太平洋中部黄鳍金枪鱼线粒体DNA遗传多样性和遗传结构,渔业论文.docx
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1、太平洋中部黄鳍金枪鱼线粒体DNA遗传多样性和遗传结构,渔业论文黄鳍金枪鱼(Thunnus albacares) 广泛分布于太平洋、印度洋和大西洋,是一种高度洄游的商业性大洋鱼类。黄鳍金枪鱼肉质鲜美,营养价值较高,已成为当下世界海洋渔业重要对象之一。随着捕捞技术的提高及捕捞强度的加大,黄鳍金枪鱼的资源量已经处于过度捕捞的状态。清楚认识黄鳍金枪鱼的种群遗传构造将有助于把握其生活史、估算种群数量及资源变动,进而为黄鳍金枪鱼资源的可持续利用和开发提供科学根据。为此,不同的学者采用了标志重捕技术、形态学手段和分子标记等方式方法对黄鳍金枪鱼种群遗传构造进行了研究,得出的结论并不一致。 线粒体 DNA(mt
2、DNA) 构造简单、进化速率快,尤其是控制区变异最大,变异积累较高,被广泛应用于鱼类种群遗传构造和遗传变异的研究。本文对太平洋中部的7 个采样群体,通过分析 mtDNA D-loop 基因序列,研究其遗传多样性和遗传构造,并对其系统地理格局进行初步的讨论,以期为太平洋黄鳍金枪鱼资源的合理开发、管理和保卫提供理论根据。 1、 材料与方式方法 1. 1 样本采集 2018 年 9 月 - 2020 年 1 月我们国家远洋渔业船队在太平洋采集到的 101 尾黄鳍金枪鱼样本,华而不实西部太平洋 3 个采样点,分别命名为 WPO1-WPO3; 东部太平洋 4 个采样点,分别命名为EPO1-EPO4(表
3、1、图 1) 。剪取黄鳍金枪鱼尾部的肌肉组织样本,将其固定在装有 95% 乙醇的离心管并冻存于 -20 冰箱,备用。 1. 2 DNA 的提取、扩增及测序 采用组织/细胞基因组 DNA 快速提取试剂盒(北京艾德莱生物科技有限公司) 提取肌肉组织 DNA,洗脱缓冲液 EB 溶解,1. 0% 琼脂糖凝胶电泳检测 DNA 质量,紫外分光光度计测定 DNA浓度,-20 保存备用。D-loop 基因扩增引物为TACRF: 5 -AACAACTAAATCGTCTAAGCCATACCAA-3 ,TACRR: 5 -ATACCCCACTCGAGATTTTCCTGTT-3 。PCR 反响中,1. 0 PCR 反
4、响缓冲液 2 模板 DNA(50 g/ L) 1 Taq 酶(5 U/ L)0. 12 dNTP (2. 5 mmol / L) 1. 6 引物 (10 mol/L) 各 0. 5 剩余用 ddH2O 补足至 20 L。 PCR 扩增在 Eppendorf 热循环仪上进行,条件为:94 预变性 3 min; 94 30 s,56 30 s,72 1min,共 30 个循环; 72 延伸 10 min; 4 保存。PCR 产物由上海生工生物工程技术服务有限公司进行测序。 1. 3 数据分析 测序结果使用 Clustal X 1. 83软件进行比对并辅以人工校对。利用 Network 软件构建单倍
5、型间的系谱关系,系统进化树采用 PUAP 软件构建,重复计算 1 000 次,从 NCBI 下载北方蓝鳍金枪鱼 (Thunnus thynnus ) ,南方蓝鳍金枪鱼(Thunnus maccoyii) 和青干金枪鱼 (Thunnustonggol) 3 个物种线粒体上控制区的部分序列作为外群,对应序列号为 EU562825、GU256523 和HQ425780。单倍型数、单倍型多样性指数(h) 与核苷酸多样性指数( ) 、碱基不配对分布曲线由软件 DnaSP version 4. 00处理。不同群体间遗传分化指数 Fst、AMOVA 分析、Tajima s D 和 Fu s Fs 检测和基因
6、分化参数由 ARLEQUIN version3. 0计算,华而不实Fst的显著性检验经过Bonferroni校正,显著性水平为 P 0. 05,极其显著水平为 P 0. 01; 种群扩张时间推算公式:T = /2 (1)式中: 是根据广义非线性最小二乘法所估算的种群扩张参数; 是基因序列每一世代的突变率。 基因流(Nm) 计算公式为:Nm= (1 / Fst- 1) /4 (2)式中: Fst表示遗传分化指数。 2、 结果 2. 1 D-loop 序列多样性 太平洋中部 7 个采样位点获得的 101 个样本,经 PCR 扩增、产物纯化和序列测定,结果显示,101 个样本发现 23 个变异位点,
7、定义 80个单倍型(表 2) 。在获得的 80 个单倍型中,定义为 H_1-H_80,华而不实大多数单倍型为某个群体所特有。WPO2 群体拥有 12 个单倍型,而群体EPO4 具有单倍型数最少,仅为 8 个(表 2) 。单倍型进化网络分析显示(图 2) ,80 个单倍型中并没有显著的单倍型分化格局,NJ 系统树(图 3) 同样没有明显的遗传分化拓扑构造。遗传多样性分析结果显示,所有群体单倍型多样性(h) 和核苷酸多样性( ) 分别为 0. 994 0. 002 和0.008 92 0. 000 38(表 2) 。 2. 2 遗传变异分析 7 个采样群体的 AMOVA 检验发现,98. 18%的
8、变异是发生在群体内部(表 3) 。7 个采样群体的两两群体间 Fst范围在 0. 001 05 0. 097 07 之间(表 4) ,华而不实,检验经过 Bonferroni 校正后,所有群体的两两群体间的显著性检验都不显著(P 0. 05) 。除了 WPO1 与 WPO3(2. 32546) ,WOP3 与 EPO2(2. 33398) 外,各群体间的基因流指数都大于 3,表示清楚 7 个采样群体间有着广泛的基因沟通。 2. 3 研究群体的群体扩张分析 7 个采样群体的中性检验(表 5) 结果显示,除了 WOP3 群体的 Tajima s D 为非显著的(P =0. 615) 正值之外,其他
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