比较草鱼与团头鲂消化道微生物群落结构特征差异,渔业论文.docx
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1、比较草鱼与团头鲂消化道微生物群落结构特征差异,渔业论文宿主消化道中生存着大量的微生物, 经过长期的共进化, 这些微生物与宿主之间构成了相对稳定的互利共生关系。一方面, 宿主消化道为各种微生物提供相对稳定的生存环境和持续的营养物质供给; 另一方面, 消化道微生物也直接或间接介入宿主的发育、营养、免疫等众多生理生化经过。 近年来, 食物组成对消化道微生物群落构造和功能的影响成为研究热门。如 Li 等通过对受试人员食谱中添加十字花科蔬菜发现其显著影响了人类粪便样品中的微生物群落构造。Kocherginskaya 等通过使用两种不同成分的饲料喂养公牛探究其瘤胃中细菌类群变化, 研究结果表示清楚两种饮食
2、条件下公牛瘤胃内微生物群落差异显著, 饲喂玉米的公牛瘤胃中的微生物在数量和种类上都明显高于饲喂干草的公牛瘤胃中的微生物。不仅在陆生脊椎动物, 在水生脊椎动物鱼类中同样有类似的研究报道, 如Ring等以 5 种不同食物组成的饲料对大西洋鲑鱼进行为期 28d 的投喂实验, 对华而不实肠和后肠的微生物菌群进行分析, 结果显示不同饮食条件下大西洋鲑的肠道菌群构造存在差异。McKellep 等对大西洋鲑分别投喂含有大豆饼、菊粉和氧四环素的饲料, 结果显示后肠中附着菌群存在差异, 华而不实投喂大豆饼组鱼体后肠内附着菌群不仅数量上更多, 而且具有更高层次的菌群构造多样性。以上研究结果表示清楚无论在陆生脊椎动
3、物还是水生脊椎动物, 宿主食物组成都是影响其消化道微生物群落的重要因素。在水生脊椎动物中, 草食性鱼类以其能以陆生或水生植物为主要食物来源而成为重要研究对象, 本文以淡水草食性鱼类为研究对象, 探寻求索这一特殊食性鱼类的消化道微生物菌群构造。 草鱼(Ctenopharyngodon idellus)和团头鲂(Me-galobrama amblycephala) 为典型的草食性鱼类,且草鱼是当前世界上产量最大的淡水经济鱼类团头鲂是我们国家特有的优良淡水鱼类, 它们不仅在我们国家淡水养殖中占据重要地位, 在维持淡水生态系统的平衡方面也有重要作用。本研究以湖泊天然水体养殖的草鱼(Cteno-phar
4、yngodon idellus)和团头鲂(Megalobrama ambly-cephala)为研究对象, 采用 PCR-DGGE 指纹分析结合 DNA 测序技术比拟分析其消化道微生物群落构造特征, 希望能为深切进入阐述草食性鱼类消化道内特定微生物菌群介入营养物质代谢提供参考。 1、 材料与方式方法 1.1 采样点大概情况 武汉市武湖(N 30 47?, E 114 28?), 位于湖北省武汉市黄陂区境内, 为长江中游中型浅水富营养化湖泊, 湖区面积约 20 km2, 最大水深 4.2 m, 平均水深 2.6 m。水生植被覆盖率为 30% 40%, 据夏文凯等研究, 武湖水生维管束植物主要有
5、4 科 5 种,沉水植物主要有聚草(Myriophyllum spicatum)、苦草(Vallisneria spiralis)、金鱼藻(Ceratophyllum demersum)、菹草(Potamogeton crispus)。 1.2 样品采集 本实验所用草鱼、团头鲂于 2020 年 11 月 21 日采自武汉市武湖(表 1), 选取大小相近个体各三条,活鱼充氧运回实验室后立即在无菌条件下进行解剖,分别剪取前、中、后肠, 用无菌水冲洗肠内容物并收集于 2 mL 无菌离心管中。 1.3 肠道微生物总 DNA 提取 草鱼和团头鲂消化道微生物中 DNA 提取参考Ni 等, 即向每管肠道内容
