影响鸡血细胞体外融合的各种因素分析,畜牧兽医论文.docx
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1、影响鸡血细胞体外融合的各种因素分析,畜牧兽医论文细胞融合,又称细胞杂交,是指在离体条件下人为地将不同种生物或者同种生物不同类型的单细胞通过无性方式融合成一个杂合细胞的技术.PEG法诱导细胞融合,细胞容易制备、活性稳定、不需要特制的仪器设备、操作方便、融合率较高,因此被广泛用于细胞遗传、细胞免疫、基因定位、病毒、肿瘤等基础研究,也用于单克隆抗体制备和生物新品种培育,同时也被作为大学细胞工程实验教学内容.在实际操作中,该方式方法易受很多因素的影响,如PEG浓度、PEG作用时间、鸡血细胞悬液浓度、鸡血细胞悬液放置时间、钙离子浓度等,致使有时融合率不高或不稳定. 本研究以家鸡血红细胞为材料,探寻求索影
2、响细胞体外融合的各种因素,为动物细胞融合研究和细胞生物学相关实验提供参考. 1 材料与方式方法 1.1 实验材料及仪器 公鸡 全 血,PEG,NaCl,Hanks液,0.5%酚红,GKN液.血细胞计数板,刻度离心管,离心机,水浴锅,盖玻片,容量瓶,载玻片,移液管等. 1.2 实验方式方法 1.2.1 0.85% NaCl溶液的配制称取NaCl 0.85g,溶于100mL的蒸馏水中. 1.2.2 GKN液的配制称取NaCl 8.0g、葡萄糖2.0g、Na2HPO4 2H2O 1.77g、KCl 0.4g、NaH2PO4 H2O 0.69g、酚红0.01g,溶于1 000mL的重蒸水中. 1.2.
3、3 Hanks液的配制原液A:称取NaCl 16.0g、KCl 8.0g、MgSO4 7H2O 2.0g、MgCl2 6H2O 2.0g、CaCl2(无水)2.8g,溶于双蒸水至1 000mL,滤纸过滤,储存于4.0;原液B:葡萄糖20.0g、Na2HPO4 12H2O0.06g、KH2PO41.2g、双蒸水800mL,用滤纸过滤,参加0.5%酚红80mL,加水至1 000mL,储存于4.0. Hanks液:A、B液各1份,双蒸水18份,用5.6% NaHCO3调节pH至7.4. 1.2.4 不同浓度的PEG溶液(m/V)的配制(1)分别称取PEG 6g置于4个小烧杯中,然后放入恒温水浴锅中水
4、浴加热,使其融化. (2)让PEG缓慢冷却到5060,注意不要使PEG凝固. (3)向4个小烧杯中分别参加预热至50的GKN液 混 匀,配 制 成10%,30%,50%,70%的PEG溶液. 1.2.5 鸡血细胞悬液的配制 (1)用注射器在鸡翼下静脉采血,注入试管后,迅速参加肝素(20U肝素/mL全血),混合均匀,制成抗凝全血. (2)向 抗凝全血 的试管中参加4倍体积的0.85%的生理盐水溶液.混合均匀,制成红细胞储备液,4冰箱保存. (3)取1mL的鸡血细胞储备液于刻度离心管中,参加4mL 0.85%的生理盐水,混合均匀,放入低速离心机中,1 000r/min条件下离心5min,弃上清.按
5、上述条件再离心一次. (4)将沉淀物配制成悬浮液.并采用血球板计数法将悬浮液分别稀释成细胞密度为1 106,1 107,1 108个/mL的悬液. 1.2.6 细胞融合实验方式方法 (1)不同条件下细胞融合方式方法不同鸡血细胞悬液浓度下细胞融合方式方法分别取1mL细胞密度为1 106,1 107,1 108个/mL的鸡血细胞悬浮液(华而不实含有的CaCl2浓度为12.6mmol/L)到3支刻度离心管,分别参加4mL Hanks液后混匀,1 000r/min条件下离心5min,弃上清,通过用手指屡次轻弹离心管底部使沉淀的血细胞团块变得松懈.向3支刻度离心管中分别参加0.5mL浓度为50%的PEG
6、溶液(预热至37),要沿管壁缓慢参加,边加边摇匀,参加后在37水浴锅中静置10min.不同PEG浓度下细胞融合方式方法根据的操作方式方法进行,华而不实1mL鸡血细胞悬浮液的细胞密度固定为1 107个/mL,参加浓度分别为10%,30%,50%,70%的PEG溶液.不同PEG作用时间下细胞融合方式方法根据的操作方式方法进行,华而不实PEG溶液的浓度固定为50%,参加PEG溶液后静置时间分别为2,5,10,20min.不同鸡血细胞悬液放置时间下细胞融合方式方法根据的操作方式方法进行,华而不实参加PEG溶液后静置10min,1mL鸡血细胞悬浮液分别放置5,10,15min后再参加到离心管中.不同钙离
7、子浓度下细胞融合方式方法根据的操作方式方法进行,华而不实1mL细胞密度为1 107个/mL的鸡血细胞悬浮液中含有的钙离子浓度分别为0,12.6,50.0,75.0,100mmol/L. (2)终止PEG作用及染色观察向各离心管中缓慢参加5mL Hanks液,然后轻轻吹打混匀,在37水浴锅中静置5min,终止PEG作用.为使细胞团分散,屡次用吸管轻轻吹打细胞团,1 000r/min条件下离心5min,使细胞完全沉降,弃上清.然后按上述条件,再次离心,弃上清,参加少许Hanks液,混匀.在上述各离心管中参加Janus green B染液,用牙签搅匀,染色3min.分别用不同的吸管汲取各刻度离心管中
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