临床标本的留取精选PPT.ppt
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1、关于临床标本的留取关于临床标本的留取第1页,讲稿共52张,创作于星期一微生物检验标本的特殊性微生物检验标本的特殊性n n标本采集时效性n n抗生素和消毒剂的干扰n n环境微生物和机体正常菌群的污染n n标本送检时间n n标本来源多样第2页,讲稿共52张,创作于星期一检验过程中各阶段检验过程中各阶段对检验结果的影响程度对检验结果的影响程度 检验结果出现误差的原因并不全是来自于实验室检验结果出现误差的原因并不全是来自于实验室 检测环节而检验结果没有正确指检测环节而检验结果没有正确指导诊断也不能导诊断也不能 完全归咎于检验本身完全归咎于检验本身第3页,讲稿共52张,创作于星期一微生物培养标本采集送检
2、的基本原则1.及时采集微生物标本作病原学检查2.在抗菌药物使用前采集标本3.采样时严格执行无菌操作4.采样后立即送检5.标本容器须灭菌处理,但不得使用消毒剂。6.送检标本应注明来源和检验目的第4页,讲稿共52张,创作于星期一n n标本采集与运送的正确、及时与否直接关系到微生物检验结果的可靠性和阳性率高低n n不合格的标本或不合适的保存、运送方式必定导致不准确的结果,从而影响临床诊断,延误患者治疗n n业界共识:Garbage in,Garbage out!因此有必要规范微生物标本的采集与保存、运送方法,保证微生物检验的质量。第5页,讲稿共52张,创作于星期一临床微生物标本的种类带菌体液痰尿液
3、粪便咽拭子其他 无菌体液血液 脑脊液关节腔积液 胸腹水其他微生物实验室常被称为3D实验室(Dirty、Dump、Dangerous)第6页,讲稿共52张,创作于星期一血液培养标本的采集血液培养标本的采集血培养指征n n患者出现寒战,体温超过38或低体温,怀疑血流感染时,尤其存在以下情况时,应抽血做细菌和真菌培养:医院内肺炎;留置中心静脉导管超过72h;感染性心内膜炎;骨髓炎;有严重基础疾病、免疫缺陷伴全身感染症状;临床医生怀疑有血流感染可能的其他情况。第7页,讲稿共52张,创作于星期一血液培养标本的采集血液培养标本的采集采血时机n n一旦怀疑有血流感染可能,应立即采血做血培养,最好在抗菌治疗前
4、或停用抗菌药物24h后,尽可能在寒战、发热初期时采集。第8页,讲稿共52张,创作于星期一血液培养标本的采集血液培养标本的采集采血流程采血流程(为防止血培养污染,请先执行手卫生!)(为防止血培养污染,请先执行手卫生!)n n(1 1)消毒)消毒n n培养瓶消毒程序:弃去瓶顶塑料帽,用培养瓶消毒程序:弃去瓶顶塑料帽,用75%75%乙乙醇棉球消毒培养瓶橡皮塞,待干燥醇棉球消毒培养瓶橡皮塞,待干燥6060秒后使用。秒后使用。n n皮肤消毒程序:用皮肤消毒程序:用消毒液消毒液从穿刺点向外画圈消毒,至消毒区域直径达5cm5cm以上,待消毒液挥发干燥后以上,待消毒液挥发干燥后(常需30s30s以上)穿刺采血
5、。第9页,讲稿共52张,创作于星期一血液培养标本的采集血液培养标本的采集静脉穿刺和培养瓶接种静脉穿刺和培养瓶接种n n成人用注射器无菌穿刺取血后,排尽针头内空气,成人用注射器无菌穿刺取血后,排尽针头内空气,直接注入血培养瓶,勿换针头直接注入血培养瓶,勿换针头(如果行第二次穿刺或用头如果行第二次穿刺或用头皮针取血时,应换针头,先注于厌氧培养瓶,避免注入空皮针取血时,应换针头,先注于厌氧培养瓶,避免注入空气,然后注入需氧培养瓶,轻轻混匀以防血液凝固。成人气,然后注入需氧培养瓶,轻轻混匀以防血液凝固。成人瓶每瓶瓶每瓶8-10ml,8-10ml,儿童瓶每瓶儿童瓶每瓶1-3ml1-3ml。采血量不足时应
