核酸提取及常见问题优秀课件.ppt

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1、核酸提取及常见核酸提取及常见问题问题第1页，本讲稿共42页基因组基因组DNA CTAB法法qCTAB法原理（植物DNA提取经典方法）lCTAB（hexadecyltrimethylammonium bromide，十六烷基三甲基溴化铵），是，十六烷基三甲基溴化铵），是一种阳离子去污剂，可溶解细胞膜，并与核酸形成复合物。一种阳离子去污剂，可溶解细胞膜，并与核酸形成复合物。l该复合物在高盐溶液中（该复合物在高盐溶液中（0.7mol/L NaCl）是可溶的，通过有机溶剂抽提，去）是可溶的，通过有机溶剂抽提，去除蛋白、多糖、酚类等杂质后加入乙醇沉淀即可使核酸分离出来。除蛋白、多糖、酚类等杂质后加入乙醇

2、沉淀即可使核酸分离出来。注：注：CTAB溶液在低于溶液在低于15 时会形成沉淀析出，因此在将其加入冰冷的时会形成沉淀析出，因此在将其加入冰冷的 植物材料之前必须预热，且离心时温度不要低于植物材料之前必须预热，且离心时温度不要低于15。第2页，本讲稿共42页qCTAB提取缓冲液的经典配方 组份 Tris-HCl （pH8.0）EDTA（pH8.0）NaCl CTAB-巯基乙醇 终浓度 100 mM 20 mM 1.4M2%(W/V)0.1%（V/V）使用前加入lTris-HCl（pH8.0）提供一个缓冲环境，防止核酸被破坏；）提供一个缓冲环境，防止核酸被破坏；lEDTA螯合螯合Mg2+或或Mn2

3、+离子，抑制离子，抑制DNase活性；活性；lNaCl 提供一个高盐环境，使提供一个高盐环境，使DNP充分溶解，存在于液相中；充分溶解，存在于液相中；lCTAB溶解细胞膜，并结合核酸，使核酸便于分离；溶解细胞膜，并结合核酸，使核酸便于分离；l-巯基乙醇是抗氧化剂，有效地防止酚氧化成醌，避免褐变，使酚容易去除巯基乙醇是抗氧化剂，有效地防止酚氧化成醌，避免褐变，使酚容易去除基因组基因组DNA CTAB法法第3页，本讲稿共42页qCTAB提取缓冲液的改进配方 组份 Tris-HCl（pH8.0）EDTA（pH8.0）NaCl CTAB PVP40-巯基乙醇 终浓度 100 mM 20 mM1.4M3

4、%(W/V)5%(W/V)2%（V/V）使用前加入lPVP（聚乙烯吡咯烷酮）是酚的络合物，能与多酚形成一种不溶的络合物质，（聚乙烯吡咯烷酮）是酚的络合物，能与多酚形成一种不溶的络合物质，有效去除多酚，减少有效去除多酚，减少DNA中酚的污染；同时它也能和多糖结合，有效去除多中酚的污染；同时它也能和多糖结合，有效去除多糖。糖。基因组基因组DNA CTAB法法第4页，本讲稿共42页q SDS法原理基因组基因组DNASDS法法lSDS是是一一种种阴阴离离子子去去垢垢剂剂，在在高高温温（5565）条条件件下下能能裂裂解解细细胞胞，使使染色体离析，蛋白变性，释放出核酸；染色体离析，蛋白变性，释放出核酸；l

5、提提高高盐盐(KAc或或NH4Ac)浓浓度度并并降降低低温温度度（冰冰浴浴），使使蛋蛋白白质质及及多多糖糖杂杂质质沉沉淀淀，离离心心后除去沉淀；后除去沉淀；l上清液中的上清液中的DNA用酚用酚/氯仿抽提，反复抽提后用乙醇沉淀水相中的氯仿抽提，反复抽提后用乙醇沉淀水相中的DNA。组份Tris-HCl（pH8.0）EDTA（pH 8.0）NaCl SDS终浓度 10 mM 20 mM 0.4M 2%q SDS法DNA提取缓冲液第5页，本讲稿共42页基因组基因组DNA其它方法其它方法物理方式物理方式：玻璃珠法、：玻璃珠法、超声波法、研磨法、冻融法超声波法、研磨法、冻融法化学方式化学方式：异硫氰酸胍法

