植物器官的培养精品文稿.ppt
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1、植物器官的培养第1页,本讲稿共81页一、器官培养的种类一、器官培养的种类 包括离体的根、茎、叶、花器和果实的培养。包括离体的根、茎、叶、花器和果实的培养。以器官作为外植体进行离体培养,是植物组织培以器官作为外植体进行离体培养,是植物组织培养中最主要的一个方面,进行的植物种类最多,养中最主要的一个方面,进行的植物种类最多,应用的范围也最广。应用的范围也最广。2023/2/42第一节第一节 概述概述第2页,本讲稿共81页 二、二、器官培养的意义:器官培养的意义:1.1.器官培养是研究器官生长、营养代谢、生理生化、组织分器官培养是研究器官生长、营养代谢、生理生化、组织分化和形态建成的最好材料和方法;
2、化和形态建成的最好材料和方法;2.2.器官培养在生产实践上具有重要的应用价值器官培养在生产实践上具有重要的应用价值.2023/2/43第3页,本讲稿共81页 如利用茎、叶和花器培养建立的试管苗,可在短期内提高繁殖速率,如利用茎、叶和花器培养建立的试管苗,可在短期内提高繁殖速率,进行名贵品种的快速繁殖;进行名贵品种的快速繁殖;利用茎尖培养可得到脱毒试管苗,解决品种的退化问题,提利用茎尖培养可得到脱毒试管苗,解决品种的退化问题,提高产量和质量;高产量和质量;将植物器官作诱变处理,用器官培养可得到突变株,将植物器官作诱变处理,用器官培养可得到突变株,进行细胞突变育种。进行细胞突变育种。2023/2/
3、44第4页,本讲稿共81页2023/2/45植植 物物 器器 官官 培培 养养营养器营养器官培养官培养生殖器生殖器官培养官培养根培养根培养茎培养(茎培养(包括茎尖、茎段)包括茎尖、茎段)叶培养(包括叶原基、叶柄、叶培养(包括叶原基、叶柄、叶叶 鞘、叶片、子叶)鞘、叶片、子叶)花培养花培养 (包括花托、花瓣、花丝、(包括花托、花瓣、花丝、花柄、子房、花药)花柄、子房、花药)种子培养(包括成熟与未成熟)种子培养(包括成熟与未成熟)胚胎培养(包括幼胚、成熟胚、胚胎培养(包括幼胚、成熟胚、胚珠、胚珠、子房、胚乳培养子房、胚乳培养 )第5页,本讲稿共81页第二节第二节 营养器官的培养营养器官的培养202
4、3/2/46一、离体根的培养一、离体根的培养二、茎尖的培养二、茎尖的培养三、茎段的培养三、茎段的培养四、离体叶的培养四、离体叶的培养第6页,本讲稿共81页一、离体根的培养一、离体根的培养(一)(一)意义:意义:生理代谢研究的优良实验体系生理代谢研究的优良实验体系 研究器官分化形态建成的良好体系研究器官分化形态建成的良好体系 建立快速生长的根无性系建立快速生长的根无性系 进行诱变育种进行诱变育种2023/2/47第7页,本讲稿共81页1.1.培养基选择培养基选择 White培养基;培养基;2/3或或1/2 MS 和和 B5培养基培养基 注:离体根生长要求注:离体根生长要求 提供全部必需元素,蔗糖
5、、硝态氮效果好,加入提供全部必需元素,蔗糖、硝态氮效果好,加入B1、B6最重要,最重要,生长素对离体根影响不一致。培养温度生长素对离体根影响不一致。培养温度2527,暗光培养。,暗光培养。2023/2/48(二)(二)培养方法培养方法第8页,本讲稿共81页2.2.无性繁殖系的建立无性繁殖系的建立 种种子子消消毒毒 接接种种待待根根伸伸长长后后从从根根尖尖一一端端切切取取长长1.2cm1.2cm的的根根尖尖接接种种于于培培养养基基发发育育出出侧侧根根待待侧侧根根生生长长约约1 1周周后后切切取取侧侧根根的的根根尖尖进进行行扩扩大大培培养养又又迅迅速速生生长长并并长长出出侧侧根根切切下下进进行行培
6、培养养,如如此此反反复复得得到到从从单单个个根根尖尖衍衍生生而而来来的的离体根的无性系。离体根的无性系。3.培养条件培养条件 暗光和温度暗光和温度25-27。2023/2/49第9页,本讲稿共81页根无性繁殖系的建立根无性繁殖系的建立2023/2/410根根无无性性繁繁殖殖系系无菌种子无菌种子1.2cm接后接后1周周侧根侧根反复转接反复转接第10页,本讲稿共81页 4.4.植株再生培养植株再生培养 根段的离体培养也可以用来再生植株。根段的离体培养也可以用来再生植株。第一步诱导形成愈伤组织。第一步诱导形成愈伤组织。第二步在再分化培养基上诱导芽的分化、在愈伤组织上分化成第二步在再分化培养基上诱导芽
