体外培养大鼠软骨细胞老化的机制初探资料.doc
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1、Good is good, but better carries it.精益求精,善益求善。体外培养大鼠软骨细胞老化的机制初探-体外培养大鼠软骨细胞老化的机制初探作者:陈晓东林建华作者单位:深圳平乐骨伤科医院,福建医科大学附属第一医院骨科广东深圳518010【摘要】目的对体外传代培养的大鼠软骨细胞进行相关因子检测,初步探讨其复制性老化(传代培养出现的老化表现)的机制。方法对连续培养的第二、三、四代软骨细胞进行实验,采用免疫细胞化学检测p16、pRb、E2F、CyclinD、CDK4等因子表达水平,TRAP-ELISA检测端粒酶活性,观察软骨细胞老化过程中各因子的变化。结果随着细胞复制性老化p1
2、6、pRb、CyclinD表达水平显著上升(P0.01),E2F、CDK4、端粒酶表达水平显著下降(P0.01)。结论体外培养软骨细胞老化过程与p16、pRb、CyclinD表达增加,E2F、CDK4、端粒酶表达下降密切相关。【关键词】软骨细胞;老化;机制基金项目:福建省科技计划重大资助项目(2004Y018)PreliminaryprobeintoagingmechanismofchondrocyteintheratsinvitroCHENXiao-Dong,LINJian-Hua.PingleBoneInjuriesHospitalinShenzhen,Shenzhen518010,Gua
3、ngdong,China【Abstract】ObjectiveTodeterminethecorrelatedfactorsofchondrocyteintheratsinvitrotoexploreitsreplicativesenescencemechanism.MethodsTheexpressionlevelsofp16,pRb,E2F,CyclinDandCDK4weredeterminedbyimmunocytochemistryandtelomeraseactivityweredetectedbyTRAP-ELISAinthesecond,thirdandfourthgenera
4、tionchondrocytesofconsecutivecultivationtoobservetheirchangesinsenescenceprocess.ResultsTheexpressionlevelsofp16,pRb,CyclinDsignificantlyincreased(P0.01),thoseofE2F,CDK4andtelomeraseobviouslydecreased(P0.01)withreplicativesenescenceinchondrocytes.ConclusionsThesenescenceprocessofchondrocyteintherats
5、invitroiscloselyrelatedtotheincreasedexpressionsofp16,pRbandCyclinDandthedecreasedexpressionsofE2F,CDK4andtelomerase.【Keywords】Chondrocyte;Senescence;Mechanism正常人类细胞在体外组织培养的传代过程中,逐渐丧失增殖传代的能力,最终达到一种不可逆的增殖停滞状态,这一现象是由Hayflick1等在研究人类二倍体成纤维细胞时最早报道的。这种似乎是无限期的增殖停滞状态被命名老化(senescence),由于老化是由分裂传代而达到的,故将这一过程命名
6、为复制老化(replicativesenescence)。软骨细胞属于终末分化细胞,其在体外的传代培养过程中出现增殖停滞,表型丧失,呈老化状态,这种老化属于复制性老化。细胞老化是细胞周期调控下多基因参与的复杂生理病理过程,具有一定的可控性。细胞周期调控因子及老化相关调控因子p16、pRb、CDK、cyclin、E2F、端粒酶等相互作用导致细胞老化。基于本研究的前期实验发现大鼠软骨细胞复制性老化发生在第4代2,这一发现与Loeser等3的研究结果一致,本实验将从细胞老化调控因子方面对体外培养的大鼠软骨细胞进行老化机制的初步探讨。1材料与方法1.1主要材料清洁级SD大鼠8只(福建医科大学实验动物中