6、、碱裂解法：异硫氰酸胍法、碱裂解法生物方式生物方式：酶法：酶法q根据细胞裂解方式的不同有：第6页，本讲稿共42页基因组基因组DNA其它方法其它方法吸附材料结合法：吸附材料结合法：q根据核酸分离纯化方式的不同有：硅质材料阴离子交换树脂磁珠高盐低pH值结合核酸，低盐高pH值洗脱。快捷高效。低盐高pH值结合核酸，高盐低pH值洗脱。适用于纯度要求高的实验。磁性微粒挂上不同基团可吸附不同的目的物，从而达到分离目的。第7页，本讲稿共42页基因组基因组DNA其它方法其它方法浓盐法浓盐法：有机溶剂抽提法：有机溶剂抽提法：密度梯度离心法：密度梯度离心法：利用RNP和DNP在盐溶液中溶解度不同，将二者分离有机溶剂

7、作为蛋白变性剂，同时抑制核酸酶的降解作用利用不同内容物密度不同的原理分离各种内容物第8页，本讲稿共42页质粒质粒DNA碱裂解法碱裂解法q碱裂解法原理l染色体染色体DNADNA比质粒比质粒DNADNA分子大得多，且染色体分子大得多，且染色体DNADNA为为线状分子，而线状分子，而质粒质粒DNADNA为共价闭合环状分子；为共价闭合环状分子；l当用碱处理当用碱处理DNADNA溶液时，线状染色体溶液时，线状染色体DNADNA容易发生变性，共价闭容易发生变性，共价闭环的质粒环的质粒DNADNA在回到中性在回到中性pHpH时即恢复其天然构象；时即恢复其天然构象；l变性染色体变性染色体DNADNA片段与变性

8、蛋白质和细胞碎片结合形成沉淀，而片段与变性蛋白质和细胞碎片结合形成沉淀，而复性的超螺旋质粒复性的超螺旋质粒DNADNA分子则以溶解状态存在液相中，从而可通过分子则以溶解状态存在液相中，从而可通过离心将两者分开。离心将两者分开。第9页，本讲稿共42页质粒质粒DNA碱裂解法碱裂解法q碱裂解法流程图对数期菌体溶液III中和溶液I充分重悬溶液II裂解上清液抽提离心洗涤酒精沉淀干燥溶解沉淀质粒DNA溶液第10页，本讲稿共42页质粒质粒DNA煮沸法煮沸法q煮沸法原理l染色体染色体DNADNA比质粒比质粒DNADNA分子大得多，且染色体分子大得多，且染色体DNADNA为为线状分子，而质线状分子，而质粒粒DN

9、ADNA为共价闭合环状分子；为共价闭合环状分子；l当加热处理当加热处理DNADNA溶液时，线状染色体溶液时，线状染色体DNADNA容易发生变性，共价闭环容易发生变性，共价闭环的质粒的质粒DNADNA在冷却时即恢复其天然构象；在冷却时即恢复其天然构象；l变性染色体变性染色体DNADNA片段与变性蛋白质和细胞碎片结合形成沉淀，而片段与变性蛋白质和细胞碎片结合形成沉淀，而复性的超螺旋质粒复性的超螺旋质粒DNADNA分子则以溶解状态存在液相中，从而可通过分子则以溶解状态存在液相中，从而可通过离心将两者分开。离心将两者分开。第11页，本讲稿共42页细胞器细胞器DNA差速离心法差速离心法q差速离心法原理l

10、是利用物质比重的不同分离混合物的一种方法。是利用物质比重的不同分离混合物的一种方法。l将待分离物质置于均匀介质（蔗糖）中，以一定的转速进行离心，将待分离物质置于均匀介质（蔗糖）中，以一定的转速进行离心，比重大的物质优先沉降，比重小的却处于上层，从而得以分离。比重大的物质优先沉降，比重小的却处于上层，从而得以分离。线粒体和叶绿体是生物体内半自主性细胞器，自身可编码蛋白，它们的比重和大小一定，因而在同一离心场内的沉降速度也一定，根据这一原理，常用不同转速的离心法，将细胞内各种组分分级分离出来。第12页，本讲稿共42页第一部分：DNA提取方法简介第二部分：DNA提取常见问题、原因分析及其对策内容内容

