分析不同pH下重组蛋白R1R2和R1R2CT二级结构特性,生物化学论文.docx

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1、分析不同pH下重组蛋白R1R2和R1R2CT二级结构特性,生物化学论文蜘蛛丝拥有优异的机械和生物学性能，是一种理想的多功能材料。由于蜘蛛自相捕食和产丝量小等，通过驯养蜘蛛获取大量蛛丝纤维的难度较高，因而采用生物技术的方式方法重组表示出蜘蛛丝蛋白成为获取仿生蜘蛛丝纤维的主要途径。 到当前为止，在蛛丝仿生领域仍未获得突破，仿生的拟蛛丝纤维性能远不及天然蛛丝。研究表示清楚蛛丝蛋白的高分子量特性和成丝形式是决定丝纤维性能的重要因素，现已成为研究的热门。典型的蛛丝蛋白由氨基端(N terminal，NT)、羧基端(C terminal，CT)以及占到 90%的重复区(Repeat，R)构成。NT 和 C

2、T 高度保守，在蛛丝蛋白的分泌、储存和成丝等经过中起重要的调节作用。 随着 pH 的降低(中性到酸性)，NT 二聚化，构成蛋白网络；CT 则能促进蛛丝蛋白的排列和可溶性的提高等，详细功能尚不清楚；R 主要与蜘蛛丝性能相关。另外，蛛丝蛋白纤维化还遭到盐离子的影响，如氯化钠能够维持主壶腹腺丝蛋白(major ampullate spidroin，MaSp)NT 单体的稳定性等。由于主壶腹腺体容易分离，分泌的主壶腹腺丝性能突出等优点，长期以来一直遭到青睐。 2020 年本课题组获得首条次壶腹腺丝蛋白(Minorampullate spidroin，MiSp)全长编码序列，经比对分析得知 MiSp 和

3、 MaSp 的 CT 同源性较高，但MaSp CT 含有两个保守半胱氨酸(Cysteins)，通过二硫键互相作用，构成平行二聚体；MiSp CT 则没有 Cys，二聚化机制和生物学功能尚未得到充分证实。 为了进一步研究蜘蛛丝蛋白 MiSp 重复区 R和羧基端 CT 的二级构造和功能，本实验通过克隆并在大肠杆菌 Rosetta 2(DE3)中分别表示出R1R2CT和 R1R2 两个组合模块蛋白，借助 Ni-NTA 亲和色谱纯化，利用圆二色谱(circular dichroism，CD)测定并分析了不同 pH 条件下的重组蛋白 R1R2和 R1R2CT 二级构造特性；采用扫描电子显微镜(scann

4、ing electron microscope，SEM) 表征 R1R2 和R1R2CT 重组蛋白在不同 pH 及离子条件下的聚集和成丝情况，为成丝机理的研究奠定基础。 1 材料与方式方法 1.1 材料 质粒抽提试剂盒、DNA 胶回收试剂盒均购自上海生工生物工程有限公司；EcoR、Hind、Bsa限制性内切酶和 phusion High-Fidelity PCRMM buffer 购自 NEB 公司 (美国)；T4 DNA 连接酶购自 Fermentas 公司 (美国)；6 his 抗体购自天根公司；Ni-NTA 树脂购自 Qiagen 公司(德国)。 1.2 方式方法 1.2.1 克隆构建

5、以 MiSp 全长基由于模板 (GenBank 登录号: JX513956)，以 R1p1 和 R1p2 为引 物 PCR 扩增R1，以 R2p1 和 R2p2 为引物 PCR 扩增 R2。Bsa酶切 R1 和 R2，酶切片段回收后由 T4 连接酶体外连接 R1 和 R2；以连接产物为模板，以 R1p1 和R2p2 为引物扩增 R1R2；R1R2 由 EcoR和 Hind 酶切，胶回收后的酶切片段与拥有一样酶切位点的载体连接。以 R1R2 为模板，以 R1R2p1 和R1R2p2 为引物扩增片段 R1R2，以 CTp1 和 CTp2为引物扩增 CT；R1R2 和 CT 分别由 Bsa酶切，酶切

