第六章 实验动物基本操作优秀课件.ppt

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1、第六章 实验动物基本操作第1页，本讲稿共63页第一节 动物实验前的准备一、动物实验室的选择二、实验动物的购买三、实验动物编号与标记 第2页，本讲稿共63页一、动物实验室的选择1.根据实验目的选择合适的实验室及饲养室。2.动物实验室要与实验动物同等级别。3.饲养室应符合实验动物的生活习性及国家实验动物设施各项标准。第3页，本讲稿共63页二、实验动物的购买1.应购买有实验动物生产供应许可证的单位所生产繁殖的实验动物，并应索取相应实验动物的质量合格证明。2.如果从外地购买的动物，应考虑运输中的各种因素对实验动物的影响，并应查阅运输检疫证明。3.购买的动物需要经过3-7天的隔离检疫、观察。第4页，本讲

2、稿共63页三、实验动物编号与标记方法（一）染色法：1、单色涂染法：在每组动物不超过l0只或一个实验不超过40只的情况下适用。实验动物：大鼠、小鼠。常用染色剂：3-5苦味酸溶液，可染成黄色。第5页，本讲稿共63页 方法步骤：方法步骤：(1)(1)涂染原则：从左到右、从上到下。涂染原则：从左到右、从上到下。(2)(2)左前肢为左前肢为l l号、左侧腹部号、左侧腹部2 2号、号、左后肢左后肢3 3号。号。(3)(3)两耳后部两耳后部4 4号、背中部号、背中部5 5号、号、后肢背部后肢背部6 6号。号。(4)(4)右前肢右前肢7 7号、号、右侧腹部右侧腹部8 8号、号、右后肢右后肢9 9号。号。(5)

3、(5)尾巴根尾巴根为为1010号。号。（6 6）额额部部为为2020号号第6页，本讲稿共63页 2 2、双色涂染法：双色涂染法：在每组动物不超过在每组动物不超过100100只的情况下只的情况下 适用。适用。实验动物：大鼠、小鼠。实验动物：大鼠、小鼠。常用染色剂常用染色剂：(1)3-5(1)3-5苦味酸溶液苦味酸溶液，可染成黄色。，可染成黄色。作为作为“个个”位数。位数。(2)0.5%(2)0.5%中性中性红红或品或品红红溶液溶液，可染，可染 成成红红色。色。作作为为“十十”位数。位数。第7页，本讲稿共63页 方法步骤：方法步骤：(1)(1)用两种颜色同时进行染色标记。用两种颜色同时进行染色标记

4、。(2)(2)用苦味酸用苦味酸(黄色黄色)染色染色标记标记作作为为个位数，个位数，个位数的染色个位数的染色标记标记方法同方法同单单色涂染法。色涂染法。(3)(3)用品红用品红(红色红色)染色标记作为十位数，染色标记作为十位数，第8页，本讲稿共63页（4 4）左前肢为）左前肢为1010号、号、左侧腹部左侧腹部2020号、号、左后肢左后肢3030号，号，两耳后部两耳后部4040号、号、背部背部5050号、号、后肢背部后肢背部6060号，号，右前肢右前肢7070号、号、右右侧侧腹部腹部 8080号、号、右后肢右后肢9090号号 第第100100号不作染色号不作染色标记标记。第9页，本讲稿共63页（二

5、）穿耳孔法 用专用耳空器在动物耳朵不同部位打一小孔或缺口表示一定号码的方法，原则是：左耳代表十位，右耳代表个位。实验动物：兔、犬、猪（三）标牌法 一般挂在动物的颈部、耳朵、脚上或 实验动物：犬、猴（四）烙印法（五）剪毛法第10页，本讲稿共63页第二节 实验动物的捉拿与固定n大小鼠的捉拿与固定n豚鼠的捉拿与固定n兔的捉拿与固定n犬的捉拿与固定第11页，本讲稿共63页 一、小鼠的抓取保定：一、小鼠的抓取保定：器材：小鼠饲养盒器材：小鼠饲养盒+面罩面罩1 1套。套。方法步骤：方法步骤：1 1、用右手拇指和食指捏、用右手拇指和食指捏 住小鼠尾巴中部将小鼠提住小鼠尾巴中部将小鼠提 起，放在饲养合的面罩上