7、心提供,闽验证字20050001,合格证号2005C03,4周龄,体重180200g左右,雄性)。MEM培养基及PBS(Gibco公司)、胎牛血清FBS(HyClone公司);胰蛋白酶1250及二甲基亚砜DMSO(Amersco公司)。SABC免疫细胞化学试剂盒和兔抗大鼠p16、pRb、E2F、CyclinD、CDK4抗体(武汉博士德公司)。TRAP-ELISA试剂盒及抗地高辛过氧化物酶:0.5U/m1(BoehringerMannheim德国),TMB底物液:3,3,5,5-四甲苯。1.2方法1.2.1大鼠软骨细胞的取材、培养、分组取SD大鼠8只,断颈处死,参考Hu等4软骨细胞分离培养方法进
8、行实验,获取软骨细胞置于5%CO2混和气体环境中,37恒温箱内单层培养,隔3d首次换液,810d达85%融合后进行传代培养。大鼠软骨细胞按传代次数分为第二代组、第三代组、第四代组(细胞接种密度为0.51061106,接种6孔板)。1.2.2免疫细胞化学法检测p16基因、E2F及pRb蛋白、CyclinD、CDK4表达采用链霉亲和素-生物素化过氧化酶复合物(SABC)法:将不同代次软骨细胞接种于6孔板,孔内均预置一块盖玻片,常规培养48h。用已知阳性切片做阳性对照,PBS代替一抗做阴性对照。结果分析:采用HPIAS21000高清晰度图像处理系统,计算出各代细胞型胶原阳性信号面积密度(Sv=型胶原
9、阳性信号面积/窗口面积窗口数);光镜下每个标本随机选5个高倍视野计数细胞,求出阳性表达率(%)。1.2.3端粒酶的TRAP-ELISA检测采用德国宝灵曼公司TRAP-ELISA标准试剂盒,TRAP反应试剂(细胞裂解液:含0.5%CHAPS,10mmol/LTris-HCl,1mmol/LMgCl2,1mmol/LEGTA,0.1mmol/L苯甲基磺酰氟,5mmol/L巯基乙醇,10%甘油;PCR反应液:20mmol/LTris-HCl(pH8.3),5mmol/LMgCl2,63mmol/LKCl,0.005%Tween-20,1mmol/LEGTA,50mol/LdNTP,0.1gTS寡核苷
10、酸,序列为5-AATCCGTCGAGCAGAGTT-3,TaqDNA聚合酶2U,牛血清白蛋白0.1mg/ml,0.03gCX引物,序列为5-CCCTTACCCTTACCCTTACCCTTA-3),ELISA试剂变性液:0.5mmol/LNaOH,1.5mmol/LNaCl;杂交液:地高辛标记端粒探针,20SSC,10%SDS,5mg/mlssDNA(变性断裂鲑精);终止液:5%硫酸。将培养的活力良好的细胞用0.25%的胰酶消化后,在计数板上精确计数2106个细胞,冷PBS洗2次,以下操作在冰上进行:加裂解液200l,冰上反应30min,16000r/min低温离心20min,取上清5l加入TR
11、AP反应液25l、DEPC30l,进行PCR扩增,9430s;5030s;7290s,循环33次。同时设阳性对照与阴性对照:阳性对照为人胚肾293细胞株(试剂盒提供),阴性对照为端粒酶提取物加1g/lRNaseA,37孵育20min;取5l扩增产物,加20l变性液,室温反应10min,加杂交液225l,充分混匀,将上述混合液体100l加入MTP包被微量反应板中,300r/min摇床、37孵育2h弃去杂交液,PBS清洗3次,每孔中加入100l抗地高辛过氧化物酶,300r/min摇床室温30min;弃去液体,清洗5次,加100lTMB底物液,室温下观察颜色反应。端粒酶阳性时,液体由无色透明逐渐变蓝
12、,弃去TMB底物液后,加入终止液,颜色由蓝变黄。加入终止液后30min内,在酶标仪上测A值,波长为450nm(以690nm波长为参考)根据A=A450-A690计算细胞端粒酶活性。1.3统计学方法应用SPSS11.0统计软件进行OnewayANOVA检验和Pearson相关分析,组间比较采用t检验。2结果2.1p16、pRb蛋白及CyclinD免疫细胞化学检测结果第二代组、第三代组、第四代组软骨细胞随代次增加,p16及pRb蛋白和CyclinD的阳性表达显著增加(均P0.01)。见图1、表1。2.2E2F因子和CDK4免疫细胞化学检测结果第二代组、第三代组、第四代组软骨细胞随代次增加,E2F因
13、子和CDK4的阳性表达显著减少(均P0.01)。见图1、表1。表1免疫细胞化学检测p16、pRb、E2F、CyclinD、CDK4蛋白的表达(略)2.3端粒酶TRAP-ELISA检测结果阴性对照组端粒酶的表达为0.0280.0026,阳性对照组为1.6270.2565,表达均呈非阳性表达,第二代组(0.0630.0070)、第三代组(0.0540.0053)、第四代组(0.0420.0025)细胞随代次增加端粒酶表达显著减少(P0.01)。2.4相关性分析R值显示:p16、CyclinD、pRb表达呈高度正相关(P0.01),E2F、CDK4、端粒酶表达呈高度正相关(P0.01);此两组之间又
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