6、优注。采血量不足时应优注入需氧瓶中。近年来,临床普遍采用负压血培养瓶,入需氧瓶中。近年来,临床普遍采用负压血培养瓶,使用采血器将血从患者静脉直接吸入血培养瓶,减少使用采血器将血从患者静脉直接吸入血培养瓶,减少污染环节(污染环节(采血时培养瓶位置应低于采血点,防止负采血时培养瓶位置应低于采血点,防止负压不足时培养瓶内液体倒流入血管压不足时培养瓶内液体倒流入血管)。)。第10页,讲稿共52张,创作于星期一血液培养标本的采集血液培养标本的采集n n注意事项注意事项n n特殊部位或采集多套标本时应在血培养瓶上注明采特殊部位或采集多套标本时应在血培养瓶上注明采血的部位(如中心血的部位(如中心V、左侧肘、
7、左侧肘V V等)。等)。n n从静脉采血,不建议从动脉采血。采血部位通常为肘从静脉采血,不建议从动脉采血。采血部位通常为肘静脉,疑为细菌性心内膜炎时以肘动脉或股动脉采血为静脉,疑为细菌性心内膜炎时以肘动脉或股动脉采血为宜,切忌在静滴抗菌药物的静脉处采血。除非怀疑有导宜,切忌在静滴抗菌药物的静脉处采血。除非怀疑有导管相关的血流感染,否则不应从留置静脉或动脉导管取管相关的血流感染,否则不应从留置静脉或动脉导管取血,因为导管易被皮肤正常菌群污染。血,因为导管易被皮肤正常菌群污染。n n采血过程中绝对不可用手指触摸采血点第11页,讲稿共52张,创作于星期一血液培养标本的采集血液培养标本的采集n n采血
8、次数:对于成年患者,应该同时分别不同部位采集采血次数:对于成年患者,应该同时分别不同部位采集2-32-3套套血标本(一套为一瓶需氧一瓶厌氧),在不同部位分离到同样血标本(一套为一瓶需氧一瓶厌氧),在不同部位分离到同样菌种才能确定是病原菌。儿童由厌氧菌引起的血流感染非常罕菌种才能确定是病原菌。儿童由厌氧菌引起的血流感染非常罕见,一般无需常规做厌氧培养。见,一般无需常规做厌氧培养。n n采血后采血后3-53-5天内一般不需重复采血培养天内一般不需重复采血培养n n细菌性心内膜炎:在细菌性心内膜炎:在24h24h内取血内取血3 3次,每次间隔不少于次,每次间隔不少于30min30min;必要;必要时
9、次日再做血培养时次日再做血培养2 2次。次。采血套数及血量采血套数及血量1 1套套(20ml20ml)2 2套套(40ml40ml)3 3套(套(60ml60ml)检出率检出率65%65%80%80%96%96%CLSI指南:血培 养的原则和流程第12页,讲稿共52张,创作于星期一血液培养标本的采集血液培养标本的采集n n采血量:n n成人每次每培养瓶采血810ml,婴幼儿每次每培养瓶采血1-3ml。采血量过少会明显降低阳性率。一定量范围内每多1ml血液,阳性率增加3.6%,并非越多越好,超过一定量血液会稀释培养基,使之无法中和血中的抑制物质(抗体、补体、抗生素等)第13页,讲稿共52张,创作
10、于星期一血液培养标本的采集血液培养标本的采集n n.运送要求n n所有标本采集后都应立即送往实验室,最好在2h内。如果不能及时送检,宜置于室温环境。血培养瓶送到检验科放入培养箱前,切勿暂存于冰箱内。第14页,讲稿共52张,创作于星期一血液培养标本的采集血液培养标本的采集送检标本条形码请竖贴于送检标本条形码请竖贴于培养瓶上的方框中培养瓶上的方框中瓶身本身的条码是用瓶身本身的条码是用来被机器识别之用,来被机器识别之用,所以粘贴的条码切勿完所以粘贴的条码切勿完全遮盖原有的瓶身条码。全遮盖原有的瓶身条码。不同部位采集的标本应不同部位采集的标本应在瓶身上手写标明位置。在瓶身上手写标明位置。第15页,讲稿