6、。起，放在饲养合的面罩上。2 2、用左手拇指和食指迅速、用左手拇指和食指迅速、准确地捏住小鼠的两耳后及准确地捏住小鼠的两耳后及 颈背部的皮肤，将小鼠提起。颈背部的皮肤，将小鼠提起。第12页，本讲稿共63页 3 3、翻翻转转左左手手掌掌，以以左左手手掌掌心心和和中中指指夹夹 小鼠背部的皮肤，使小鼠整个呈一条直线。小鼠背部的皮肤，使小鼠整个呈一条直线。4 4、用左手无名指、用左手无名指 压住小鼠背部的压住小鼠背部的 皮肤，小指压住皮肤，小指压住 小鼠的尾巴根部。小鼠的尾巴根部。5 5、松开捏住小鼠尾、松开捏住小鼠尾 巴的右手拇指和食指。巴的右手拇指和食指。此法适用于肌注、腹腔注射、灌胃等此法适用于

7、肌注、腹腔注射、灌胃等 第13页，本讲稿共63页二、大鼠的抓取保定：二、大鼠的抓取保定：大鼠的抓取保定：大鼠的抓取保定：器材：大鼠饲养盒器材：大鼠饲养盒 +面罩面罩 1 1套。套。方法步骤：方法步骤：4-54-5周内的大鼠，方法同小鼠。周内的大鼠，方法同小鼠。周龄较大的，则：周龄较大的，则：1 1、首先戴好防、首先戴好防护护手套。手套。2 2、用右手拇指和食指抓住大鼠尾巴中部将、用右手拇指和食指抓住大鼠尾巴中部将大鼠提起，放在大鼠饲养盒的面罩上。大鼠提起，放在大鼠饲养盒的面罩上。3 3、左手顺势按、卡在大鼠躯干、左手顺势按、卡在大鼠躯干背部，稍加压力向头颈部滑行。背部，稍加压力向头颈部滑行。4

8、 4、以左手拇指和食指捏住大鼠两耳、以左手拇指和食指捏住大鼠两耳后部的头颈皮肤，其余三指和手掌后部的头颈皮肤，其余三指和手掌握住大鼠背部皮握住大鼠背部皮肤，完成抓取保定。肤，完成抓取保定。第14页，本讲稿共63页三、豚鼠的抓取保定三、豚鼠的抓取保定器材：大鼠器材：大鼠饲饲养盒养盒+带带面罩面罩 l l套。套。方法步骤：方法步骤：1 1、先用左手轻轻扣、先用左手轻轻扣、按住豚鼠背部。按住豚鼠背部。2 2、顺势抓紧其肩胛上方皮肤，、顺势抓紧其肩胛上方皮肤，拇指和食指环箍其颈部。拇指和食指环箍其颈部。3 3、用右手、用右手轻轻轻轻托住其臀部，托住其臀部，即可将豚鼠抓取保定。即可将豚鼠抓取保定。抓豚鼠

9、抓豚鼠时时，一般不要抓腰腹部位，一般不要抓腰腹部位，否否则则易造成肝破裂而引起死亡。易造成肝破裂而引起死亡。第15页，本讲稿共63页 四、兔的抓取保定：四、兔的抓取保定：(一一)方法方法1 1：步骤：步骤：1 1、用用右右手手抓抓住住兔兔颈颈部部的的被被毛毛和和皮皮肤肤，轻轻轻轻把兔提起。把兔提起。2 2、用左手托住、用左手托住兔兔的臀部。的臀部。第16页，本讲稿共63页(二二)方法方法2 2：器材：兔保定架器材：兔保定架1 1个。个。步骤：步骤：1 1、打开保定架的上盖，抓取、打开保定架的上盖，抓取并将并将兔放兔放进进架架内，迅速关上保定架的上盖。内，迅速关上保定架的上盖。2 2、右手抓住兔

10、耳朵将头部拉过保定架的卡、右手抓住兔耳朵将头部拉过保定架的卡栓，将兔的脖子保定。栓，将兔的脖子保定。3 3、如果兔、如果兔挣挣扎，可用手扎，可用手在它的背上在它的背上轻轻抚轻轻抚摸，摸，使其安静。使其安静。第17页，本讲稿共63页五、犬的抓取与固定n用特制的长柄狗头钳夹住狗颈部，将其按在地，由助手用绳子将其四肢及嘴固定好。扎口时注意松紧，保证动物正常呼吸。第18页，本讲稿共63页第三节 实验动物的麻醉n动物麻醉是消除动物手术疼痛，便于实验操作，保证动物安全，为手术创造良好的条件。n动物全身麻醉分四期：1.第一期：随意兴奋期，出现运动与运动失调；2.第二期：不随意兴奋期，由意识完全丧失至规则的自