11、第三部分：RNA提取方法简介第四部分：RNA提取及其RT-PCR常见 问题、原因分析及其对策第二部分：DNA提取常见问题、原因分析及其对策第13页，本讲稿共42页DNA提取的基本步骤提取的基本步骤I.I.材料准备材料准备II.II.破碎细胞或包膜内容物释放破碎细胞或包膜内容物释放III.III.核酸分离、纯化核酸分离、纯化IV.IV.沉淀或吸附核酸，并去除杂质沉淀或吸附核酸，并去除杂质V.V.核酸溶解在适量缓冲液或水中核酸溶解在适量缓冲液或水中第14页，本讲稿共42页材料准备材料准备l最好使用新鲜材料，低温保存的样品最好使用新鲜材料，低温保存的样品材料不要反复冻融材料不要反复冻融l提取血液基因

12、组提取血液基因组DNA时，要选择时，要选择有核细胞（白细胞）有核细胞（白细胞）l组培细胞培养时间不能过长，组培细胞培养时间不能过长，否则会造成否则会造成DNA降解降解l含病毒的液体材料含病毒的液体材料DNADNA含量较少，含量较少，提取前先富集提取前先富集基因组DNA的提取质粒DNA的提取l使用处于对数期的新鲜菌体（老化使用处于对数期的新鲜菌体（老化菌体导致开环质粒增加）菌体导致开环质粒增加）l培养时应加入筛选压力，否则菌体易培养时应加入筛选压力，否则菌体易污染，质粒易丢失污染，质粒易丢失l尽量选择高拷贝的质粒，如为低拷贝或尽量选择高拷贝的质粒，如为低拷贝或大质粒，则应加大菌体用量大质粒，则应

13、加大菌体用量l菌株不要频繁转接（质粒丢失）菌株不要频繁转接（质粒丢失）第15页，本讲稿共42页细胞裂解细胞裂解l材料应适量，过多会影响裂解，材料应适量，过多会影响裂解，导致导致DNA量少，纯度低量少，纯度低l针对不同材料，选择适当的裂解预处针对不同材料，选择适当的裂解预处理方式：理方式：l植物材料液氮研磨植物材料液氮研磨l动物组织匀浆或液氮研磨动物组织匀浆或液氮研磨l组培细胞蛋白酶组培细胞蛋白酶Kl细菌溶菌酶破壁细菌溶菌酶破壁l酵母破壁酶或玻璃珠酵母破壁酶或玻璃珠l高温温浴时，定时轻柔振荡高温温浴时，定时轻柔振荡基因组DNA的提取质粒DNA的提取l菌体量适当菌体量适当l培养基去除干净，同时保证

14、菌体培养基去除干净，同时保证菌体在悬浮液中充分悬浮在悬浮液中充分悬浮l变性的时间不要过长（变性的时间不要过长（5分钟），否分钟），否则质粒易被打断则质粒易被打断l复性时间也不宜过长，否则会有复性时间也不宜过长，否则会有基因组基因组DNA的污染的污染lG菌、酵母质粒的提取，应先用酶菌、酵母质粒的提取，应先用酶法或机械法处理，以破壁法或机械法处理，以破壁第16页，本讲稿共42页核酸分离、纯化核酸分离、纯化l采用吸附材料吸附的方式分离采用吸附材料吸附的方式分离DNA时，应提供相应的缓冲时，应提供相应的缓冲体系体系l采用有机（酚采用有机（酚/氯仿）抽提时应充分混匀，但动作要轻柔氯仿）抽提时应充分混匀，

15、但动作要轻柔l离心分离两相时，应保证一定的转速和时间离心分离两相时，应保证一定的转速和时间l针对不同材料的特点，在提取过程中辅以相应的去杂针对不同材料的特点，在提取过程中辅以相应的去杂质的方法质的方法基因组DNA的提取质粒DNA的提取第17页，本讲稿共42页核酸分离、纯化核酸分离、纯化l蛋白质的去除：蛋白质的去除：l酚酚/氯仿抽提氯仿抽提l使用变性剂变性（使用变性剂变性（SDSSDS、异硫氰酸胍等）、异硫氰酸胍等）l高盐洗涤高盐洗涤l蛋白酶处理蛋白酶处理第18页，本讲稿共42页l多糖的去除：多糖的去除：l高盐法：用乙醇沉淀时，在待沉淀溶液中加入高盐法：用乙醇沉淀时，在待沉淀溶液中加入1/21/

