植物生理学实验.pptx

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1、AB3%3%磺基水杨酸磺基水杨酸磺基水杨酸磺基水杨酸5 mL实验流程冰醋酸冰醋酸冰醋酸冰醋酸酸性茚三酮酸性茚三酮酸性茚三酮酸性茚三酮AB 吸取上清吸取上清2 mL分别称取分别称取0.5 g冷却冷却加加4ml甲苯甲苯再次煮沸再次煮沸30minA520水稻幼苗水稻幼苗A、常温处理常温处理B、40处理处理处理处理30 min沸水浴沸水浴10 min后，冷却。后，冷却。各吸取各吸取2 mL各吸取各吸取2 mL第1页/共16页四、实验步骤四、实验步骤四、实验步骤四、实验步骤1 1、脯氨酸含量的回归方程：、脯氨酸含量的回归方程：、脯氨酸含量的回归方程：、脯氨酸含量的回归方程：A A520 520=0.02

2、1=0.021X X0.028 (0.028 (X X：ProPro含量含量含量含量 ，g)g)2 2、准确称取不同处理的水稻幼苗（室温和、准确称取不同处理的水稻幼苗（室温和、准确称取不同处理的水稻幼苗（室温和、准确称取不同处理的水稻幼苗（室温和 4040处理处理处理处理30 min30 min）叶片各）叶片各）叶片各）叶片各0.5 g0.5 g，分别置于大试管中。然后，分，分别置于大试管中。然后，分，分别置于大试管中。然后，分，分别置于大试管中。然后，分别加入别加入别加入别加入3%3%磺基水杨酸溶液磺基水杨酸溶液磺基水杨酸溶液磺基水杨酸溶液5 mL5 mL，在沸水浴中提取，在沸水浴中提取，在

3、沸水浴中提取，在沸水浴中提取10 10 minmin（注意：提取过程中需经常摇动注意：提取过程中需经常摇动注意：提取过程中需经常摇动注意：提取过程中需经常摇动），冷却。），冷却。），冷却。），冷却。第2页/共16页3 3、用移液管吸取、用移液管吸取、用移液管吸取、用移液管吸取2 mL2 mL提取液于另一干净的带塞刻度提取液于另一干净的带塞刻度提取液于另一干净的带塞刻度提取液于另一干净的带塞刻度试管中，分别加入试管中，分别加入试管中，分别加入试管中，分别加入2 mL2 mL冰醋酸、冰醋酸、冰醋酸、冰醋酸、2 mL2 mL酸性茚三酮试酸性茚三酮试酸性茚三酮试酸性茚三酮试剂，在沸水浴中剂，在沸水浴中

4、剂，在沸水浴中剂，在沸水浴中准确准确准确准确加热加热加热加热30 min30 min，溶液即呈红色。，溶液即呈红色。，溶液即呈红色。，溶液即呈红色。4 4、冷却至室温后，加入、冷却至室温后，加入、冷却至室温后，加入、冷却至室温后，加入4 mL4 mL甲苯，摇荡甲苯，摇荡甲苯，摇荡甲苯，摇荡30s30s。静置。静置。静置。静置片刻，取上层脯氨酸红色甲苯溶液于比色杯中，以甲片刻，取上层脯氨酸红色甲苯溶液于比色杯中，以甲片刻，取上层脯氨酸红色甲苯溶液于比色杯中，以甲片刻，取上层脯氨酸红色甲苯溶液于比色杯中，以甲苯为空白对照，测定苯为空白对照，测定苯为空白对照，测定苯为空白对照，测定 A A52052

5、0。第3页/共16页五、原始数据五、原始数据五、原始数据五、原始数据 W W、A A520 520、V VT T、V VS S六、六、六、六、结果计算结果计算结果计算结果计算 脯氨酸含量（脯氨酸含量（脯氨酸含量（脯氨酸含量（mg/gmg/g）=X VT W VS 106 1000 第4页/共16页七、分析讨论七、分析讨论七、分析讨论七、分析讨论1 1 1 1、测定脯氨酸含量的意义。、测定脯氨酸含量的意义。、测定脯氨酸含量的意义。、测定脯氨酸含量的意义。2 2 2 2、两次沸水浴处理的作用有何不同？、两次沸水浴处理的作用有何不同？、两次沸水浴处理的作用有何不同？、两次沸水浴处理的作用有何不同？第

6、5页/共16页八、注意事项八、注意事项八、注意事项八、注意事项1 1 1 1、试管应干燥、无水滴。、试管应干燥、无水滴。、试管应干燥、无水滴。、试管应干燥、无水滴。2 2 2 2、提取过程中加甲苯后，混匀，静置，分层。、提取过程中加甲苯后，混匀，静置，分层。、提取过程中加甲苯后，混匀，静置，分层。、提取过程中加甲苯后，混匀，静置，分层。3 3 3 3、比色时，以甲苯为空白对照。、比色时，以甲苯为空白对照。、比色时，以甲苯为空白对照。、比色时，以甲苯为空白对照。第6页/共16页7实验实验6-2 6-2 植物抗逆性鉴定（电导仪植物抗逆性鉴定（电导仪法）法）一、目的二、原理 在正常情况下，细胞膜对物