6、片段回收后体外连接，连接产物用作模板，以R1R2p1 和 CTp2 为引物扩增 R1R2CT， 产 物经EcoR和 Hind酶切后与载体连接，引物序列见表 1，详细克隆构建经过如此图 1。 1.2.2 融合蛋白的表示出 将测序正确的重组质粒转化于 Rosetta 2(DE3)感受态细胞。挑取单克隆接种于 5 mL LB 培养基(含卡那霉素 30 mg/L)。200 r/min，37 过夜培养。将 5 mL 过夜培养物接种于 500 mL 新鲜LB 培养基 (含卡那霉素 30 mg/L)，37 震荡培养至 OD600为 0.9 左右，温度降至 25 时参加终浓度为 0.3 mmol/L 的 IP

7、TG，25 诱导培养 4 h，离心 10 min (8 000 r/min，4 )收集菌体，参加 30 mL20 mmol/L Tris pH 8.0 重悬菌体，200 W 超声破碎(超声 5 s，间隔 8 s)60 次，低温高速离心 30 min(12 000 r/min，4 )收集上清。 1.2.3 蛋白表示出产物纯化和分析 上清中重组蛋白与 Ni-NTA 结合，由含有 50mmol/L 咪唑的 20 mmol/L Tris pH 8.0 进行完全洗涤，最后由含有 300 mmol/L 咪唑的 20 mmol/LTris pH 8.0 洗脱蛋白。纯化经过中，收集穿柱液(Flow throu

8、gh)、洗涤液(Wash)、洗脱液(Elution)，并各取出 20 L，参加 5 L 的 5X SDS-PAGE 上样缓冲液，100 水浴 10 min，取适量样品经 12%SDS-PAGE 电泳后进行染色和脱色分析。样品经12% SDS-PAGE 凝胶电泳后进行恒流电转移，转移到 PVDF 膜，以 6 his 组氨酸标签作为检测抗原，对表示出的融合蛋白进行 Western blot 来进一步检测，详细方式方法参照 Invitrogen 操作手册。 1.2.4 重组蛋白二级构造测定 实验中采用 CD 测定所有蛋白的二级构造，均使用上海交通大学分析测试中心的 JASCO J-815 圆二色谱仪

9、。终浓度为 0.1 g/L 的重组蛋白R1R2 和 R1R2CT 分别溶于 pH 5.5、6.5 和 7.5 的PBS 磷酸盐溶液中，从 190260 nm 的波长范围收集信号，测试所用比色皿大小为 1 mm。 1.2.5 扫描电子显微镜测试分析 终浓度为 10 mol/L 的重组蛋白 R1R2 和R1R2CT 分别溶于 6 种不同 pH 和盐离子的溶液中: 20 mmol/L PBS pH 5.5、20 mmol/L PBS pH 6.5、20 mmol/L PBS pH 7.5、20 mmol/L PBS pH 5.5(含有 154 mmol/L NaCl)、20 mmol/L PBS p

10、H 6.5(含有154 mmol/L NaCl)、20 mmol/L PBS pH 7.5 ( 含 有154 mmol/L NaCl)，于 37 250 r/min 震荡培养12 h，培养液(纤维)由东华大学化学化工与生物工程学院日立 TM-1000 台式扫描电镜测试分析。 2 结果 2.1 重组子的鉴定 R1R2 和 R1R2CT 分别与经改造的载体 pHTH连接，重组子质粒送上海生工生物工程有限公司正反向测序，测序结果经比对和分析确定无突变，可用于后续的重组蛋白表示出。 2.2 重组蛋白表示出和纯化 R1 和 R2 主要由甘氨酸 (Glycine) 和丙氨酸(Alanine) 组成，CT

