对心脏成纤维细胞是否在表型上具有多样性的研究,细胞生物学论文.docx
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1、对心脏成纤维细胞是否在表型上具有多样性的研究,细胞生物学论文Abstract:Objective To explore the multiple phenotypes in cardiac fibroblasts CFs . Methods CFs of neonatal rats were isolated from twelve 1-3-day neonatal SD rats and cultured using combined type I collagenase w/v, 0. 1% trypsin w/v, 0. 25% digestion method. Morphologic
2、al characteristics were observed between primary and subcultured CFs. Common molecular markers for fibroblasts such as vimentin, fibroblast specific protein FSP1 and discoidin domain receptors 2 DDR2 were detected by immunohistochemical staining. Nanog, c-kit, sca-1, CD73 and CD90 recognized as stem
3、 cell markers were evaluated in CFs by immunofluorescence staining, and co-expression of those markers was investigated by three-color immunofluorescence technology. Results By the combined enzyme digestion method, the isolated fibroblasts had large volume. Passage 3 cells exhibited good biological
4、activity, fast proliferation and high purity. Vimentin, FSP1 and DDR2 were all expressed and DDR2 was strongly expressed in CFs. Nanog, c-kit, sca-1, CD73 and CD90 were detected in some CFs. Interestingly, CD73, CD90 and sca-1 were co-expressed with nanog positive CFs respectively and the result sho
5、wed the positive expression rate of nanog+/CD73+was the highest than other three groups 59. 02% 8. 39% . It had significant different P 0. 01 . while the positive rate of nanog+/CD90+in CFs had no different with the rate of nanog+/sca-1+ P 0. 05 . And the rate of nanog+/CD90+and nanog+/sca-1+ had ex
6、tremely significant different with the rate of CD90+/sca-1+ P 0. 01 . But the positive rate of CD90+/sca-1+ was significantly lower than that in the other three groups P 0. 01 . Conclusion CFs have several subpopulations with stem cell characteristics and multiple phenotype. Keyword:Cardiac fibrobla
