荒漠昆虫小胸鳖甲几丁质酶抗血清的生产及其效用评估,昆虫学论文.docx
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1、荒漠昆虫小胸鳖甲几丁质酶抗血清的生产及其效用评估,昆虫学论文几丁质是昆虫身体的重要组成部分,也是昆虫防止机械损伤和生物损害的屏障。昆虫在蜕皮期间必须降解几丁质,才能蜕去旧表皮替换新表皮,进行正常的生长发育。几丁质酶是几丁质降解酶系重要的成员,属于糖苷水解酶 18 家族,能够将几丁质聚合物分解成壳糖乙糖苷和乙酰葡萄糖胺糖苷两个部分(Dahiya et al.,2006) 。几丁质酶广泛存在于各种真菌、植物、昆虫和鱼类等生物中。昆虫几丁质酶与昆虫的周期性蜕皮相关,主要有几丁质酶和 -N-乙酰葡萄糖胺酶,它们都影响昆虫的正常生长发育(Yamagami et al.,1998) 。除此之外,昆虫的几丁
2、质酶可以作为防卫因子,抵抗含几丁质的害虫和病原物,如对昆虫围食膜或体壁、线虫的卵壳、真菌细胞壁进行降解(Sahai Manocha,1993; Kramer Muthukrish-nan,1997) ; 还可通过水解释放出一些相关物质来调动植物的防御反响(Garcia et al.,1997) 。 高低温胁迫可干扰昆虫的生理机能,导致其代谢紊乱,免疫防御能力下降。低温可降低蚊子 Aedesaegypti 的免疫力,使其对某些病毒愈加易感 (Adel-man et al.,2020) 。因而昆虫需要通太多样化的适应机制和代谢方式进行种群的延续。荒漠昆虫小胸鳖甲 Microdera punctip
3、ennis 是准噶尔盆地的特有种(黄人鑫等,2005) ,能够很好地适应沙漠环境的极端温度(Hou et al.,2018; Wang et al.,2018) 。通过对小胸鳖甲的 4低温转录组测序发现,几丁质酶基因 Mp-chi786 具有低温诱导性,介入小胸鳖甲的低温响应,与对照组相比,4处理 3 h 后该基因的上调倍数为10. 52。当前关于昆虫几丁质酶功能研究报道较多(Merzendorfer,2020) ,但是还未发现有低温诱导的相关报道。在植物、真菌和细菌中,几丁质酶介入细胞壁的重构,在遭到生物或非生物胁迫时能够通过将几丁质降解为小分子物质来调节体内浸透平衡(Bhattachary
4、a et al.,2007; Alcazar-Fuoli et al.,2018) 。 例如,番荔枝 Annona cherimola 几丁质酶基因具有两个抗真菌并与低温适应性相关的几丁质酶基因(Goi et al.,2020) 。为了深切进入研究几丁质酶在昆虫低温响应中的表示出情况,本研究通过 DNA-蛋白质联合免疫法制备了小胸鳖甲几丁质酶 MpCHI786 抗血清,ELISA 及 Western blot 检测结果表示清楚,抗血清具有高效价并能特异性地与 MpCHI786 反响。 1、 材料和方式方法 1. 1 试剂与试虫 DNase 、dNTP Mixture、RNase Inhibit
5、or、Oligo(dT) 、Reverse Transcriptase M-mLV (RNaseH-) 、DNA Marker、Taq DNA 聚 合酶、T4 DNA 连接酶及EcoR和 Xhol等限制性内切酶均为大连 TaKaRa公司产品; DNA 片段回收试剂盒为上海生工生物工程技术服务公司产品; DNase/RNase-Free ddH2O、TRIzol 试剂均为 Invitrogen 产品; 弗氏不完全佐剂和完全佐剂购自美国 Sigma 公司; HRP 标记的山羊抗鼠 IgG 购自武汉博士德生物工程有限公司; 大肠杆菌 DH5 和 BL21 为北京全式金生物技术有限公司产品; 其余常用
6、试剂为国产分析纯试剂。 新疆荒漠昆虫小胸鳖甲 Microdera punctipennis采自于新疆阜康市 222 团(44 24 N,87 51 E) 的准噶尔盆地古尔班通古特沙漠南缘地带。 1. 2 真核表示出载体 pcDNA3. 0-Mpchi786 的构建及瞬时表示出 根据转录组测序获得的小胸鳖甲几丁质酶 Mp-chi786(转录组测序结果中的 ID 号: comp786 _ c0 _seq1) 序列设计引物,扩增 Mpchi786 全长。引物设计了酶切位点(表 1) 以便后续克隆。提取小胸鳖甲成虫的 总 RNA,Reverse Transcriptase M-mLV (RNaseH-