16、2体积的体积的5M NaCl5M NaCl，高盐可溶解多糖。，高盐可溶解多糖。l用多糖水解酶将多糖降解。用多糖水解酶将多糖降解。l在提取缓冲液中加一定量的氯苯在提取缓冲液中加一定量的氯苯(1/2(1/2体积体积)，氯苯可以与，氯苯可以与多糖的羟基作用，从而去除多糖多糖的羟基作用，从而去除多糖 。l用用PEGPEG80008000代替乙醇沉淀代替乙醇沉淀DNADNA：在：在500L DNA500L DNA液中加入液中加入200l 200l 20%PEG20%PEG8000 8000(含含1.2 M NaCl)1.2 M NaCl)，冰浴，冰浴20min20min。核酸分离、纯化核酸分离、纯化第1

17、9页，本讲稿共42页l多酚的去除：多酚的去除：l在抽提液中加入防止酚类氧化的试剂：在抽提液中加入防止酚类氧化的试剂：-巯基乙醇、抗坏血酸、巯基乙醇、抗坏血酸、半胱氨酸、二硫苏糖醇等半胱氨酸、二硫苏糖醇等l加入易与酚类结合的试剂：如加入易与酚类结合的试剂：如PVPPVP、PEG(PEG(聚乙二醇聚乙二醇)，它们与酚，它们与酚类有较强的亲和力，可防止酚类与类有较强的亲和力，可防止酚类与DNADNA的结合的结合核酸分离、纯化核酸分离、纯化l盐离子的去除：盐离子的去除：l7070的乙醇洗涤的乙醇洗涤第20页，本讲稿共42页核酸沉淀、溶解核酸沉淀、溶解l当沉淀时间有限时，用预冷的乙醇或异丙醇沉淀，沉淀会

18、当沉淀时间有限时，用预冷的乙醇或异丙醇沉淀，沉淀会更充分更充分l沉淀时加入沉淀时加入1/10体积的体积的NaAc（pH5.2，3M），有利于充分沉淀），有利于充分沉淀l沉淀后应用沉淀后应用70的乙醇洗涤，以除去盐离子等的乙醇洗涤，以除去盐离子等l晾干晾干DNA，让乙醇充分挥发（不要过分干燥），让乙醇充分挥发（不要过分干燥）l若长期储存建议使用若长期储存建议使用TE缓冲液溶解缓冲液溶解lTE中的中的EDTA能螯和能螯和Mg2+或或Mn2+离子，抑制离子，抑制DNaselpH值为值为8.0，可防止，可防止DNA发生酸解发生酸解基因组DNA的提取质粒DNA的提取第21页，本讲稿共42页1.1.DNA

19、DNA中含有蛋白、多糖、中含有蛋白、多糖、多酚类杂质多酚类杂质2.2.DNADNA在溶解前，有酒精在溶解前，有酒精残留，酒精抑制后续酶残留，酒精抑制后续酶解反应解反应3.3.DNADNA中残留有金属离中残留有金属离子子1.1.重新纯化重新纯化DNADNA，去除蛋白、，去除蛋白、多糖、多酚等杂质（具多糖、多酚等杂质（具体方法见前）体方法见前）2.2.重新沉淀重新沉淀DNADNA，让酒精充，让酒精充分挥发分挥发3.3.增加增加7070乙醇洗涤的次数乙醇洗涤的次数（2-32-3次）次）DNA提取常见问题提取常见问题q问题一：DNA样品不纯，抑制后续酶解和PCR反应。原因对策第22页，本讲稿共42页1

20、.1.材料不新鲜或反复冻材料不新鲜或反复冻融融2.2.未很好抑制内源核酸酶未很好抑制内源核酸酶的活性的活性3.3.提取过程操作过于剧提取过程操作过于剧烈，烈，DNADNA被机械打断被机械打断4.4.外源核酸酶污染外源核酸酶污染5.5.反复冻融反复冻融1.1.尽量取新鲜材料，低温保存材料避免反尽量取新鲜材料，低温保存材料避免反复冻融复冻融2.2.液氮研磨或匀浆组织后，应在解冻前加液氮研磨或匀浆组织后，应在解冻前加入裂解缓冲液入裂解缓冲液3.3.在提取内源核酸酶含量丰富的材料的在提取内源核酸酶含量丰富的材料的DNADNA时，时，可增加裂解液中螯合剂的含量可增加裂解液中螯合剂的含量4.4.细胞裂解后