11、序列中 Gly 和 Ala 较少，R1R2和 R1R2CT 的氨基酸序列见图 2。超声破碎经IPTG 诱 导表 达 的 R1R2 和 R1R2CT Rosetta 2(DE3)菌体，高速离心后的上清由 Ni-NTA 柱纯化(Qiagen 纯化方式方法)。目的蛋白与 Ni-NTA 结合效率较高，洗脱后重组蛋白由 SDS-PAGE 检测，图谱显示目的蛋白可到达较好的纯度 (图 3A、B);Western blotting 图谱进一步证明重组蛋白的大小和完好性(图 3C)。 2.3 二级构造测定 我们采用 CD 技术分别测定于 pH 7.5、6.5 和5.5 的 PBS 溶液中重组蛋白 R1R2 和

12、 R1R2CT 的二级构造特征。R1R2 在 3 种不同的 pH 中构造类似，主要为无规卷曲构象(图 4)。R1R2CT 在 208 nm和 222 nm 处呈现负峰，是典型的螺旋峰型(图 5)。 我们的 NMR 结果证实 CT 为五 螺旋构造，且随着 pH 值的降低，峰值信号向上偏移(未发表)。 2.4 扫描电镜分析 重组模块蛋白 R1R2、R1R2CT 分别溶于 6 种不同 pH 值和离子条件下的溶液中：20 mmol/LPBS pH 5.5、20 mmol/L PBS pH 6.5、20 mmol/LPBS pH 7.5、20 mmol/L PBS pH 5.5 +154 mmol/LN

13、aCl、20 mmol/L PBS pH 6.5 +154 mmol/L NaCl、20 mmol/L PBS pH 7.5+154 mmol/L NaCl，终浓度为 10 mol/L.蛋白溶液经 250 r/min，37 震荡培养 12 h 后，电镜结果显示，R1R2 和 R1R2CT 在pH 7.5 和 pH 6.5 条件下均无可见的纤维产生。pH5.5 时，R1R2CT 构成纤维束，外表形态光滑、形态整洁; 而 R1R2 则构成较为松懈的纤维，外表较为粗糙，呈扁平条带状。参加 154 mmol/L 氯化钠后，R1R2CT 外表粗糙，蛋白聚集不均匀，构成纤维形态较差; RIR2 构成的纤维

14、量较少，但形态与无氯化钠类似，外表形态较无氯化钠时粗糙且不平整。 3 讨论 蛛丝蛋白由蜘蛛腹部腺体分泌产生，如 MaSp由主壶腹腺分泌、MiSp 由次壶腹腺分泌以及鞭毛状丝蛋白(Flag)由鞭毛状腺分泌等，主壶腹腺和次壶腹腺构造类似。蛛丝蛋白在纤维化经过中 pH 值从 7.6 降到 6.3(当下可测定的最低 pH值)，同时离子浓度和种类亦发生变化，最后在剪切力作用下构成高品质的丝纤维。2007 年，PloSONE 报道了首条 MaSp 全长基因组序列，蛋白序列分析表示清楚，MaSp 由 NT、CT 以及占到 95%以上的重复区 R 组成条 MiSp 全长基因组序列，与 MaSp 类似，MiSp

15、 亦由 NT、CT 和 R 组成，R 占主要部分。6种蛛丝纤维分别拥有不同的机械性能，主要由不同的重复区 R决定；NT 和 CT 在蛛丝蛋白的成丝经过中主要起到调节、促溶以及利于纤维蛋白排列等作用。 MiSp 重 复 区 域 R 主 要 由 poly -Alanine(polyA)，Glycine -Glycine -X (X 为 其 他 氨 基 酸 ，GGX)以及 Glycine-Alanine(GA)等模块组成，组成的次壶腹腺丝拥有类似拖丝的机械性能。构造分析发现，polyA 和 GA 均能构成 -sheet 构造，在固态丝纤维中整洁排列构成晶体区域，决定丝素蛋白的强度。GGX 构成 31

16、0-helix，构成丝纤维的无定型区域，决定丝纤维的延展性能。另外，MiSp中还带有特殊的 Spacer 区域，但到当前为止，该模块的功能尚不清楚，我们揣测该模块与延展性相关。在自然进化中，重复区变化较大，但是CT 在序列和构造上高度保守，研究发现 MaSp CT能够稳定丝蛋白，阻止过早的聚集，并且能够调整重复区的排列而构成外表形态更好的丝纤维。 2018 年，NATURE 报道了 MaSp CT 的高级构造，解释了它在溶液中的构造形态和它与丝蛋白储存和自组装转变的密切相关性。另外，MaSp CT 在调整重复区 R 二级构造方面扮演着重要的角色，这对于丝纤维的机械性能具有很重要的作用。 为了进