7、的分化、在愈伤组织上分化成小植株。小植株。2023/2/411离离体体根根愈愈伤伤组组织织分分化化芽芽再再生生植植株株再分化培养基再分化培养基脱分化培养基脱分化培养基第11页,本讲稿共81页2023/2/412二、茎尖的培养二、茎尖的培养(一)茎尖培养概念及类型(一)茎尖培养概念及类型(二)茎尖培养方法及步骤(二)茎尖培养方法及步骤第12页,本讲稿共81页 (一一)茎尖培养概念及类型茎尖培养概念及类型 1.1.茎尖培养:切取茎的先端部分或茎尖分生组织部分,进行无菌茎尖培养:切取茎的先端部分或茎尖分生组织部分,进行无菌培养。茎尖培养根据培养目的和取材大小可分为:培养。茎尖培养根据培养目的和取材大
8、小可分为:2.2.微茎尖培养微茎尖培养:带有带有1-21-2个叶原基的生长锥个叶原基的生长锥,其长度不超过其长度不超过 0.5mm0.5mm。2023/2/413第13页,本讲稿共81页3.3.普通茎尖培养:较大的茎尖普通茎尖培养:较大的茎尖(如几如几mmmm到几十到几十mm)mm)、芽尖及侧芽。、芽尖及侧芽。这里主要讲普通茎尖培养。这种培养技术简单,操作方便,茎这里主要讲普通茎尖培养。这种培养技术简单,操作方便,茎尖容易成活,成苗所需时间短尖容易成活,成苗所需时间短 。4.4.茎尖培养的意义:茎尖培养的意义:普通茎尖培养技术简单,操作方便,易成活,成苗普通茎尖培养技术简单,操作方便,易成活,
9、成苗 时间短,加快繁殖。时间短,加快繁殖。微茎尖培养可获得脱毒苗;微茎尖培养可获得脱毒苗;2023/2/414第14页,本讲稿共81页(二)茎尖培养方法及步骤(二)茎尖培养方法及步骤2023/2/415取取材材材材料料处处理理及及消消毒毒培培 养养接接种种驯驯化化移移栽栽第15页,本讲稿共81页直接取材:在生长旺盛、枝条直接取材:在生长旺盛、枝条健壮、无病的母株上选生长不健壮、无病的母株上选生长不久、杂菌污染少的顶梢(久、杂菌污染少的顶梢(1 12cm2cm)(取前可喷杀菌药,可)(取前可喷杀菌药,可顶芽或侧芽)。顶芽或侧芽)。从试管苗获取。从试管苗获取。2023/2/4161 1、取材取材取
10、取1-2顶梢顶梢第16页,本讲稿共81页2023/2/4172 2、材料处理及消毒、材料处理及消毒 将采集到的茎尖切成将采集到的茎尖切成0.5-1.0cm0.5-1.0cm长长去叶(休眠去叶(休眠芽预先剥除鳞片)芽预先剥除鳞片)流水冲洗流水冲洗2-4h 2-4h 7575的酒的酒精中处理精中处理30s 30s 稀释稀释2020倍的次氯酸钠中浸倍的次氯酸钠中浸5-8min(5-8min(取取自老枝条上的可适当延长时间)自老枝条上的可适当延长时间)用无菌水冲洗数用无菌水冲洗数次,准备接种。次,准备接种。第17页,本讲稿共81页 3 3、接种、接种 接种前再剥掉一些叶片,使茎尖接种前再剥掉一些叶片,
11、使茎尖0.5cm 0.5cm 接种接种 要求:随切随接,动作迅速。要求:随切随接,动作迅速。亦可将切下亦可将切下 茎尖材茎尖材 料料在在1 15%VC5%VC液中浸一下。液中浸一下。2023/2/418第18页,本讲稿共81页4 4、培养的方法和程序、培养的方法和程序(1)培养基)培养基 基本培养基基本培养基 MS、White、B5、Heller培养基。培养基。蔗糖作碳源效果好,浓度蔗糖作碳源效果好,浓度23%。激素(激素(2,4-D,IAA,NAA)和有机添加)和有机添加 物有明显影响。但激素浓度以物有明显影响。但激素浓度以0.1mg/L为宜,为宜,不要太高。不要太高。2023/2/419第
