T∕CVMA 95-2022 小反刍兽疫病毒时间分辨荧光免疫层析抗体检测方法.pdf
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1、ICS 11.220B 41团体标准T/CVMA 952022小反刍兽疫病毒时间分辨荧光免疫层析抗体检测方法TRFIA for detection of antibodies against Peste des Petits RuminantsVirus2022-08-12 发布2022-08-12 实施中国兽医协会发 布T/CVMA 952022I前言本文件按照 GB/T 1.1-2020标准化工作导则 第1部分:标准化文件的结构和起草规则的规定起草。请注意本文件的某些内容可能涉及专利。本文件的发布机构不承担识别这些专利的责任。本文件由洛阳现代生物技术研究院有限公司提出。本文件由中国兽医协会
2、归口。本文件起草单位:洛阳现代生物技术研究院有限公司、青海省动物疫病预防控制中心、洛阳莱普生信息科技有限公司。本文件主要起草人:郎洪武、孙雨、袁忠勋、王善普、蔡金山、张志平、阚威、游潇倩、耿玉静、吴彬、原小燕、白雪、张鹏翼、李勤楠。T/CVMA 9520221小反刍兽疫病毒时间分辨荧光免疫层析抗体检测方法1范围本文件规定了小反刍兽疫病毒时间分辨荧光免疫层析抗体检测方法的试剂与耗材、器材与设备、技术原理、操作步骤、实验成立条件、结果判定等内容。本文件适用于检测羊全血或血清中的小反刍兽疫病毒抗体,用于小反刍兽疫病毒抗体的免疫筛查和辅助诊断。2规范性引用文件下列文件中的内容通过文中的规范性引用而构成
3、本文件必不可少的条款。其中,注日期的引用文件,仅该日期对应的版本适用于本文件;不注日期的引用文件,其最新版本(包括所有的修改单)适用于本文件。NY/T 541-2016兽医诊断样品采集、保存与运输技术规范3术语和定义下列术语和定义适用于本文件。3.1时间分辨荧光免疫层析技术 Time Resolved Fluorescence Immunochromatographyassay(TRFIA)是以时间分辨荧光微球作为示踪物,将抗原抗体固定在硝酸纤维素膜上,通过层析来呈现免疫反应结果的一种新型免疫分析技术。4符号与缩略语下列缩略语适用于本文件。BSA:牛血清白蛋白5试剂与耗材5.1小反刍兽疫病毒荧
4、光微球抗体检测卡,按照附录 A 制备。5.2相关试剂配制,按照附录 B 配制。5.3小反刍兽疫抗体阳性血清,按照附录 C 制备。5.4微量毛细采样管(10 L)。T/CVMA 95202225.5移液枪(10 L100 L)。5.6便携式免疫荧光分析仪及配套 ID 卡,能在荧光检测波段 365/610 nm 条件下检测,按照附录 D 操作。5.7注射器(5 mL)。6技术原理采用时间分辨荧光免疫层析技术和双抗原夹心法结合技术,检测小反刍兽疫抗体。通过样本与荧光微球标记物沿层析膜移动,样本中羊小反刍兽疫病毒抗体与荧光微球标记物、检测线(T线)上的抗原结合而产生荧光信号值(T值),荧光微球标记物继
5、续移动与质控线(C线)上的抗体结合产品荧光信号值(C值),仪器计算出T/C值即为PPRV抗体检测值。7操作步骤7.1实验前准备7.1.1样品采集按照NY/T 541-2016中规定进行样本的采集与处理,并做好个人防护。进行被检羊只静脉无菌采血,不少于2 mL。室温静置于斜面2 h,待血液自然凝固后,置2 8 冰箱中放置不少于2 h,4000 r/min离心10 min。用移液枪小心吸出上层血清。血清应清亮,无溶血、无污染。若无上述条件分离血清,可直接用被检羊只全血检测。全血样品容器中应加0.1%肝素钠、阿氏液、3.8%4.0%枸橼酸钠(0.1 mL可抗1 mL血液)或乙二胺四乙酸(EDTA)等