7、质具有选择透性能力。在高温或低温、干 旱、盐渍、病原菌侵染后，细胞膜遭到破坏，膜透性增大，从而使细胞内的电解质外渗，植物细胞浸提液的电导率增大。膜透性增大的程度与逆境胁迫程度和植物抗逆性的强弱有关。比较不同作物或同一作物不同品种在相同胁迫温度下膜透性的增大程度，即可比较作物间或品种间的抗逆性强弱。因此，电导法目前已成为一种鉴定植物抗逆性强弱的标准方法。第7页/共16页三、材料、仪器设备及试剂三、材料、仪器设备及试剂三、材料、仪器设备及试剂三、材料、仪器设备及试剂（一）材料（一）材料（一）材料（一）材料 常温和常温和常温和常温和4040处理的处理的处理的处理的 女贞叶片。女贞叶片。女贞叶片。女贞

8、叶片。（二）仪器设备（二）仪器设备（二）仪器设备（二）仪器设备 电导仪（电导仪（电导仪（电导仪（DDS-12ADDS-12A）、恒温箱、天平、打孔器、小烧杯。、恒温箱、天平、打孔器、小烧杯。、恒温箱、天平、打孔器、小烧杯。、恒温箱、天平、打孔器、小烧杯。（三）试剂（三）试剂（三）试剂（三）试剂 去离子水。去离子水。去离子水。去离子水。第8页/共16页四、实验步骤四、实验步骤四、实验步骤四、实验步骤1 1 1 1、分别取室温和、分别取室温和、分别取室温和、分别取室温和40404040处理处理处理处理30 min30 min30 min30 min后的叶片，用吸水后的叶片，用吸水后的叶片，用吸水后

9、的叶片，用吸水纸擦净叶表面（纸擦净叶表面（纸擦净叶表面（纸擦净叶表面（清洁叶片清洁叶片清洁叶片清洁叶片），用），用），用），用打孔器打孔器打孔器打孔器打取小圆片各打取小圆片各打取小圆片各打取小圆片各20202020片。片。片。片。2 2 2 2、放入两个干净的小烧杯中，分别、放入两个干净的小烧杯中，分别、放入两个干净的小烧杯中，分别、放入两个干净的小烧杯中，分别准确准确准确准确加入去离子加入去离子加入去离子加入去离子水水水水20 ml20 ml20 ml20 ml，在室温下放置，在室温下放置，在室温下放置，在室温下放置30 min30 min30 min30 min（需不时摇动）。（需不时摇动

10、）。（需不时摇动）。（需不时摇动）。3 3 3 3、用、用、用、用电导仪电导仪电导仪电导仪测定溶液的电导率。测定溶液的电导率。测定溶液的电导率。测定溶液的电导率。第9页/共16页电导仪（电导仪（DDS-12A）见教材见教材 P90电导率电导率的计算公式：的计算公式：K=G x Q,G 为电导，为电导，Q为电极常数。为电极常数。操作步骤：操作步骤：1.温度设定：温度设定：25。2.选择最低量程和校正档，选择最低量程和校正档，旋转常数旋转常数旋钮，进行电极常数调节。旋钮，进行电极常数调节。3.选择适宜量程，测定电导率。选择适宜量程，测定电导率。注意：注意：电极不要接触管底部或管壁。电极不要接触管底

11、部或管壁。第10页/共16页五、原始数据五、原始数据五、原始数据五、原始数据分别记录室温和处理下的叶片分别记录室温和处理下的叶片分别记录室温和处理下的叶片分别记录室温和处理下的叶片电导率电导率电导率电导率 （单位（单位（单位（单位:-1-1-1-1/cm/cm/cm/cm或或或或S/cmS/cmS/cmS/cm，姆欧，姆欧，姆欧，姆欧/cm/cm/cm/cm或西门子或西门子或西门子或西门子/cm/cm/cm/cm）六、结果计算六、结果计算六、结果计算六、结果计算 伤害率（伤害率（伤害率（伤害率（%）=处理电导率处理电导率对照电导率对照电导率100100第11页/共16页七、分析与讨论七、分析与

12、讨论七、分析与讨论七、分析与讨论 比较不同处理叶片电导率变化的情况，并加以比较不同处理叶片电导率变化的情况，并加以比较不同处理叶片电导率变化的情况，并加以比较不同处理叶片电导率变化的情况，并加以解释。解释。解释。解释。第12页/共16页八、注意事项八、注意事项1 1、叶片表面要擦干净。、叶片表面要擦干净。、叶片表面要擦干净。、叶片表面要擦干净。2 2、用去离子水。、用去离子水。、用去离子水。、用去离子水。3 3、30min30min内需不时摇动。内需不时摇动。内需不时摇动。内需不时摇动。4 4、测定后，电极要清洗干净。、测定后，电极要清洗干净。、测定后，电极要清洗干净。、测定后，电极要清洗干净

13、。第13页/共16页序号周次实验项目名称131 植物组织自由水与束缚水含量测定2-植物组织水势测定-小液流法256 植物根系活力测定（TTC法）10 环境因子对光合作用的影响3716-红外CO2分析法测光合速率12 叶绿素含量测定4921 微量测压法测定种子的呼吸速率22 小篮子法测定植物的呼吸速率51534 淀粉含量的测定（旋光法）36 种子活力的快速鉴定（TTC、红墨水法）61759 植物抗逆性快速测定-脯氨酸含量测定61 电导法快速测定植物的抗逆性2012年春 植物生理学实验课程第14页/共16页2012年春 植物生理学实验课程考试题型一、名词解释：一、名词解释：二、填空题：二、填空题：三、判断题：三、判断题：四、问答题：四、问答题：五、分析说明与设计题：五、分析说明与设计题：第15页/共16页16感谢您的观看！第16页/共16页