12、19页,本讲稿共81页生长太慢:生长太慢:茎尖不增大茎尖不增大变绿变绿细胞逐渐老化细胞逐渐老化休眠休眠 原因原因:生长素浓度太低;温度过低或过高;生长素浓度太低;温度过低或过高;生长太快:生长太快:茎尖迅速增大茎尖迅速增大愈伤组织愈伤组织丧失成苗能力丧失成苗能力 原因原因:生长素浓度过高;光照太弱或温度太高;生长素浓度过高;光照太弱或温度太高;生长正常:生长正常:茎尖基部稍增大并形成少量愈伤组织,茎尖颜色茎尖基部稍增大并形成少量愈伤组织,茎尖颜色 逐渐变绿,并伸长,叶原基发育成可见的小叶,逐渐变绿,并伸长,叶原基发育成可见的小叶,进而形成小苗。进而形成小苗。2023/2/420茎尖生长状态茎尖
13、生长状态第20页,本讲稿共81页(2 2)初代培养条件)初代培养条件 每天每天 光照光照16h16h,光强度光强度1500-30001x1500-30001x,温度温度252252 2023/2/421第21页,本讲稿共81页(3 3)继代培养继代培养 茎尖长成的新梢茎尖长成的新梢切成小段切成小段增殖培养基中增殖培养基中 1个月个月左右左右新梢又可切成小段新梢又可切成小段再转入新培养基再转入新培养基建立和维建立和维持了茎尖无性系。持了茎尖无性系。(即微型扦插)(即微型扦插)继代培养可用继代培养可用MS培养基。培养基。2023/2/422第22页,本讲稿共81页(4 4)诱导生根诱导生根 采用采
14、用12MS培养基培养基 加入一定的生长素类调节物质,如加入一定的生长素类调节物质,如NAA、IBA等。等。新梢基部浸入新梢基部浸入50或或100mg/l的的IBA溶液处理溶液处理4-8h,然后转移到无激素的生根培养基中。然后转移到无激素的生根培养基中。2023/2/423第23页,本讲稿共81页(5)(5)驯化移栽入土驯化移栽入土 在生根培养在生根培养1 1个月左右个月左右生长健壮而发达的根系生长健壮而发达的根系炼苗炼苗移栽移栽 管理(温、光、湿、气)管理(温、光、湿、气)2023/2/424第24页,本讲稿共81页 (一)定义:(一)定义:指不带芽和带一个以上定芽或不定芽(包括块茎、指不带芽
15、和带一个以上定芽或不定芽(包括块茎、球茎在内)的幼茎切段的无菌培养。球茎在内)的幼茎切段的无菌培养。2023/2/425三、茎段培养三、茎段培养第25页,本讲稿共81页(二)意义(二)意义 :快速繁殖;快速繁殖;探讨茎细胞的生理特点探讨茎细胞的生理特点 进行育种上的筛选突变体的过程进行育种上的筛选突变体的过程2023/2/426第26页,本讲稿共81页(三)培养步骤(三)培养步骤 1.1.材料的选择和处理材料的选择和处理 (1 1)取材:当年生嫩枝取材:当年生嫩枝去叶去叶剪成剪成5cm5cm的小段的小段自来水自来水冲洗冲洗1-3h 1-3h 2023/2/427注:生长期取芽,外植体取枝注:生
16、长期取芽,外植体取枝条顶部或中部茎段。条顶部或中部茎段。第27页,本讲稿共81页(2 2)消毒与接种:)消毒与接种:将材料切割成将材料切割成2-3cm2-3cm长短长短无菌条件下用无菌条件下用7575酒精灭菌酒精灭菌30-60s 30-60s 无菌水冲洗无菌水冲洗0.10.1升汞浸泡升汞浸泡3-8min3-8min(饱(饱和漂白粉浸泡和漂白粉浸泡10-20min 10-20min)无菌水冲洗数次无菌水冲洗数次切切割成割成0.5cm0.5cm以备接种。以备接种。2023/2/428第28页,本讲稿共81页2.2.培养培养 (1)(1)培养基的选择:培养基的选择:MS+3MS+3蔗糖蔗糖+0.7+
17、0.7琼脂琼脂+激素激素 (促进腋芽增殖(促进腋芽增殖6-BAKt6-BAKt和和Ze Ze)(2)(2)培养条件:培养条件:保持保持2525左右,给予充分的光照和光期左右,给予充分的光照和光期2023/2/429第29页,本讲稿共81页(3)(3)继代培养:继代培养:途径一:促进腋芽的快速生长途径一:促进腋芽的快速生长 优点:不会产生变异,方法简便,每年从一个芽优点:不会产生变异,方法简便,每年从一个芽 可增殖可增殖1010万株以上万株以上 途径二:诱导形成大量不定芽。途径二:诱导形成大量不定芽。优点:产生变异。优点:产生变异。继代增殖过程注意选用培养基和生长调节剂继代增殖过程注意选用培养基