11、动呼吸开始时止。3.第三期：外科麻醉期，4.第四期：延髓麻醉期，进入此期，麻醉已严重过量。第19页，本讲稿共63页麻醉方法与麻醉药n麻醉方法：全身麻醉和局部麻醉，通过吸入、注射（静脉、皮下、肌肉、腹腔）、口服、灌胃等方法使动物麻醉。n常用麻醉药物：乙醚（吸入），戊巴比妥钠、硫贲妥钠、氯胺酮（静脉），普鲁卡因、利多卡因（局麻），第20页，本讲稿共63页常用麻醉药的剂量及注射途径种类戊巴比妥硫贲妥钠盐酸氯胺酮水合氯醛乌拉坦mg/kg途径mg/kg途径mg/kg途径mg/kg途径mg/kg小鼠3550IVIP2550I.V.IP22-44IM400IP-大鼠2550IVIP2040IVIP22-44

12、IM300IP0.75IP豚鼠3040IVIP2055IVIP22-44IM200-300IP1.5IP家兔3040IVIP20IV22-441.0IVIP狗30IV25IV125IV1.0IV猪45kg30-2015IVIV10-95IVIV10-1510-15IMIM第21页，本讲稿共63页麻醉注意事项n麻醉前应禁食8h以上n麻醉前应准确称体重n注意麻醉剂量n麻醉过程中注意观察动物的反应情况n注意保温n静脉注射时必须缓慢，n在寒冷冬季，麻醉剂在注射前应加热至动物体温水平第22页，本讲稿共63页第四节 给药方法n实验动物常用的给药方法有口服、注射、吸入等一、经口给药1.自动口服给药：2.灌胃

13、给药:是借器械将药物直接灌入动物胃内的方法。此法可以准确控制给药量，但如果操作不当易造成动物死亡。（1）大小鼠灌胃：第23页，本讲稿共63页 方法步骤：方法步骤：1 1、将灌胃针连接在注射器上，吸入一定量的药液。、将灌胃针连接在注射器上，吸入一定量的药液。2.2.操操作作前前，大大致致量量一一下下从从口口到到胃胃的的距距离离，估估计计灌灌胃胃针针头头插插入的深度。入的深度。3.3.左手捉持动物，使头部向上。左手捉持动物，使头部向上。3 3、右手持针，把灌胃针头的前端放进动物的口腔，顺着右手持针，把灌胃针头的前端放进动物的口腔，顺着上腭部插入咽部，顺咽后壁轻轻往下推，灌胃针会顺上腭部插入咽部，顺

14、咽后壁轻轻往下推，灌胃针会顺着食管滑入动物的胃内，着食管滑入动物的胃内，此时没有抵触感。此时没有抵触感。4 4、用右手食指将针栓慢慢往下压，将注射器中的药液灌入动物、用右手食指将针栓慢慢往下压，将注射器中的药液灌入动物的胃中。的胃中。第24页，本讲稿共63页剂量：小鼠约剂量：小鼠约剂量：小鼠约剂量：小鼠约0.1-0.5ml0.1-0.5ml10g10g体重。最大体积为体重。最大体积为体重。最大体积为体重。最大体积为1.0ml/1.0ml/只只只只 大鼠约大鼠约大鼠约大鼠约1-2 ml1-2 ml100g100g体重，最大体积为体重，最大体积为体重，最大体积为体重，最大体积为1.0ml/1.0m

15、l/只只只只注意：在灌胃过程中，避免误插入气管。注意：在灌胃过程中，避免误插入气管。注意：在灌胃过程中，避免误插入气管。注意：在灌胃过程中，避免误插入气管。第25页，本讲稿共63页（2）兔灌胃原理：将药液直接注入兔的胃内。原理：将药液直接注入兔的胃内。器材：兔开口器、器材：兔开口器、1414号胃管、注射器号胃管、注射器1 1支、生理支、生理盐盐水、水、烧烧杯、石蜡油。杯、石蜡油。第26页，本讲稿共63页 步骤：步骤：1、将兔放进保定架内，助手用手轻轻压住兔的背部，避免兔的挣扎。2、灌胃者用左手拇指和中指挤压兔两颊，将下颌挤开使兔被动张口。3、右手将开口器从一侧口角插入口腔并固定。4、用泡在石蜡