17、一步研究 R 和 CT 模块的功能，我们构建了 R1R2 和 R1R2CT 两个重组克隆。通过Bsa限制性内切酶的介导，我们将 R1 和 R2 以及 CT 三段无缝连接(图 2)，排除了由酶切位点引入外源氨基酸的干扰。由于 R1、R2 以及 CT 中均含有稀有密码子，因而我们选择 Rosetta 2 (DE3)作为表示出宿主菌体来消除稀有密码子的影响。表示出及纯化结果表示清楚 (图 3)，重组蛋白 R1R2 和R1R2CT 均可在 Rosetta 2 (DE3)中大量表示出，采用Ni-NTA 纯化柱纯化可得到纯度较高的重组蛋白(图 3)。Western blotting 结果也证实了重组蛋白R

18、1R2 和 R1R2CT 的完好性和纯度。R1R2 主要由ploy-A、GA 以及 GGX 组成，CD 图谱显示(图 4 和5)，R1R2 重组蛋白在 PBS 溶液中主要为无规卷曲构象，R1R2CT 则拥有 螺旋的两个特征负峰值。 我们的其他实验数据表示清楚，MiSp CT 为五 螺旋构象，随着 pH 的降低，峰图向上偏移，表示清楚二级构造出现细微的变化 (未发表)。R1R2 为无规卷曲，R1R2CT 为 螺旋构象，我们揣测 CT 能够促进重复区 螺旋等构象的构成。我们在 3 种不同的 pH 值及有无 154 mmol/L NaCl 的条件下，37 250 r/min 震荡培养上述两种重组蛋白

19、 12 h，样品经 SEM 分析 (图 6) 表示清楚，在 pH 7.5 和 6.5 时，R1R2CT 和 R1R2 均无法构成纤维，pH 值降到 5.5时，可构成纤维。R1R2CT 可构成外表形态良好的重组纤维，且纤维成纤维束状(图 6 中显示为 4 根单纤维的混合)，单根纤维外表光滑，呈立体圆形，大小均匀。只要重复区的 R1R2 重组蛋白则不同，构成的纤维为扁平带状，大小不均匀。文献记载MaSp 重复区 R 重组蛋白无法构成纤维，只要加上 CT 后才能构成可见纤维。通过本实验，我们证实单独的 MiSp R1R2 重组蛋白可以构成纤维，只是纤维形态较 R1R2CT 不平整，呈条带状。 因而，

20、CT 有利于丝蛋白的排列组装而构成较为严密的重组纤维。NaCl 能够维持 MaSp NT 单体稳定性，不利于丝蛋白的纤维化。这里我们进一步证实，在 154 mmol/L NaCl 存在的条件下，R1R2和 R1R2CT 均可构成纤维，但构成纤维形态不均匀，无法呈现出立体圆形。 本次研究通过对 R1R2 和 R1R2CT 的表示出、纯化以及二级构造和成丝倾向的分析，证实了在不同 pH 值的 PBS 中 R1R2 为无规卷曲构象，而R1R2CT 则主要为螺旋构象。pH 值 6.57.5 不利于丝素蛋白的纤维化，pH 值为 5.5 时，纤维化形态较好。另外，我们还分析了 NaCl 对成丝的影响，结果

21、表示清楚 NaCl 不利于高品质纤维的构成。本研究为成丝机理的研究以及通过基因工程方式方法仿生蜘蛛丝奠定了基础。 以下为参考文献(References): 1 GILMAN J J. Strength of spider silkJ. Science, 1996, 272(5258):17a. 2 VOLLRATH F. Strength and structure of spiders silksJ. Journal of Biotechnology, 2000, 74(2): 67-83. 3 LEWIS R V. Spider silk: ancient ideas for new bi

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