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1、实验四过氧化物酶几种固定化方法的比较 Still waters run deep.流静水深流静水深,人静心深人静心深 Where there is life,there is hope。有生命必有希望。有生命必有希望实验目的1.了解酶的固定化方法及原理;2.掌握过氧化物酶的凝胶包埋法固定化方法,了解交联吸附法固定化方法。实验原理 目前随着酶工程的不断发展,酶在医药、食品、轻工、化工、环境保护和科学研究等方面得到了广泛应用。酶具有专一性强、催化效率高和作用条件温和等显著优点,但是在使用上存在着一些不足之处,如稳定性差、不能重复使用、反应产物不易分离等。针对酶催化的不足之处,人们不断研究寻求酶高效
2、利用的方法。目前研究和应用最多的方法是酶的固定化技术。酶的固定化方法有吸附法、包埋法、结合法、交联法、热处理法。包埋法是其中操作较为简便,应用也较为广泛的一种。它是通过将酶包埋在各种多孔载体中(高分子凝胶或高分子半透膜),使酶固定化的方法,常用载体有琼脂、琼脂糖、海藻酸钠、聚丙烯酰胺、聚乙烯醇、淀粉、明胶、胶原、和卡拉胶等高分子化合物。包埋法的显著优点是酶活性中心不易被破坏和酶高级结构变化少。实验器材试剂:1、酶液:实验一提取所得;2、3%海藻酸钠溶液:称取6g海藻酸钠溶于200ml蒸馏水中,于70 加热完全溶解,冷却待用。3、1%乙酸溶液 4、10.0%NaOH溶液 5、95%乙醇 6、0.
3、20%戊二醛溶液 仪器:水浴锅、天平、针筒、针头、移液管、量筒、玻璃棒、分光光度计、磁力搅拌器。实验步骤1)海藻酸钠包埋法海藻酸钠包埋法 15ml 酶液加入到15ml 3%海藻酸钠溶液中,混合均匀,用针头缓慢的逐滴滴入50ml CaCl2(浓度为0.05mol/L)溶液中(冰浴中),边滴边搅拌,4静置30min,过滤,收集滤液,量体积测酶活,称海藻酸钠颗粒重量,测定固定化酶活力。滤液酶活测定参考实验一,海藻酸钠固定化酶活力测定如下:向50ml烧杯中加入 13mL 缓冲液,0.5mL 邻苯二胺-乙醇溶液,1mL 0.3%过氧化氢溶液,然后加入X g(自己换算需要加入多少克)固定化酶 能等同于(0
4、.5ml酶液),并立即搅匀计时,反应5min后在 430 nm下测定反应混合物的吸光值,测好后,把比色皿里的溶液倒入烧杯,继续摇晃,反应10min后在 430 nm下测定反应混合物的吸光值。同时需要测定原酶液的酶活,空白以缓冲液代替酶液。根据吸光值变化情况调节加酶量,最终吸光度应在0.1-0.9范围内。2)壳聚糖微球交联吸附法壳聚糖微球交联吸附法(1)壳聚糖微球的制备 壳聚糖0.75 g溶于25 mL,1.0%乙酸溶液中充分溶解,将20ml壳聚糖溶液逐滴滴入100ml混合液(10.0%NaOH与95%乙醇,体积比为41),得粒度均匀、形状规整的壳聚糖微球,过滤收集壳聚糖微球,再用蒸馏水洗涤至中
5、性,湿态保存。(2)壳聚糖微球的交联 将上述壳聚糖微球置于0.20%戊二醛溶液中,室温下恒温振荡2.0 h,用大量水反复洗涤,以去除残留的戊二醛溶液,即得壳聚糖微球载体。(3)过氧化物酶的固定化 将制得的壳聚糖微球载体,加入15ml过氧化物酶溶液中,4冰箱固定化过夜。过滤,测量滤液体积及活力,载体用0.05 mol/l pH 7.0的磷酸缓冲液反复洗涤,即得固定化过氧化物酶。测定原酶液、滤液、固定化酶活力,固定化酶活力测定参考海藻酸钠固定化酶测定方法。3)以)以DEAE纤维素为载体的固定化方法纤维素为载体的固定化方法 将1.0 g DEAE放入到30 ml pH 7.0(0.05mol/l)的磷酸盐缓冲溶液中,加入1.2 ml(25%)戊二醛溶液搅拌2.0 h,挤滤,用磷酸缓冲液洗去过量的戊二醛溶液,取上述经过活化的DEAE,加入到15ml酶液中,4冰箱固定化过夜,得固定化酶。过滤,测量滤液体积及活力,载体0.05 mol/l pH 7.0的磷酸缓冲液反复洗涤,即得固定化过氧化物酶。测定原酶液、滤液、固定化酶活力,固定化酶活力测定参考海藻酸钠固定化酶测定方法。数据处理 计算三种酶固定化方法的酶结合效率及活力回收率。思考题1.酶固定化方法有哪些?2.游离酶与固定化酶优缺点比较?3.试分析比较上述三种方法的优缺点?
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