6、抗凝剂,采血后充分混合。7.1.2血清样本的存放与运送按照NY/T 541-2016中规定进行血清样本的存放与运输。血清样本若在一周内检测,可置2 8 条件下保存。若超过一周检测,应置于-20 以下冷冻保存。运输时注意冷藏,确保样品清亮无污染。采集的血清样本可用冰袋或保温桶加冰密封等方式运输,运输时间应尽量缩短。按照相关规范要求进行样品的生物安全标识。7.1.3全血样本的存放与运送按照NY/T 541-2016中规定进行全血样本的存放与运输。全血样本若在24 h内检测,应置于4 条件下保存;若超过24 h检测,应置于-20 以下冷冻保存。采集的全血样本可用冰袋或保温桶加冰密封等方式运输,运输时
7、间应尽量缩短。按照相关规范要求进行样品的生物安全标识。7.1.4仪器的准备打开便携式荧光免疫分析仪,选择待检项目;结果如需打印,同时打开蓝牙打印机,并与便携式荧光免疫分析仪连接成功。7.2样品稀释液T/CVMA 9520223将微量毛细采样管取10 L全血或血清样本加入到已备好的样本稀释液管中混匀,稀释后的样品应在1 h内完成检测。可按照以下两种方式稀释:a)离心管稀释,将检测样品在 1.5 mL 离心管中做 10 倍稀释并混匀。b)稀释板稀释,将检测样品在稀释板上做 10 倍稀释并混匀。7.3样品检测7.3.1取检测卡将恢复至室温的试纸卡从铝箔包装中取出,将检测卡放于平整、洁净的实验台面上。
8、7.3.2加样及孵育用配套吸管吸取已稀释好的样本,垂直而缓慢的滴加23滴(约80 L)到加样孔内,室温下放置10 min15 min。7.3.3仪器检测并读值将检测卡放入便携式荧光免疫分析仪检测,5 min内完成读值。8结果计算便携式荧光免疫分析仪通过365/610 nm光波激发和收集检测线(T线)和质控线(C线)上的荧光信号,仪器将荧光信号值转换成数值(T值和C值),T/C值即为样本中小反刍兽疫抗体检测值(软件自带计算功能,能准确计算出T/C值)。9实验成立条件当仪器完成读值后,如果“检测值”项显示“无效”,说明仪器未检测到荧光信号,则实验不成立,需重新检测。如果“检测值”项显示数值,说明质
9、控线和检测线荧光信号值正常,则实验成立。10结果判定当PPRV抗体检测值0.1时,判为小反刍兽疫病毒抗体阴性。当PPRV抗体检测值0.1时,判为小反刍兽疫病毒抗体阳性。T/CVMA 9520224附录A(规范性)小反刍兽疫病毒荧光微球抗体检测卡的制备A.1小反刍兽疫病毒pET-30a-(N)蛋白的制备A.1.1生产用菌液繁殖用接种环挑取-70 保存的基础种子批pET-30a-(N)-BL21(DE3)菌株划线于含30 g/mL卡那霉素抗性的LB固体培养基,37 2 温箱倒置培养12 h16 h。挑取单菌落,接种于1 mL LB液体培养基(含30 g/mL卡那霉素),在37 2 条件下、以200
10、 r/min振荡培养8 h12 h。A.1.2重组蛋白的诱导表达将菌液以1%的接种量转接至LB液体培养基(含30 g/mL卡那霉素),在37 2 条件下,以200 r/min振荡培养至OD600 nm值达到0.6时,加入IPTG至终浓度为0.75 mmol/mL,16 下继续诱导12 h,收集诱导表达菌液。A.1.3重组蛋白提取和纯化将诱导后的菌液,在2 8 条件下、以8000 r/min离心10 min,弃上清,收集菌体沉淀,用PBS(0.01 mol/L,pH值7.4)洗菌体沉淀三次,以8000 r/min离心10 min,用6 mLPBS(0.01 mol/L,pH值7.4)重悬菌体沉淀
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