7、st; Stem cell marker; Cell culture; Immunohistochemical staining; Neonatal rat; 心脏成纤维细胞 cardiac fibroblasts, CFs 占心脏细胞总数的50%70%, 是心肌组织重要的支持细胞, 抗缺氧损伤能力强, 即便是在长期纤维化状态下, 仍具有较高的增殖和代谢活性1.传统观念以为, 成纤维细胞是一群均一的细胞, 在不同的器官组织中, 发挥其支持和分泌功能。最近研究发现, 成纤维细胞具有显着异质性, 表如今细胞形态大小2、增殖特性3, 胶原合成4, 分泌细胞因子和细胞外表受体等5.前期研究发现, 不同
8、器官成纤维细胞在细胞形态、生长增殖和外表受体表示出等方面具有显着异质性, 且成纤维细胞具有间充质干细胞样特性, 表现出多向分化潜能6,7.但CFs能否存在干细胞分子标记的表示出差异, 以及干细胞标记的重叠表示出等, 当前尚鲜见报道。 本研究拟采用体外分离培养技术和免疫细胞化学技术, 讨论CFs表示出干细胞标记nanog、c-kit、sca-1、CD73和CD90及其共表示出情况, 进一步确定CFs的不同亚群, 为进一步开发利用成纤维细胞提供可靠的实验支持, 为组织损伤原位修复提供更丰富的种子细胞来源奠定实验基础。 材料和方式方法 1. 实验材料 13 d SD新生大鼠12只, 体重 7.1 0
9、.31 g, 雌雄不限, 由新乡医学院实验动物中心提供, 动物合格证号:SCXK 豫 2018-0002. 2. 方式方法 2.1 CFs分离培养和传代: 新生大鼠称重后处死, 无菌条件下取心脏, 预冷PBS冲洗, 剔除心房, 大血管和结缔组织, 用眼科剪将组织剪成约1 mm3小块, 参加0.1%胶原酶I Roche公司 和3倍体积的0.125%胰蛋白酶 Sigma公司 , 3710 min, 吸管充分吹打, 上清参加等体积含低糖完全培养基DMEM Hyclone公司 +10%胎牛血清 Hyclone公司 终止消化, 直到组织小块完全消化为止, 1200 r/min离心5 min, 完全培养基
10、重悬沉淀, 接种至25 cm2培养瓶中, 40 min, 弃上清, 参加完全培养。48 h后初次更换完全培养基, 以后每2 d换液, 待细胞汇合约85%时, 胰蛋白酶细胞消化液 含0.25%胰蛋白酶、0.02%EDTA , 37, 2 min, 消化贴壁细胞, 以13接种传代扩大培养, 细胞汇合近70%时, 4%多聚甲醛固定备用。 2.2 细胞免疫组织化学染色: 经固定过的细胞爬片, PBS冲洗, 3%H2O2孵育510 min, PBS冲洗, 山羊血清室温封闭1015 min.分别滴加山羊抗大鼠盘状构造域受体2 discoidin domain receptor 2, DDR2 多克隆抗体
11、1300, 美国Santa Cruz公司 、兔抗大鼠成纤维细胞特异性蛋白1 fibroblast specific protein, FSP1 多克隆抗体 1200, 美国Abcam公司 和兔抗大鼠波形蛋白 vimentin 多克隆抗体 1500, 美国Abcam公司 , 4过夜, PBS冲洗, 滴加相应的生物素化二抗工作液, 37孵育20 min, PBS冲洗, 滴加HRP标记链霉卵白素工作液 S-A/HRP , 室温孵育12 min.空白对照为PBS代替一抗, 其余一样。DAB显色, 苏木素复染细胞核, 自来水返蓝, 光学显微镜下观察, 图像采集和分析。 2.3 细胞免疫荧光染色: 经固定
12、过的细胞爬片, PBS冲洗, 0.3%Triton透膜10 min, PBS浸洗3次, 每次3min.正常山羊血清室温封闭20 min, 分别滴加兔抗大鼠sca-1多克隆抗体 1200, 德国Merck公司 、兔抗大鼠c-kit单克隆抗体 1300, 美国Santa Cruz公司 、兔抗大鼠nanog多克隆抗体 1200, 美国Santa Cruz公司 、小鼠抗大鼠CD90单克隆抗体 1500, 美国Abcam公司 和小鼠抗大鼠CD73单克隆抗体 1300, 美国BD公司 , 4过夜, PBS冲洗, PBS漂洗3次, 每次5 min;滴加相应二抗, 37孵育40 min, PBS漂洗3次, 每
13、次5 min;5 mg/L DAPI室温孵育5 min, 抗荧光淬灭封片剂封片, 荧光显微镜下观察并摄片。空白对照为PBS代替一抗工作液, 其余步骤一样。荧光显微镜下行图像采集。 2.4 细胞免疫荧光三标染色: 经固定过的细胞爬片, 除分组参加一抗 详细分组见表1 外, 其余步骤同上。 2.5 数据统计学处理: 免疫荧光数据均采用SPSS17.0软件进行统计学分析。随机各取30个视野, 按以下公式计算:共表示出率=共表示出细胞数/有核细胞总数。结果以均值 标准差 s 表示, 两样本均数比拟采用独立样本t检验, 多个样本均数的比拟采用单因素方差分析, 检验标准 =0.05, P 0.05为差异有