18、和生长调节剂2023/2/430第30页,本讲稿共81页(4 4)生根培养)生根培养 目的:使再生的大量试管苗形成根系,获得完整的植株。目的:使再生的大量试管苗形成根系,获得完整的植株。培养基选择:培养基选择:1/21/2,1/31/3或或1/41/4的的MSMS,B5B5培养基或培养基或WhiteWhite培养基培养基 附加生长素(浓度附加生长素(浓度NAA0.1-1.0mg/LNAA0.1-1.0mg/L,IBAIBA和和IAAIAA可稍高)而降可稍高)而降低或除去细胞分裂素。低或除去细胞分裂素。最好添加最好添加0.30.3活性炭,以促进生根活性炭,以促进生根 2023/2/431第31页
19、,本讲稿共81页 3.3.移植移植 移植是一个由异养转变为自养的过程。移植是一个由异养转变为自养的过程。试管苗试管苗炼苗炼苗取苗取苗洗净琼脂洗净琼脂小心移栽小心移栽苗苗期管理(初期湿度要大,基质通气湿润,保湿保温)期管理(初期湿度要大,基质通气湿润,保湿保温)2023/2/432第32页,本讲稿共81页 (一)定义:(一)定义:离体叶培养指包括叶原基、叶柄、叶离体叶培养指包括叶原基、叶柄、叶鞘、叶片、子叶在内的叶组织的无菌培鞘、叶片、子叶在内的叶组织的无菌培养。养。它大多经脱分化形成愈伤组织,再它大多经脱分化形成愈伤组织,再由愈伤组织分化出茎和根。由愈伤组织分化出茎和根。其中叶片培养是一个典型
20、的代表。其中叶片培养是一个典型的代表。2023/2/433四、离体叶的培养四、离体叶的培养第33页,本讲稿共81页(二)意义:(二)意义:1.1.是繁殖稀有名贵品种的有效手段;是繁殖稀有名贵品种的有效手段;2.2.可用于研究形态建成、光合作用、叶绿素形成等理论可用于研究形态建成、光合作用、叶绿素形成等理论问题。问题。2023/2/434第34页,本讲稿共81页(三)叶片的离体培养方法(三)叶片的离体培养方法 发育方式:叶片培养再生成完整植株有两种方式:发育方式:叶片培养再生成完整植株有两种方式:是直接诱导形成芽和根是直接诱导形成芽和根完整植株;完整植株;是先诱导形成愈伤组织,再经愈伤组织分化形
21、成芽和根是先诱导形成愈伤组织,再经愈伤组织分化形成芽和根完完整植株。整植株。其中,以第二种方式最为常见。其中,以第二种方式最为常见。2023/2/435第35页,本讲稿共81页叶片离体培养发育方式(成苗途径)叶片离体培养发育方式(成苗途径)2023/2/436叶原基叶原基叶鞘叶鞘叶片叶片子叶子叶叶柄叶柄愈愈伤伤组组织织茎茎和和根根试试管管苗苗 不定芽不定芽第36页,本讲稿共81页 1.1.材料选择及灭菌材料选择及灭菌 取植物的幼嫩叶片,切割成适当大小(取植物的幼嫩叶片,切割成适当大小(23cm23cm),在流),在流水中冲洗干净。再用水中冲洗干净。再用7070酒精浸泡约酒精浸泡约10s 10s
22、 饱和漂白粉饱和漂白粉液中浸液中浸3-15min3-15min,或在,或在0.10.1升汞中浸升汞中浸3-5min 3-5min 无菌水无菌水冲洗数次冲洗数次无菌的干滤纸上吸干水分无菌的干滤纸上吸干水分接种。接种。注:细嫩与成熟叶片消毒时间不同注:细嫩与成熟叶片消毒时间不同2023/2/437第37页,本讲稿共81页2.2.接种接种 外植体大小:外植体大小:0.5cm0.5cm2 2 薄片(叶柄、子叶)薄片(叶柄、子叶)上表皮朝上接种培养基。最好带叶脉,注意极性上表皮朝上接种培养基。最好带叶脉,注意极性2023/2/438第38页,本讲稿共81页3.3.培养培养 (1)培养基:)培养基:MS、
23、B5、White、N6;蔗糖;蔗糖3%;2.4D利于愈伤组织形成,利于愈伤组织形成,NAA抑制芽形成,利于根发生,抑制芽形成,利于根发生,KT、6-BA利于芽形成。利于芽形成。愈伤组织诱导:愈伤组织诱导:BA 1-3mg/L,NAA 0.25-1mg/L;分化培养:分化培养:CTK 2 mg/L;生根培养:生根培养:NAA 0.51.0 mg/L 2023/2/439第39页,本讲稿共81页(2)(2)培养过程:培养过程:培养约培养约2周至周至4周周形成愈伤组织形成愈伤组织再分化培养基上(附加再分化培养基上(附加6-BA 2mgL)进行分化培养)进行分化培养约约10d左右,愈伤组织开始转绿出左
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