21、的后续操作应尽量轻柔细胞裂解后的后续操作应尽量轻柔5.5.所有试剂用无菌水配制，耗材经高温灭所有试剂用无菌水配制，耗材经高温灭菌菌6.6.将将DNADNA分装保存于缓冲液中，避免反分装保存于缓冲液中，避免反复冻融复冻融DNA提取常见问题提取常见问题q问题二：DNA降解。对策 原因第23页，本讲稿共42页1.1.实验材料不佳或量少实验材料不佳或量少2.2.破壁或裂解不充分破壁或裂解不充分3.3.沉淀不完全沉淀不完全4.4.洗涤时洗涤时DNADNA丢失丢失1.1.尽量选用新鲜（幼嫩）的材料尽量选用新鲜（幼嫩）的材料2.2.动植物要匀浆研磨充分；动植物要匀浆研磨充分；G G菌、菌、酵母裂解前先用生物

22、酶或机械方酵母裂解前先用生物酶或机械方式破壁式破壁3.3.高温裂解时，时间适当延长高温裂解时，时间适当延长（对于动物细胞、细菌可增（对于动物细胞、细菌可增加加PKPK的用量）的用量）4.4.低温沉淀，延长沉淀时间低温沉淀，延长沉淀时间5.5.加辅助物，促进沉淀加辅助物，促进沉淀6.6.洗涤时，最好用枪头将洗涤洗涤时，最好用枪头将洗涤液吸出，勿倾倒液吸出，勿倾倒DNA提取常见问题提取常见问题q问题三：DNA提取量少。对策 原因第24页，本讲稿共42页第一部分：DNA提取方法简介第二部分：DNA提取常见问题、原因分析及其对策内容内容第三部分：RNA提取方法简介第四部分：RNA提取及其RT-PCR常

23、见 问题、原因分析及其对策第三部分：RNA提取方法简介第25页，本讲稿共42页RNA提取的通用方法提取的通用方法q异硫氰酸胍/苯酚法l 原理：原理：l细胞在变性剂异硫氰酸胍的作用下被裂解，同时核蛋白体上的蛋白变性，细胞在变性剂异硫氰酸胍的作用下被裂解，同时核蛋白体上的蛋白变性，核酸释放；核酸释放；l释放出来的释放出来的DNADNA和和RNARNA由于在特定由于在特定pHpH下溶解度的不同而分别位于整个体系中的中间相和下溶解度的不同而分别位于整个体系中的中间相和水相，从而得以分离；水相，从而得以分离；l有机溶剂抽提，沉淀，得到纯净有机溶剂抽提，沉淀，得到纯净RNARNA。RNA提取的通用方法提取

24、的通用方法第26页，本讲稿共42页q异硫氰酸胍/苯酚法l 步骤步骤:l材料准备：材料准备：尽量新鲜。尽量新鲜。l裂解变性裂解变性：异硫氰酸胍异硫氰酸胍（亚硫氢胍，巯基乙醇，亚硫氢胍，巯基乙醇，N-N-月桂肌氨酸等）。月桂肌氨酸等）。使细胞及核蛋白复合物变性，释放使细胞及核蛋白复合物变性，释放RNARNA，有效抑制核酸酶。，有效抑制核酸酶。l纯化分离：纯化分离：苯酚，氯仿，异戊醇。苯酚苯酚，氯仿，异戊醇。苯酚/氯仿可抽提去除杂物。氯仿可抽提去除杂物。l洗涤：洗涤：7070乙醇。乙醇。l沉淀：沉淀：异丙醇、无水乙醇。异丙醇、无水乙醇。乙酸钠（乙酸钠（pH4.0pH4.0）：维持变性的细胞裂解液的）

25、：维持变性的细胞裂解液的pHpH值，沉淀值，沉淀RNARNA。此外还常用氯化锂选择沉淀此外还常用氯化锂选择沉淀RNARNA。RNA提取的通用方法提取的通用方法第27页，本讲稿共42页影响影响RNA提取的因素提取的因素l 材料材料：l新鲜，切忌使用反复冻融的材料新鲜，切忌使用反复冻融的材料l如若材料来源困难，且实验需要一定的时间间隔。可以先将材料贮存在如若材料来源困难，且实验需要一定的时间间隔。可以先将材料贮存在TRIzolTRIzol或样品贮存液中，于或样品贮存液中，于7070或或2020保存保存l如要多次提取，请分成多份保存如要多次提取，请分成多份保存l液氮长期保存，液氮长期保存，7070短