16、油中的胃管，经开口器的孔插入，向前推进约15cm，可达胃内。5、在插管时应将胃管另一端泡在水中确认没有冒气泡，即可用注射器经胃管注入药液。第27页，本讲稿共63页灌胃量：灌胃量：80-150ml80-150ml只次。只次。注注 意意：在灌胃过程中，：在灌胃过程中，避免误插入气管。避免误插入气管。第28页，本讲稿共63页（二）注射给药（二）注射给药 1 1、皮下注射给药：、皮下注射给药：原理：将药液注入皮下结缔组织，经原理：将药液注入皮下结缔组织，经毛细血管、淋巴管吸收进入血液循环。毛细血管、淋巴管吸收进入血液循环。器材：器材：1m11m1注射器注射器1 1支、生理支、生理盐盐水、水、烧烧 杯、

17、酒精、碘酒、棉球。杯、酒精、碘酒、棉球。第29页，本讲稿共63页 方法步骤：方法步骤：(1)(1)注射部位：颈背部、腋下、腹侧和后肢的皮下注射部位：颈背部、腋下、腹侧和后肢的皮下 (2)(2)常常规规消毒注射部位的皮肤，用注射消毒注射部位的皮肤，用注射针头针头取一取一锐锐 角角角度角度刺入皮下刺入皮下.(3)(3)将针头轻轻向左右将针头轻轻向左右 摆动，摆动，易摆动易摆动则表示已则表示已 刺入皮下，再轻轻刺入皮下，再轻轻抽吸抽吸，如无回血，可缓慢地将如无回血，可缓慢地将 药物注入皮下。药物注入皮下。注射量：注射量：0.01ml0.01ml0.03ml0.03mlg g体重。体重。第30页，本讲

18、稿共63页2.皮内注射n此法用于观察皮肤血管通透性变化或皮肤反应。n注射部位：动物背部n脱毛，用针头平直进入皮内，n注射药液后，皮肤表面鼓起小泡，停片刻拔出针头。第31页，本讲稿共63页3.3.肌肉注射给药肌肉注射给药 原原理理：将将药药液液注注入入动动物物的的肌肌肉肉组组织织，经经毛毛细细血血管管吸吸收收进进入入血血液液循环。循环。器材：器材：1ml1ml注射器注射器1 1支、生理支、生理盐盐水、水、烧烧杯、酒精、碘酒、棉球。杯、酒精、碘酒、棉球。注射部位：一般选择肌肉丰富而无大血管通过的臀部或大腿外注射部位：一般选择肌肉丰富而无大血管通过的臀部或大腿外测测，回抽无血即可注射。，回抽无血即可

19、注射。第32页，本讲稿共63页4.4.静脉注射给药静脉注射给药 （1)1)大小鼠尾静脉注射大小鼠尾静脉注射 原理：将药液注入小鼠的尾静脉。原理：将药液注入小鼠的尾静脉。器材：器材：1m11m1注射器注射器1 1支、生理支、生理盐盐水、水、烧烧 杯、金属杯、金属笼笼或大小鼠器或大小鼠器 、酒精、碘酒、棉球。酒精、碘酒、棉球。第33页，本讲稿共63页 方法步骤：方法步骤：(1)(1)将将大大小小鼠鼠放放在在金金属属笼笼或或小小鼠鼠固固定定器器 中中，通过金属笼或通过金属笼或大大小鼠固定器小鼠固定器的孔拉出鼠尾巴。的孔拉出鼠尾巴。(2)(2)用左手捏住鼠尾巴中下部，用用左手捏住鼠尾巴中下部，用757

20、5 酒精棉球反复擦拭尾部。酒精棉球反复擦拭尾部。第34页，本讲稿共63页(3)(3)注射时，以左手拇指和中指捏住鼠尾注射时，以左手拇指和中指捏住鼠尾 两侧，用食指从下面托起尾巴，以无两侧，用食指从下面托起尾巴，以无 名指夹住尾巴的末梢。名指夹住尾巴的末梢。(4)(4)右手持右手持4 4号号针头针头的注射器，使的注射器，使针头针头与与 静脉平行（小于静脉平行（小于3030度角）。度角）。第35页，本讲稿共63页(5)(5)从鼠尾巴下从鼠尾巴下1 14 4处进针，仔细观察，处进针，仔细观察，如果无阻力，无白色皮丘出现，说明如果无阻力，无白色皮丘出现，说明 已刺入血管，即可注入药物。已刺入血管，即可

