western的操作步骤.pdf
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1、Western Blot 操作全过程一,收蛋白a(如果要收集死细胞)1.取冰,将 4C 离心机提前降温。2.将死细胞收集到离心管:孔板内的细胞用 PBS 洗 1-2 遍,用适量的胰酶消化,用离心管内的原培养液将孔板内细胞吹打下来,收集到离心管,室温离心 1000rpm,5min。3.弃上清,将离心管倒扣在滤纸上,尽量吸尽残留上清。4.视细胞量的多少加入细胞裂解液。(1Cell Lysis Buffer:PMSF=100:1,1Cell Lysis Buffer,PMSF-20C 保存。PMSF常温易降解,拿出时间不得超过 30min,必须放置冰上。)5.冰上裂解 15min,将裂解液转移至 E
2、P 管离心,4C,12000rpm,15min。6.小心将上清转移至另一 EP 管,记下吸取的量。如:100L。7.将收集好的蛋白保存与20C。(可长期保存)b(如果不收集死细胞)1弃上清,孔板 PBS 洗 1-2 遍,吸尽 PBS。在孔板中视细胞量的多少加入相应细胞裂解液。(同上)2冰上裂解 15min,用细胞刮在孔板里将细胞刮刮。(不同的孔不能用同一个刮子,刮前用水冲洗,擦干。)3将裂解液转移至 EP 管离心,4C,12000rpm,15min。4小心将上清转移至另一 EP 管,记下吸取的量。5将收集好的蛋白保存与20C。(可长期保存)二,测蛋白浓度BCA 法(或者按照自己的试剂盒说明操作
3、)1.需 96 孔板,测蛋白浓度的 A 液,B 液,标准蛋白,要测的样品蛋白。2.按要测的样品蛋白的数量来配 AB 液,每孔需 AB 混合液 80l(A:B=50:1)。例:有 5 个样品,加上 5 个标准蛋白和空白对照。共有 11 个孔。则 A 液取 1180=880l,B 液取 88050=两液混匀,加入 96 孔板,每孔 80l。然后加入标准蛋白及样品蛋白 4l。(标准蛋白先配好浓度 125,250,500,1000,2000)3.将孔板放入 37C 温箱孵育 30min。4.用酶标仪测蛋白浓度。5.记下蛋白浓度,根据要上样的g 量算出l 量。例:蛋白浓度为1000,需上样 15g。则需
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