3、
11、抽吸肝素抽吸肝素:抽吸:抽吸0.5ml入注射器内,湿润注射入注射器内,湿润注射 器内器内壁后,余液去掉。壁后,余液去掉。4、血抽出后用一块小橡皮封针头以隔绝空气,并将注、血抽出后用一块小橡皮封针头以隔绝空气,并将注射器放在手中双手来回搓动,使血液和抗凝剂充分射器放在手中双手来回搓动,使血液和抗凝剂充分混匀,混匀,立即送检。立即送检。第二十三页,讲稿共五十七页哦动脉血标本采集注意事项:动脉血标本采集注意事项:v血气标本应立即送检(血气标本应立即送检(28冷藏情况下不超过冷藏情况下不超过30分分钟钟)。抽血后,由于血细胞还在继续新陈代谢,使)。抽血后,由于血细胞还在继续新陈代谢,使pH、pO2下降
12、,下降,pCO2升高,时间过长影响结果的真实性。升高,时间过长影响结果的真实性。v抽血后按穿刺点抽血后按穿刺点510分钟分钟第二十四页,讲稿共五十七页哦三、尿标本的采集三、尿标本的采集 尿标本的分类尿标本的分类v尿常规标本尿常规标本v尿培养标本尿培养标本v3h、12h、24h尿标本尿标本第二十五页,讲稿共五十七页哦1、尿常规标本、尿常规标本 查尿液的性状,有无管型和细胞,并作尿蛋白和尿查尿液的性状,有无管型和细胞,并作尿蛋白和尿糖的定性检测糖的定性检测用物准备:一次性尿杯用物准备:一次性尿杯第二十六页,讲稿共五十七页哦自理的病人:清晨首次尿为宜,留取自理的病人:清晨首次尿为宜,留取1/3到到1
13、/2杯送杯送检。检。留置导尿:集尿袋中放出尿液留置导尿:集尿袋中放出尿液第二十七页,讲稿共五十七页哦2、尿培养标本、尿培养标本 用于细菌培养和细菌敏感试验用于细菌培养和细菌敏感试验第二十八页,讲稿共五十七页哦中段尿留取法:中段尿留取法:1、导尿术、导尿术2、按导尿术清洁外阴、尿道口、按导尿术清洁外阴、尿道口嘱患者排去前段尿嘱患者排去前段尿用用试管留取试管留取5-10ml中段尿液中段尿液第二十九页,讲稿共五十七页哦自行排尿的中段尿液培养自行排尿的中段尿液培养v女性病人收集标本前用清洗液冲洗干净,从前向后仔细擦洗尿道区域分开阴唇,开始排尿排出几毫升后,不停止尿流,采集中段尿v男性病人回缩包皮,暴露
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