26、期保存短期保存影响影响RNA提取的因素提取的因素第28页，本讲稿共42页影响影响RNA提取的因素提取的因素l 样品破碎及裂解样品破碎及裂解：l根据不同材料选择不同的处理方法：根据不同材料选择不同的处理方法：l培养细胞：培养细胞：通常可直接加裂解液裂解通常可直接加裂解液裂解l酵母和细菌：酵母和细菌：一般一般TRIzolTRIzol可直接裂解，对于一些特殊的材料可先用酶或可直接裂解，对于一些特殊的材料可先用酶或者机械方法破壁者机械方法破壁l动植物组织：动植物组织：先液氮研磨和匀浆，后加裂解液裂解。期间动作快速，先液氮研磨和匀浆，后加裂解液裂解。期间动作快速，样品保持冷冻样品保持冷冻l样品量适当，保

27、证充分裂解样品量适当，保证充分裂解l为减少为减少DNADNA污染，可适当加大裂解液的用量污染，可适当加大裂解液的用量影响影响RNA提取的因素提取的因素第29页，本讲稿共42页l 纯化：纯化：l在使用氯仿抽提纯化时，一定要充分混匀，且动作快速；在使用氯仿抽提纯化时，一定要充分混匀，且动作快速；l经典的纯化方法，如经典的纯化方法，如 LiCl LiCl 沉淀等，虽然经济，但操作时间长，易造成沉淀等，虽然经济，但操作时间长，易造成 RNA RNA 降解；降解；l柱离心式纯化方法：抽提速度快，能有效去除影响柱离心式纯化方法：抽提速度快，能有效去除影响 RNA RNA 后续酶反应的杂质，后续酶反应的杂质

28、，是目前较为理想的选择。是目前较为理想的选择。影响影响RNA提取的因素提取的因素第30页，本讲稿共42页第一部分：DNA提取方法简介第二部分：DNA提取常见问题、原因分析及其对策内容内容第三部分：RNA提取方法简介第四部分：RNA提取及其RT-PCR常见 问题、原因分析及其对策第四部分：RNA提取及其RT-PCR常见 问题、原因分析及其对策第31页，本讲稿共42页RNA提取常见问题提取常见问题q RNA 的降解 q OD260/OD280 比值偏低q 电泳带型异常q 下游实验效果不佳第32页，本讲稿共42页RNA降解降解l 新鲜细胞或组织：新鲜细胞或组织：l裂解液的质量裂解液的质量l外源外源R

29、NaseRNase的污染的污染l裂解液的用量不足裂解液的用量不足l组织裂解不充分组织裂解不充分l另另外外某某些些富富含含内内源源酶酶的的样样品品 (如如脾脾脏脏，胸胸腺腺等等)，很很难难避免避免 RNA RNA 的降解。的降解。建议在液氮条件下将组织碾碎，并且匀浆时使用更多裂解液建议在液氮条件下将组织碾碎，并且匀浆时使用更多裂解液。第33页，本讲稿共42页RNA降解降解l 冷冻样品：冷冻样品：l样样品品取取材材后后应应立立即即置置于于液液氮氮中中速速冻冻，然然后后可可以以移移至至-7070冰箱保存。样品要相对小一点；冰箱保存。样品要相对小一点；l先用液氮研磨，再加裂解液匀浆；先用液氮研磨，再加

30、裂解液匀浆；l样样品品与与裂裂解解液液充充分分接接触触前前避避免免融融化化，研研磨磨用用具具必必须须预预冷冷，碾磨过程中及时补充液氮。碾磨过程中及时补充液氮。第34页，本讲稿共42页ODOD260260/OD/OD280280 比值偏低比值偏低l 蛋白质污染：蛋白质污染：l不不要要吸吸入入中中间间层层及及有有机机相相，加加入入氯氯仿仿后后首首先先混混匀匀，并并且且离离心心分分层层的离心力和时间要足够。的离心力和时间要足够。l减少起始样品量，确保裂解完全、彻底减少起始样品量，确保裂解完全、彻底l解决办法解决办法:重新抽提一次，再沉淀，溶解。重新抽提一次，再沉淀，溶解。l 苯酚残留：苯酚残留：l不