6、物中参加 1200 ?L 裂解液(10 mmol/L Tris-Cl; 0.5% SDS; 100 mmol/L EDTA;0.1 mg/mL 蛋白酶 K; 50 g/mL RNase A), 于 55中水浴裂解 12h; 室温离心后取上清转入新无菌离心管中采用常规酚-氯仿法进行抽提, 随后用 4保存的70%酒精洗涤 3 次后自然风干, 风干后的 DNA 重悬于100 ?L 无菌双蒸水中, 保存于 20备用。 1.4 PCR 扩增 采用细菌16S rRNA基因通用引物F357-GC (5?-CGCCCGCCGCGCGCGGCGGGCGGGGCGGGGGCACGGGGGGCCTACGGGAGGC
7、AGCAG-3?)和 R518(5?-ATTACCGCGGCTGCTGG-3?)对肠道内容物样品中细菌类群进行 PCR-DGGE 分析。PCR 反响体系为每 25 ?L 反响混合液包含: 2.5 U Taq DNA 聚合酶(Fermentas, 美国), 80 ?mol/LdNTP (Fermentas,美国), 2 mmol/L MgCl2(Fermentas, 美国), 正反向引物各 0.2 mol/L, 1 buffer (Fermentas, 美国),细菌 DNA 模版 2 L。PCR 反响在 S1000TM热循环仪(Bio-Rad, 美国)上进行, 反响条件为: 94预变性10min
8、; 随后进行 10 个循环的降落 PCR (94变性45s, 68 59退火 30s, 每个循环降低 1 , 72延伸 1min); 然后再进行 25 个循环的常规 PCR 扩增(94变性 45s, 58退火 30s, 72延伸 1min); 最后72延伸 10min。取 5 ?L PCR 产物用浓度为 1.5%的琼脂糖胶 100 V 稳压电泳 30min 以检测 PCR 扩增效果。 1.5 变性梯度凝胶电泳(DGGE)分析 PCR 扩增所得产物在 9%(w/v)胶浓度的聚丙烯酰胺凝胶上进行电泳, 变性范围为 40% 70%, 电泳条件为 60条件下 120 V 预电泳 10min, 然后 1
9、00V 稳压电泳 12h。凝胶用 1 SYBR Gold 染色 30min后在 BIO-RAD Gel Doc XR+凝胶成像系统(Bio-rad,美国)下成像。 1.6 测序 从变性梯度凝胶上回收需要测序的条带, 加100 ?L 无菌水溶解, 取 2 ?L DNA 模版用不带 GC夹板的引物 F357 和 R518 进行 PCR 扩增, PCR 扩增条件同上, PCR 产物用 DNA 凝胶回收试剂盒(Axygen, 美国)进行回收纯化, 纯化后的 DNA 片段用 pMD18-T 载体(TaKaRa, 日本)转化入 Escherichiacoli DH5 菌株培养后进行 PCR 检测, 合格的
10、菌斑送北京诺赛基因组研究中心有限公司进行测序。 1.7 数据分析 采用 Quantity One 4.6.2(Bio-Rad, 美国)软件导出变性梯度凝胶电泳图谱条带丰度数据矩阵。借助XLSTAT-Pro 7.5 软件根据条带丰度值做 UPGMA 聚类分析, 并运用 canoco4.5 软件对数据进行 PCA 分析。测序所得序列运用 NCBI 中 VecScreen 工具除去载体, 再次去除引物后将所得序列结果在 RDP 数据库中进行比对。运用 ClustalX(version 1.83)和 MEGA 安装包(4.0)构建系统发生树, 采用邻接法(NJ)进行分析, 并进行 1000 次重复的
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