21、注入药物。(6)(6)拔出针头后，用干棉球压住注射部位拔出针头后，用干棉球压住注射部位 约约l l、2min2min，防止出血。，防止出血。注射量：小鼠注射量：小鼠 0.005m10.005m10.01 m10.01 m1g g体重。体重。大鼠大鼠1.0-2.01.0-2.0 m1m1100g g体重体重第36页，本讲稿共63页（2 2）兔耳缘静脉给药）兔耳缘静脉给药原理：穿刺兔的耳缘静脉原理：穿刺兔的耳缘静脉器材：兔保定架、注射器器材：兔保定架、注射器1 1支、生理盐水、支、生理盐水、烧杯、酒精、碘酒、棉球。烧杯、酒精、碘酒、棉球。第37页，本讲稿共63页 方法步骤：方法步骤：(1)(1)将

22、兔放在保定架内保定。将兔放在保定架内保定。(2)(2)酒精消毒并揉搓血管，酒精消毒并揉搓血管，使使兔的耳缘静脉兔的耳缘静脉充盈。充盈。第38页，本讲稿共63页 (3)(3)用用左左手手食食指指和和中中指指夹夹住住兔兔的的耳耳缘缘静静脉脉 的的近近端端，拇拇指指绷绷紧紧静静脉脉的的远远端端，无无名名指指和和小小指放在耳郭下作指放在耳郭下作垫垫。(4)(4)右手拿注射器，针尖的斜面朝上，将针右手拿注射器，针尖的斜面朝上，将针 头头从从远远心心端端插插入入血血管管，放放松松对对静静脉脉近近心心端端的的压压迫，回抽有血即可注射，拔针后用棉球止血。迫，回抽有血即可注射，拔针后用棉球止血。第39页，本讲稿

23、共63页（3）犬静脉注射n注射部位:前肢静脉、后肢小隐静脉第40页，本讲稿共63页5.5.腹腔注射给药腹腔注射给药 注射部位:腹中线两侧、腹股沟水平部位。6.脑内注射：7.椎管内注射：此法主要用于抽取脑脑脊液8.关节内注射：9.淋巴囊注射：蛙类常采用此法第41页，本讲稿共63页第五节 各种检验标本的采集方法一、采血1.尾巴尖采血：常用于大小鼠，小量采血。可以多次采血。2.眼眶静脉丛采血：常用于大小鼠、沙鼠的常规血液检查。微量采血。3.摘眼球采血:血量较多，常用于大小鼠、沙鼠4.腹主动脉采血：常用于大小鼠、沙鼠，动物要麻醉后进行，用针管在腹主动脉分叉处，与血管平行刺入，此法采血量大。5.心脏采血

24、：6.兔耳缘静脉或耳中动脉、颈动脉采血7.犬 在前肢静脉、后肢小隐静脉采血8.猴 可在指尖、足跟、后肢皮下静脉、颈静脉采血9.猪 小型猪为耳大静脉、后肢静脉第42页，本讲稿共63页小鼠各种采血方法的最大采血量n剪尾巴采血：0.1ml/次，可以用温水（50）浸泡几分钟或放恒温箱几分钟，使其尾巴血管充盈，剪去尾巴1-2mm.n摘眼球采血：0.1-0.6ml/次n心脏采血：0.5-0.6ml/次n断头采血：0.8-1.0ml/次n眼眶静脉丛采血：0.2-0.3ml/次，取内径为1.0-1.5mm的玻璃毛细管，临用前折断成1-1.5cm长的毛细管段，浸入1肝素溶液中，干燥后用。大鼠、豚鼠、兔均可采用此

25、法。第43页，本讲稿共63页二、采集体液1.胸水的采集2.腹水的采集3.消化液的采集:主要有唾液、胃液、胆汁、胰液4.尿液的采集5.骨髓液的采集6.动物精液的采集7.乳汁的采集第44页，本讲稿共63页尿液的采集代谢笼法:此法较常用于大、小鼠，成熟小鼠尿量1-3ml/24h，大鼠为55-75ml/24h导尿法：常用于雄兔、犬等动物，要轻度麻醉，可以采到无污染的尿液。压迫膀胱法：此法适用于兔、猫、犬等大动物。输尿管插管法第45页，本讲稿共63页 膀胱插管法膀胱穿刺法剖腹采尿法反射排尿法：适用于小鼠。第46页，本讲稿共63页三、采粪n大、小鼠：采用代谢笼n兔：大量，采用代谢笼n犬、猴、猪:采集自然排

