SN∕T 5198-2020 熊蜂短膜虫检疫技术规范(出入境检验检疫).pdf
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1、以正式出版文本为准中华人民共和国出入境检验检疫行业标准SN/T 51982019代替SN/T 11622002熊蜂短膜虫检疫技术规范Quarantine protocol for Crithidia bombi中华人民共和国海关总署发 布2020-12-30发布2021-07-01实施ICS 11.220CCS B 41以正式出版文本为准中华人民共和国出入境检验检疫开本 8801230 1/16 印张 0.75 字数 22 千字2021 年 1 月第一版 2021 年 1 月第一次印刷印数 1500书号:15517538 定价 16.00 元熊蜂短膜虫检疫技术规范行 业 标 准SN/T 519
2、82020*北京市朝阳区东四环南路甲 1 号(100023)编辑部:(010)65194242-7509中国标准出版社秦皇岛印刷厂印刷中国海关出版社有限公司出版发行网址 51982020前 言本文件按照GB/T 1.12020的规定起草。本文件由中华人民共和国海关总署提出并归口。本文件起草单位:中华人民共和国福州海关、中华人民共和国海口海关、中华人民共和国北京海关、福建农林大学、厦门瑞德利校准检测技术有限公司。本文件主要起草人:张体银、郑腾、李丹丹、张伟、黄少康、王武军、张志灯、于师宇、白泉阳、陈美传。以正式出版文本为准以正式出版文本为准1SN/T 51982020熊蜂短膜虫检疫技术规范1范围
3、本文件规定了熊蜂短膜虫检疫的聚合酶链式反应和实时荧光聚合酶链式反应检测技术。本文件适用于熊蜂短膜虫的检疫。2规范性引用文件下列文件中的内容通过文中的规范性引用而构成本文件必不可少的条款。其中,注日期的引用文件,仅该日期对应的版本适用于本文件;不注日期的引用文件,其最新版本(包括所有的修改单)适用于本文件。GB/T 6682分析实验室用水规格和试验方法3术语、定义和缩略语本文件没有需要界定的术语和定义。下列缩略语适用于本文件。Ct 循环阈值(cycle threshold)DNA 脱氧核糖核酸(deoxyribonucleic acid)dNTP 三磷酸脱氧核苷酸(deoxynucleoside
4、 triphosphate)EB 溴化乙锭(ethidium bromide)ITS 内转录间隔区(internal transcribed space)PCR 聚合酶链式反应(polymerase chain reaction)TBE 三羟甲基氨基甲烷-硼酸-乙二胺四乙酸(trihydroxymethyl aminomethane-boric acid-ethylene diamine tetraacetic acid)TE TE缓冲液(Tris-EDTA buffer solution)4设备、材料和试剂4.1设备4.1.1高压灭菌锅。4.1.2梯度PCR扩增仪。4.1.3荧光PCR仪。4
5、.1.4高速冷冻离心机(转速12 000 r/min)。4.1.5微量移液器。4.1.6生物安全柜。4.1.7DNA相对分子质量标准品(100 bp 1 000 bp)。4.1.8水平电泳仪。4.1.9凝胶成像系统。4.1.10电子天平(感量0.01 g)。以正式出版文本为准2SN/T 519820204.1.11冰箱(2 8 和20)。4.2试剂4.2.1水:符合GB/T 6682中一级水的规格。4.2.2液氮。4.2.3无水乙醚。4.2.4无水乙醇。4.2.50.01 mol/L磷酸盐(PBS)缓冲液,配制方法见附录A中A.1。4.2.610%SDS溶液,配制方法见附录A中A.2。4.2.
6、7蛋白酶K。4.2.85 mol/L的NaCl溶液,配制方法见附录A中A.3。4.2.9CTAB/NaCl溶液,配制方法见附录A中A.4。4.2.10三氯甲烷/异戊醇混合液,配制方法见附录A中A.5。4.2.11酚/三氯甲烷/异戊醇混合液,配制方法见附录A中A.6。4.2.12异丙醇。4.2.13TE缓冲液。4.2.1410PCR 缓冲液。4.2.15dNTPs(含dCTP、dGTP、dATP、dTTP)。4.2.16Taq DNA聚合酶。4.2.17琼脂糖。4.2.180.5TBE缓冲液,配制方法见附录A中A.7。4.2.19上样缓冲液,配制方法见附录A中A.8。4.2.20EB(10 mg
7、/mL),配制方法见附录A中A.9。4.2.21DNA相对分子质量标准物Marker。4.2.22DNA纯化回收试剂盒。4.3PCR引物上游引物Cri-F1:5-GGAAACCACGGAATCACATAGAC-3下游引物Cri-R1:5-AGAAGAAGAGAGACGAGAAGGAG-3根据熊蜂短膜虫ITS基因核酸序列设计,扩增长度为447 bp(参见附录B中B.1),用水溶解至10 mol/L后,保存于-20 备用。4.4实时荧光PCR引物和探针上游引物Cri-F2:5-GTTGGGAAAGAGAGTCTA-3下游引物Cri-R2:5-GACGAGAAGGAGAGTAAG-3Taq Man探
8、针qPCR-P:FAM-AACACACAAACAAACCAAACACACA-TAMRA根据熊蜂短膜虫ITS基因核酸序列设计,扩增长度为80 bp(参见附录B中B.2),用水溶解至 10 mol/L后,保存于-20 备用。4.5质控物质使用感染熊蜂短膜虫的熊蜂腹部组织或含目的片段的DNA作为阳性对照,使用未感染熊蜂短膜虫的健康熊蜂腹部组织作为阴性对照,用水作为空白对照。以正式出版文本为准3SN/T 519820205采样5.1采样比例5.1.1当蜂群数量小于等于10群时,所有蜂群均采样。5.1.2当数量在11100群时,以10群采样量为基础,每增加10群,采样量增加1群。5.1.3当蜂群数量为1
9、01200群时,按总群数的15采样。5.1.4当蜂群数量大于等于201群时,按总群数的10采样。5.2采样方法从待检蜂群中采取活力较弱的熊蜂1020只,放入烧杯内盖好,记录群号。检疫前先将活蜂用乙醚处死或置于冰箱冷冻室内冷冻10 min。6PCR检测6.1DNA的提取6.1.1剪取所采得熊蜂腹部组织样品置于灭菌过的研钵中,加入适量液氮反复研磨成粉末状,也可使用磷酸盐缓冲液研磨成匀浆,转移至1.5 mL离心管中,12 000 r/min 离心2 min,弃上清液,加入50 L TE缓冲液,使样品充分悬浮后,加入60 L 10%SDS溶液和10 L 20 mg/mL的蛋白酶K,混匀后于37 下温育
10、1 h。6.1.2加入100 L 5 mol/L的NaCl溶液,上下颠倒充分混匀,加入80 L CTAB/NaCl溶液,混匀后65 温育10 min;加入700 L三氯甲烷/异戊醇混合液(体积比为24:1),混匀后12 000 r/min离心5 min。6.1.3吸取上清液至另一干净离心管,加入等体积的酚/三氯甲烷/异戊醇混合液(三者体积比为 25:24:1),上下颠倒混匀,12 000 r/min 离心5 min。6.1.4吸取上清液至另一干净离心管,加入2倍体积预冷的异丙醇沉淀DNA,轻轻混匀,4 下 12 000 r/min离心15 min,彻底去除上清液。6.1.5用600 L 70%
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