31、不要要吸吸入入中中间间层层及及有有机机相相，加加入入氯氯仿仿后后首首先先混混匀匀，并并且且离离心心分分层层的的离离心心力力和时间要足够。和时间要足够。l解决办法解决办法:重新抽提一次，再沉淀，溶解。重新抽提一次，再沉淀，溶解。第35页，本讲稿共42页ODOD260260/OD/OD280280 比值偏低比值偏低l 抽提试剂残留：抽提试剂残留：l确保洗涤时要彻底悬浮确保洗涤时要彻底悬浮 RNARNA，并且彻底去掉，并且彻底去掉 75%75%乙醇。乙醇。l解决办法解决办法:再沉淀一次后，溶解。再沉淀一次后，溶解。l 设备限制：设备限制：l测测定定OD260 OD260 及及OD280 OD280

32、数数值值时时，要要使使OD260 OD260 读读数数在在 0.10 0.10-0.50 0.50 之之间间。此范围线性最好。此范围线性最好。l 用水稀释样品：用水稀释样品：l测测 OD OD 时时，对对照照及及样样品品稀稀释释液液请请使使用用 10 10 mM mM TrisTris，pH pH 7.57.5。用用水水作作为为稀稀释释液液将导致比值的降低。将导致比值的降低。第36页，本讲稿共42页电泳带型异常电泳带型异常l 非变性电泳：非变性电泳：l上样量超过上样量超过3ug，电压超过，电压超过6V/cm，电泳缓冲液陈旧，均，电泳缓冲液陈旧，均可能导致可能导致28S和和18S条带分不开。条带

33、分不开。l 变性电泳条带变淡：变性电泳条带变淡：l EB与单链的结合能力要差一些，故同样的上样量，变性电泳与单链的结合能力要差一些，故同样的上样量，变性电泳比非变性电泳要淡一些；比非变性电泳要淡一些；l甲醛的质量不高甲醛的质量不高。第37页，本讲稿共42页下游实验效果不佳下游实验效果不佳q RNA 降解 q 抽提试剂的残留 75%乙醇洗涤 q 样品中杂质的残留 多糖等杂质，再次沉淀 q DNA 污染 使用RNase-Free 的 DNase I 消化抽提RNA 第38页，本讲稿共42页RTRT常见问题分析和解决方案常见问题分析和解决方案问题一：少量或没有RT-PCR产物RNA降解分离无污染，高

34、质量的RNA；防止RNA降解RNA中含逆转录酶抑制剂70（v/v）乙醇清洗RNA沉淀，除去抑制剂起始RNA量太低增加RNA的量 多糖同RNA共沉淀用氯化锂沉淀RNA以除去多糖合成cDNA第一链合成的引物退火失败确定退火温度适合所用的引物RNA模板存在较多二级结构将RNA和引物在不含盐及缓冲液条件下变性/退火，提高逆转录反应温度反转录成功，PCR失败PCR步骤中使用超过1/5的逆转录反应产物可能原因解决方案第39页，本讲稿共42页RTRT常见问题分析和解决方案常见问题分析和解决方案问题二：有非特异性带q 引物和模板的非特异性退火 q 基因特异性引物设计较差 q RNA中有基因组DNA的污染 q

35、形成引物二聚体 q 镁离子浓度太高 提高反应的温度和特异性提高反应的温度和特异性提高引物的特异性提高引物的特异性使用扩增级使用扩增级DNaseDNase处理处理RNA RNA 设计在设计在33端没有互补序列的引物端没有互补序列的引物 优化镁离子浓度优化镁离子浓度可能原因解决方案第40页，本讲稿共42页RTRT常见问题分析和解决方案常见问题分析和解决方案问题三：产生弥散（smear）条带 q 第一链产物的含量过高 q PCR反应中引物过多 q 循环数过多 q 退火温度过低 q 寡核苷酸片段产生的非特异性扩增 常规PCR步骤中减少第一链产物的量减少引物的用量 减少PCR的循环次数 提高退火温度 提取高质量RNA，防止被DNA污染 可能原因解决方案第41页，本讲稿共42页谢谢！北京天为时代科技有限公司http/www.tw- 本公司产品江苏地区特约代理商南京天为生物科技有限公司联系电话：025-86073713 84705301 8470150124小时订货热线：13057585177 联系人：王彤免费技术支持：800 810 2177第42页，本讲稿共42页