26、出的粪便。第47页，本讲稿共63页第六节 实验动物的安死术 实验动物的处死必须遵循实验动物的伦理要求和动物福利法按照人道主义原则处死实验动物。一、“安死术”的概念：即安乐死术，是指以人道的方法处死动物过程。在处死动物的过程中尽量减少动物的惊慌、焦虑，使其安静地、无痛苦地死亡。二、采用安死术必须符合的标准。第48页，本讲稿共63页采用安死术必须符合的标准。1.死时无惊恐、疼痛表现。2.使其在最短时间内失去意识迅速死亡。3.方法可靠且可重复。4.对操作人员安全。5.采用的方法要与研究要求和目的一致。6.对观察者和操作者的情绪影响最小。7.对环境的影响最小。8.需要的机械设备简单、价廉、易操作。9.

27、处死动物地点应远离并与动物房隔开。第49页，本讲稿共63页安死术的常用方法n颈椎脱位法 是将实验动物的颈椎脱臼，断离脊髓致死，为大、小鼠最常用的处死方法。n空气栓塞法 处死兔、猫、犬常用此法，兔、猫为20-40ml,犬为80-150ml.n过量麻醉处死 此法多用于处死大鼠、豚鼠和家兔,吸入乙醚或腹腔注射巴比妥钠。n二氧化碳吸入法 让实验动物吸入大量C02等气体而中毒死亡。n断头处死法、击打头盖骨处死法第50页，本讲稿共63页第七节 尸体检查及脏器标本采集原则与检查方法n尸体的外部检查技术n尸体内脏器官采集技术n尸体内脏脏器检查技术第51页，本讲稿共63页第八节 实验外科的基本操作技术n术前准备

28、n无菌技术n手术的基本操作技术n术后的动物护理与观察第52页，本讲稿共63页一、术前准备1.手术室的要求与准备 手术室的位置及设计原则、手术室的设备等2.动物准备3.手术器械、物品、敷料的准备第53页，本讲稿共63页二、无菌技术：是针对微生物及感染途径所采取的一系列预防措施。包括灭菌、消毒法、操作规程及管理制度。第54页，本讲稿共63页三、手术的基本操作技术 1.手术器械的使用 常用的手术器械是手术刀、手术剪、持针钳、血管钳、缝针等 2.实验外科的技术要求：稳、准、轻、快。3.实验外科的基本操作技术:无菌、切开、止血、节扎、剥离、暴露、缝合。止血方法：压迫止血、钳夹止血、节扎止血、电凝止血、药

29、物止血。第55页，本讲稿共63页四、术后的动物护理与观察n术后的护理n动物护理记录和实验档案第56页，本讲稿共63页第九节 动物实验中的安全防护n“动物实验中的安全防护”概念：n实验人员的安全管理n实验动物安全管理n安全操作技术n安全实验室安全制度和管理第57页，本讲稿共63页动物实验中的安全防护 主要是指在实验过程中可能对实验人员造成的危害和对公共环境造成的污染等各种不安全因素进行的防护。包括防火、防毒、防爆、防触电、防辐射、防外伤、防动物咬伤、防动物传染。第58页，本讲稿共63页实验人员的安全管理n人员安全教育n实验人员的健康管理n以外损伤的防护第59页，本讲稿共63页实验动物安全管理n人

30、畜共患病的防护n动物健康管理第60页，本讲稿共63页第十节 动物实验后废弃物的无害化处理n废弃物主要包括污水、污物、动物尸体n无害化处理1.污水无害化处理 动物实验室的污水主要来自动物的尿粪液、笼器具洗刷、废弃的消毒液、实验中废弃的试剂液。应有相对独立的污水初级处理设备。考点：动物实验室的污水来源有哪几方面？2.污物无害化处理 原则：专人管理和处理、分类收集。3.废弃动物及动物尸体无害化处理第61页，本讲稿共63页废弃动物及动物尸体无害化处理1.实验结束后，受试动物尚未死亡，应采用安死术处理，并将动物尸体装入专用尸体袋中存放冰柜，按政府有关医疗废物处理的规定进行统一处理和焚烧。2.如实验过程中怀疑受试动物是因其他疾病死亡，应及时查明原因：动物尸体待消毒处理后装入专用尸体袋中，冷冻存放，同样按政府有关医疗废物处理的规定进行统一处理和焚烧。第62页，本讲稿共63页n动物实验捉拿方法.flvn实验动物给药方法.flv第63页，本讲稿共63页