14、统计学意义。 结果 1.体外培养不同代次CFs形态学比拟 酶联合消化法体外分离培养的CFs活力好, 增殖能力强, 传211代 P2P11 后的CFs增殖能力与原代细胞比拟, 均显示出同样的增殖能力。传代后的CFs, 尽管遭到细胞消化液中酶的作用, 但在增殖期内仍表现出很强的适应性, 增殖能力继续保持稳定。在光学显微镜下观察, CFs形态多样, 大小不一。呈三角形、梭形、星形和多边形, 胞核较小, 双核细胞约占40%, 偶见3核细胞 图1 .57 d细胞铺满培养皿底部, 约有85%CFs聚集, 呈现出漩涡状或放射状分布 图1 .培养7 d后, 细胞大部分穿插重叠, 构成 编织状 外观。 原代 p
15、rimary, P0 CFs细胞边界较为清楚明晰, 折光度好, 但经初次差速贴壁后, 纯度不够, 除CFs外, 还有少量小而圆的心肌干细胞, 内皮细胞, 偶见跳动的心肌细胞。经传代培养后, 成纤维细胞纯度大增。经细胞免疫荧光检测, P0纯度为95%, P1为99%, P2代为99.8%, P3P11CFs纯度到达100%.但从形态上观察, P0P9细胞, 胞核明显, 胞体较大, 有数量不等的短突起, 细胞折光度高, 无自发性搏动。但P10和P11 CFs, 细胞核变形, 染色质分布不均, 胞质所占比例减少, 内有颗粒状分布, 细胞边界愈加模糊不清, 符合细胞衰老的形态学特征。综合考虑, P3P
16、5 CFs是用于后续实验的最佳代次。 2.成纤维细胞常见标记的免疫组织化学表示出鉴定 将分离培养第3代CFs分别行vimentin、DDR2和FSP1细胞免疫组织化学染色, 结果显示, 形态各异的成纤维细胞对这3种成纤维细胞标记物均呈阳性染色 图2 .如此图2 A中所示, 构成细胞骨架的中间纤维蛋白-波形蛋白, 棕黄色颗粒分布于胞质中, 其他部位无非特异性染色;而作为膜受体的DDR2蛋白, 主要分布于胞膜及胞质近膜处, 但也有少部分呈现出胞核分布 图2B , 约有97.5%细胞呈DDR2阳性表示出;FSP1则在胞质中呈均匀分布, 在胞核和胞膜中染色较淡 图2C . 3. CFs的干细胞表示出标
17、记检测 将分离培养第3代CFs经胚胎干细胞标记nanog, 心肌干细胞标记c-kit和sca-1, 间充质干细胞标记CD90和CD73, 及其内皮细胞标记CD31的细胞免疫荧光检测, 发现CFs不表示出CD31 图3F , 而有部分细胞则表示出这五种干细胞标记。c-kit主要表示出于胞膜, 少量分布于胞质 图3A ;nanog主要分布在胞质, 呈强阳性表示出 图3B ;sca-1主要分布于胞核和胞质中 图3C , CD90和CD73主要在胞膜中呈强阳性表示出 图3D, 3E . 4. CFs的干细胞标记共表示出检测 为检测CFs能否存在干细胞标记的共表示出现象, 采取细胞荧光三标技术进行观察分
18、析。结果显示, 部分CFs中nanog分别和CD73、CD90和sca-1存在共表示出 图4 .同时, 对nanog+/CD73+、nanog+/CD90+、nanog+/sca-1+和CD90+/sca-1+共表示出阳性率进行统计分析, 结果显示, nanog+/CD73+共表示出阳性率最高 59.02% 8.39% , 与其他3组相比差异均有极显着性 P 0.01 ;而nanog+/CD90+共表示出CFs阳性率与nanog+/sca-1+之间差异没有显着性 P 0.05 , 但这两组与CD90+/sca-1+相比差异均有极显着性 P 0.01 ;CD90+/sca-1+共表示出CFs阳性
19、率均低于其他3组 29.35% 3.7%vs59.02% 8.39%, 43.55% 3.92%, 43.78% 10.88% , 差异具有极显着意义 P 0.01, 图5 . 讨论 CFs是心脏中数量最丰富的一种间质细胞, 分布广泛, 增殖迅速。其主要功能是合成和分泌细胞外基质 extracellular matrix, ECM , CFs与ECM共同构成复杂而精妙的三维网络构造, 支持并连接心肌细胞, 调节心肌细胞机械、电生理活动, 在心脏正常发育和病理性损伤修复中发挥重要作用8,9. 当前, 成纤维细胞尚缺乏特异性外表标记, 对成纤维细胞的鉴定也存在众多争议。只要确保成纤维细胞鉴定准确后
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