7、) 酶反转录得到 cDNA。以 cDNA 为模板,EcoRI-Mpchi786-F 和 XholI-Mpchi786-R 为引物进行 PCR 扩增,反响条件为 94 预变性 5 min; 94 变性 30 s,58 退火 30 s,72 延伸 30 s,35 个循环; 72 延伸7 min; 4 结束。使用 PCR 产物回收试剂盒回收 PCR产物,使用 EcoR和 Xhol双酶切 pcDNA3. 0 载体和PCR 产物,将目的片段与载体相连,转化 DH5 。在含有氨苄青霉素50 g/mL 的固体 LB 培养基上挑选阳性菌落,提取质粒,进行酶切和测序鉴定。鉴定正确的重组质粒采用碱裂解法大量制备,
8、以 PEG8000 沉淀纯化后溶于灭菌的生理盐水中备用。 选择4 5 周龄(约20 g) 的健康昆明白小鼠,将纯化的 pcDNA3. 0-Mpchi786 质粒用生理盐水稀释至浓度为 10 g/mL 总体积 2. 5 mL,采用尾静脉大容量快速注射法,8 h 后取其肝脏,采用 TRIzol 法提取总 RNA,经过 DNaseI 消化后,反转录进行 RT-PCR,所用引物为上述特异性引物,扩增参数不变。对照组用同样的方式方法注射生理盐水。扩增的产物用 1%的琼脂糖凝胶电泳检测。 1. 3 His-MpCHI786 的诱导表示出与纯化 将 Mpchi786 构建到质粒 pET30a 上,然后将鉴定
9、正确的 pET30a-Mpchi786 重组质粒转入大肠杆菌E. coli BL21。挑取测序正确的 E. coli BL21 / pET30a-Mpchi786 单菌落,37 培养过夜,次日按 1% 的比例接种于 10 mL 的 LB(Kana+) 培养基中进行 37培养。当菌液 OD600的值到达 0. 4 0. 6 时,参加终浓度为 0. 5 mM 的异丙基硫代半乳糖苷(IPTG) 进行诱导,37振荡培养,分别于 1 h、2 h、3 h、4 h、5 h、6 h、7 h、16 h、17 h 确定最佳的诱导时间。以不加 IPTG诱导的菌液为对照,分别取适量的诱导表示出菌,进行SDS-PAGE
10、 鉴定表示出的蛋白。 切胶纯化蛋白,即包容体经过 SDS-PAGE 电泳后,将目的条带从胶上切下,研钵中研碎后参加 PBS缓冲液溶解蛋白,然后 12 000 rpm 离心 10 min 后取上清进行 SDS-PAGE 电泳鉴定蛋白纯度。 1. 4 抗血清的制备及效价测定 采取注射生理盐水组的昆明白小鼠血清作为对照。用 100 g pcDNA3. 0-Mpchi786 重组质粒免疫昆明白小鼠,免疫 3 次,每次间隔 14 d,第 4 次使用50 g的 His-MpCHI786 蛋白与等体积的弗氏完全佐剂充分乳化后于小鼠背部进行皮下注射,间隔 14 d后用等体积的弗氏不完全佐剂乳化融合蛋白 His
11、-MpCHI786 进行注射(80 g) ,每次免疫前收集小鼠血清存放于 -80冰箱保存。 通过间接 ELISA 法测定抗血清的效价。以纯化的 His-MpCHI786 为抗原进行包被,4 过夜,洗涤。 加不同稀释度的待测抗血清,PBS 为空白对照,生理盐水对照组小鼠的血清为阴性对照。37孵育 2 h,洗涤,加 HRP 标记的羊抗鼠二抗(110 000 稀释度)37 孵育 1 h,洗涤。参加新配制的 TMB 显色液,37避光反响30 min 后,加终止液。在酶标仪上测450 nm下的 OD 值,样本光吸收值大于或等于阴性数值的2. 1 倍,即可断定为阳性(Ausubel et al.,1999
12、) 。 1. 5 小胸鳖甲成虫总蛋白的提取 参照杨颖等(2018) 配制水溶性蛋白裂解液(100 mmol/L Tris,7 mol/L 尿素,0. 02 mol/L EDTA,65 mmol / L DTT) ,临用前参加终浓度为 l mg / mL 的PMSF,冰浴 30 min。将小胸鳖甲 7 龄幼虫(个体最大的幼虫) 用灭菌的 H2O 冲洗干净,用液氮研磨后溶于抽提液中冰浴 30 min。12 000 r/min 于 4 离心20 min,上清液即为小胸鳖甲总蛋白。利用 Bradford法,以牛血清白蛋白作标准曲线,测定蛋白含量。 1. 6 Western blot 检测抗血清的特异性
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