11、共52张,创作于星期一血液培养标本的采集血液培养标本的采集n n安全防护:放标本的容器必须防漏,禁止将渗漏的标本送往实验室。第16页,讲稿共52张,创作于星期一导管相关血流感染导管相关血流感染(CRBSI)n n送检指征:疑似患者有动静脉插管;血培养出细菌是皮肤正常菌或假菌血症的常见菌;n n培养方案:培养方案:1)1)拔除导管拔除导管:至少两份外周血培养至少两份外周血培养+导管尖端培养;导管尖端培养;2)2)保留导管:至少至少1 1份外周血培养份外周血培养+1+1份导管血培养,采血份导管血培养,采血间隔时间间隔时间5min;5min;n n诊断依据:诊断依据:外周血、导管血、导管尖端培养是同
12、一种外周血、导管血、导管尖端培养是同一种菌菌;n n血培养有不同的阳性报警时间(2h)第17页,讲稿共52张,创作于星期一CRBSI标本采标本采 集集n n外周血培养:经外周静脉穿刺采血。n n 导管血培养:从导管中或静脉留置口隔膜采血。n n导管尖端培养:导管周围皮肤消毒导管周围皮肤消毒 无菌剪切导管末端无菌剪切导管末端(约约5cm)5cm)标本装无菌管送检标本装无菌管送检 无菌管应无菌管应立即送检,立即送检,防干燥;防干燥;第18页,讲稿共52张,创作于星期一痰标本采集与运送痰标本采集与运送 细菌室每天收到的标本中,以咳痰标本数量最多,这也是细菌检验人员花费时间,精力最多的标本类型,但目前
13、临床上最不认可的也正是痰的细菌检验报告第19页,讲稿共52张,创作于星期一痰标本采集与运送痰标本采集与运送n n一般原则一般原则n n(1 1)采集标本的最佳时机应在使用抗菌药物之前。)采集标本的最佳时机应在使用抗菌药物之前。n n(2 2)最好在清晨采集标本。多数患者在清晨痰较多,且含菌)最好在清晨采集标本。多数患者在清晨痰较多,且含菌量也多,尤其是对平时痰量少的患者,清晨采痰相对容易。量也多,尤其是对平时痰量少的患者,清晨采痰相对容易。n n(3 3)对于普通细菌性肺炎,如果能采集到比较理想的痰液)对于普通细菌性肺炎,如果能采集到比较理想的痰液时建议一个检验周期(时建议一个检验周期(4 4
14、天)内只送天)内只送1 1次痰标本,不必连续送检,次痰标本,不必连续送检,更不建议更不建议24h24h内多次采样送检,除非痰液外观性状出现改变。内多次采样送检,除非痰液外观性状出现改变。n n(4 4)怀疑分枝杆菌感染者,应连续收集)怀疑分枝杆菌感染者,应连续收集3 3天清晨痰液送检。天清晨痰液送检。第20页,讲稿共52张,创作于星期一痰标本采集与运送痰标本采集与运送采集方法n n自然咳痰法与雾化导痰法n n嘱咐患者留取前摘去牙托,清洁口腔,如刷牙后反复嘱咐患者留取前摘去牙托,清洁口腔,如刷牙后反复用生理盐水漱口;深吸气后用力自气管深部咳出痰液,置用生理盐水漱口;深吸气后用力自气管深部咳出痰液
15、,置无菌容器内,最佳痰液采集量为无菌容器内,最佳痰液采集量为2-10ml,最低不少于最低不少于1ml1ml。应尽可能防止唾液及鼻咽部分泌物混入样品,不应用应尽可能防止唾液及鼻咽部分泌物混入样品,不应用纸巾包裹痰液纸巾包裹痰液n n无痰或痰量极少者可用无痰或痰量极少者可用35 5氯化钠溶液氯化钠溶液5ml雾化吸雾化吸入入5min5min后留取痰液后留取痰液。第21页,讲稿共52张,创作于星期一痰标本采集与运送痰标本采集与运送n n支气管镜法n n鼻或口腔插人支气管镜。常用采集方法有经支气管镜吸引、支气管肺泡灌洗、防污染毛刷采样或防污染支气管肺泡灌洗等。第22页,讲稿共52张,创作于星期一痰标本采
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