猪增生性与坏死性肺炎病例中猪繁殖与呼吸综合征、猪圆环病毒2型和猪流感病毒的检出率.doc
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1、猪增生性与坏死性肺炎病例中猪繁殖与呼吸综合征、猪圆环病毒2型和猪流感病毒的检出率养猪SWINEPRODUCTION(6)20o6猪增生性与坏死性肺炎病例中猪繁殖与呼吸综合征,猪圆环病毒2型和猪流感病毒的检出率中图分类号:$858.285.3文献标识码:A文章编号:10021957(2006)06002803摘要:本文对60份来自猪增生性与坏死性肺炎(PNP)病例的肺组织进行了回忆性研究.以检测肺组织中猪繁殖与呼吸综合征病毒(PRRSV),猪流感病毒(SIV)和猪圆环病毒2型(PCV2)的感染率.在被诊断PNP病例中有30例来自于19881992年,另30例来自于19972001年.在每组的30
2、例中,有10例来自哺乳仔猪,其它20例那么为保育猪或育肥猪.利用A型流感病毒的单克隆抗体进行免疫组化检测SIV,用原位杂交(ISH)检测PRRSV和PCV2的核酸.在被检的60例中,检出PRRSV55例(92%),PCV225例(42%).SIV仅1例(2%).而在有PNP病灶的病例中.PRRSV单独感染占30例(50%),PRRSV和PCV2混合感染占25例(42%).在哺乳仔猪PNP病例中未检出PCV2,所有的PCV2阳性猪均出现在断奶后猪只中,且常和PRRSV混合感染.在断奶后病例中.PCV2检出率为63%(25/40).本研究结果说明,在PNP病例中SIV很少被检出,且PCV2感染也不
3、是造成PNP病灶的关键,PRRSV常常且主要与PNP有关.被认为是PNP的主要病原.关键词:猪圆环病毒2型;猪繁殖与呼吸综合征;猪增生性与坏死性肺炎;猪流感20世纪80年代后期,在加拿大的魁北克出现了一种不明病原的新型猪肺炎.称之为增生性与坏死性肺炎(PNP).其病变特征为肺不萎陷.呈灰红色,黄褐色或有斑点,病灶质度呈橡皮状.组织学变化是淋巴组织细胞增生性间质性肺炎.肺炎细胞显着增生,有许多坏死细胞的凝集块.在一些病例中还可见到透明膜,肺泡内淋巴浆细胞渗出和细支气管坏死.PNP和猪的一种新病当时称为猪神秘病,现已证实该病为猪繁殖与呼吸综合征(PRRS)共同出现,后者由PRRSV引起,为RNA病
4、毒,最初从荷兰别离到,归属于动脉炎病毒科动脉炎病毒属.PNP病变最初认为是由A型猪流感病毒的新毒株H3N2和H1N1引起.随后,在未有SIV的PNP肺中PRRSV不断被别离出来.用这些PRRSV别离株接种实验动物.能引起与自然PNP病例相似的肺脏病变.但较轻微.通过免疫组化对19881993年间的PNP病例研究证实,PRRSV与PNP病变密切相关.而SIV那么不然.感染PRRSV的临床病例,其肺脏病变多样,从较轻微的非特异性,多灶性间质性和增生性肺炎到严重的典型的PNP组织学病变均可见到.PRRSV分离株间的致病性不同已有报道.从而解释了所观察到的该病在严重程度上存在差异的原因.最近.有人认为
5、PNP可能是PRRSV和PCV2共同感染的结果.PCV2是断奶仔猪多系统衰竭综合征(PMWS)的原发性病原.最近的一项研究说明.在所有检测的PNP中,利用PCR技术都扩增出了PRRSV核酸,而仅有1/3的病例扩增出PCV2核酸.本试验的目的就是从保存的患PNP猪肺组织中,检测PRRSV,PCV2和SIV的感染率.1材料与方法1.1病例的选择在本项研究中共选择60个PNP病例.根据肺特异性病变,动物的年龄,采集病料的年份以及各项检测所需要肺组织的量,确保选够各组织样品,而且挑选了各个阶段一定数量的猪.其中19881992年间诊断的30例.19972001年间诊断的30例.每组30个病例中.有10
6、例来自于哺乳仔猪,而其它20例来自于保育猪或育肥猪.对每份福尔马林固定,石蜡包埋的肺组织,至少制备4份5m厚的切片.一片进行组织化学检测,一片进行PRRSV原位杂交.一片进行PCV2原位杂交,最后一片用于SIV的免疫组化.1.2组织病理学所选病例都重新进行了组织学检查,以证明有无支气管/细支气管坏死.原位杂交:用来自PRRSVLHVA一933毒株的1段245bpPCR产物作ISH来检测PRRSV核酸.从PCV2LHVA-V53毒株的开放阅读框(ORr2)进行PCR扩增出1段263bpDNA片段来检测PCV2核酸.为了用作探针和制备商品化试剂盒,对PCR产物进行纯化,以地高辛标记的dUTP通过随
7、机引导法对其进行标记.ISH操作方法简言之是将组织切片在65cC加热20min,脱蜡,重新水化,浸于0.2mol/LHCI中20min.洗后,用蛋白酶K(25g/mL)37cC作用15min.再洗,在2006第6期乔宏兴译.猪增生性与坏死性肺炎病例中PRRS,PCV2和SI病毒的检出率29杂交液(50%甲酰胺,2柠檬酸钠,1xDenhardts液.1mmol/LEDTA和100g/mL变性的鲱鱼精子DNA)和变性的标记探针溶液中进行杂交.标记的PCV2探针1:30稀释,42水浴过夜.经过严格冲洗,利用1:400稀释的碱性磷酸酶抗地高辛抗体液在37进行PCV2探针的检测,2h后,在氮蓝四唑盐和5
8、一溴一4一氯一3一吲哚甘油磷酸盐中孵育并用苏木精复染.利用商品试剂盒对PRRSV进行地高辛标记的探针检测和信号放大.该试剂盒可用于放大信号,允许使用1:100稀释的探针.试验研究的器官组织,即来自于非感染和感染PRRSV和PCV2的猪,分别作为阴性和阳性对照.l_3免疫组化运用针对A型流感病毒的核酸蛋白单抗和亲和素一生物素复合法对SIV进行免疫过氧化物酶测定.简而言之,将肺组织切片经脱蜡,水化,在37磷酸盐缓冲液(PBS)中用0.05%蛋白酶消化l5min.随后,在3%过氧化物中用内源过氧化物酶阻断5min,洗后,用5%健康马血清封闭30min.然后用PBS1:l000稀释的鼠抗A型流感病毒单
9、克隆抗体作为一抗参加肺切片中,4水浴孵育16h.经2次冲洗,载玻片用1:200稀释的生物素化马抗鼠抗体作用30min.载玻片用PBS冲洗2次,用过氧化物酶结合的抗生物素蛋白作用30min,再用PBS洗2次,用3一氨基一9一乙基咔唑孵育25min,载玻片用Mayers苏木精复染.对照包括已经过检测的1个SIV阴性猪和2个SIV阳性猪的肺脏.2结果被研究的猪包括321日龄的哺乳仔猪和6l4周龄的保育猪和育肥猪.从组织学上看,严重的PNP主要有以下两点:1)在肺泡腔和肺泡管中有大量含嗜酸性及颗粒碎片的坏死细胞凝结块出现;2)病变明显的PNP伴有不同程度的淋巴组织细胞间质性炎症.在本研究的病例中.支气
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