Car-T细胞培养标准操作流程(共3页).docx
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1、精选优质文档-倾情为你奉上Car-T细胞培养标准操作流程1 目的:保证Car-T细胞制备和培养符合要求。2 范围:适用于符合实验的要求患者外周血制备和培养3 责任人:实验员人、临床相关人员。4 内容4.1耗材:50ml离心管,10ml移液管,5ml移液管,75cm2培养瓶,150 cm2培养瓶,EP管,1.8ml冻存管4.2试剂:X-VIVO 15TM,PBS缓冲液,75%医用酒精,人淋巴细胞分离液,CD3/CD28免疫磁珠,IL-2,注射用人血白蛋白。4.3环境:4.3.1外周血分离,培养应在恒温恒湿的万级层流室内进行,开放操作必须在百级生物安全柜内进行。4.3.2实验人员应提前对净化室和生
2、物安全柜进行杀菌消毒,紫外线照射时间不少于30min,消毒消毒后,净化空调开启时间不少于30min,生物安全柜运行稳定后方可操作。4.4操作:4.4.1采集接收外周血4.4.1.1患者符合治疗方案,各项检测符合要求,采集患者外周血60-80ml。4.4.1.2接收外周血并填写外周血采集交接记录,核对外周血患者相关信息,及相应检测报告,报告由医院提供,至少包括:HBsAg,HCVAb,HIVAb,Anti-TP,ALT。4.4.2操作前准备4.4.2.1净化室,生物安全柜消毒完毕后,开启净化空调运行30min,生物安全柜运行稳定。4.4.2.2从试剂间冰箱中取出细胞培养基,恢复室温。4.4.2.
3、3生物安全柜表面75%酒精消毒,外周血袋表面酒精消毒转入安全柜内。4.4.3 分离单个核细胞(PBMC):4.4.3.1使用灭菌消毒的剪刀剪断血袋塑料管或者使用一次性注射器,把血袋内外周血转入50ml离心管中。4.4.3.2用PBS缓冲液按1:1稀释外周血,混匀。4.4.3.3将稀释好的血样缓慢加入室温的15ml人淋巴细胞分离液的离心管中。方法如下:用10ml移液管吸取血样,伸至分离液液面上方0.5cm处,血样自然滑落铺至分离液面上,然后轻轻加入血样,注意不要冲破液面。4.4.3.4配平离心1200g(2100r/min)离心20min,慢升慢降。4.4.3.5离心完成后,离心管出
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- Car 细胞培养 标准 操作 流程
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