凝胶电泳操作步骤.pdf
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1、琼脂糖凝胶电泳操作步骤一、仪器二、试剂三、操作步骤:1.用蒸馏水将制胶模具和梳子冲洗干净,放在制胶平板上,封闭模具边缘,架好梳子;实验室有几种不同厂家的模具和梳子,请注意配套使用;2.根据欲分离 DNA 片段大小用凝胶缓冲液配制适宜浓度的琼脂糖凝胶:准确称量琼脂糖干粉,加入到配胶用的三角烧瓶内,定量加入电泳缓冲液(一般2030 ml);3.放入到微波炉内加热熔化(30ml 体积需 1-2min 左右)。冷却片刻,按照5ul/100ml 的比例加入 EB 荧光染料(EB 有毒,操作时带手套、口罩,防止交叉污染),轻轻旋转以充分混匀凝胶溶液,倒入电泳槽中,注意不能产生气泡,若有气泡则用枪尖排除,静
2、置,待其凝固;4.室温下 3045 分钟后凝胶完全凝结,小心拔出梳子,将凝胶同模具一同安放在电泳槽内;5.向电泳槽中倒入电泳缓冲液,其量以没过胶面 1mm 为宜,如样品孔内有气泡,应设法除去;6.在 DNA 样品中加入 10体积的载样缓冲液(loading buffer),混匀后,用枪将样品混合液缓慢加入被浸没的凝胶加样孔内;同时取一孔加入 DNA marker6ul,以测定核酸大小。7.接通电源,红色为正极,黑色为负极,切记DNA 样品由负极往正极泳动(靠近加样孔的一端为负)。100V 恒压电泳 40min 即可(根据指示剂泳动的位置,判断是否终止电泳,一般前端染料到 2/3 处即可)8.电泳完毕,关上电源,在凝胶成像仪上观察电泳带及其位置,并与核酸分子量标准 Marker 比较核酸的大小。琼脂糖凝胶浓度与线形 DNA 的最佳分辨范围琼脂糖凝胶浓度0.5%0.7%1.0%1.2%1.5%2.0%线形 DNA 的最佳分辨范围(bp)1,00030,00080012,00050010,0004007,0002003,000502,000
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