外泌体提取方法比较31151.pdf
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1、1/3 外泌体(Exosome)发现于 1986 年,是一种直径约 30100nm 的双层膜囊泡状结构小体,可由机体多种细胞如免疫细胞、干细胞、心血管细胞、网织红细胞、血小板、神经细胞和肿瘤细胞等主动分泌产生,广泛分布于外周血、尿液、唾液、乳汁、腹水、羊水等体液中。外泌体携带大量特异性的蛋白质(如细胞因子、生长因子)以与功能性的 mRNAs、miRNAs 等生物活性物质,在体参与细胞通讯、细胞迁移、促血管新生和抗肿瘤免疫等生理过程,与多种疾病的发生和进程密切相关12。由于外泌体的特殊结构和功能,使得它具有潜在的应用价值,一方面可以作为诊断多种疾病的生物指标,另一方面也可以作为治疗手段,未来有可
2、能作为药物的天然载体用于临床治疗。外泌体的分离纯化一直是科研工作者关注的问题,获得高纯度的外泌体对后续的研究至关重要。据了解,目前人们多采用超速离心、免疫磁珠、超滤、沉淀或试剂盒等方法实现外泌体的提取分离:1、超速离心法(差速离心)超 离法是最常用的外泌体纯化手段,采用低速离心、高速离心交替进行(如下图),可分离到大小相近的囊泡颗粒。超离法因操作简单,获得的囊泡数量较多而广受 欢迎,但过程比较费时,且回收率不稳定(可能与转子类型有关),纯度也受到质疑;此外,重复离心操作还有可能对囊泡造成损害,从而降低其质量3。2、密度梯度离心 在超速离心力作用下,使蔗糖溶液形成从低到高连续分布的密度阶层,是一
3、种区带分离法。通过密度梯度离心,样品中的外泌体将在 1.13-1.19g/ml 的密度围富集。此法获得的外泌体纯度较高,但步骤繁琐,耗时。3、超滤离心4 由于外泌体是一个大小约几十纳米的囊状小体,大于一般蛋白质,利用不同截留相对分子质量(MWCO)的超滤膜对样品进行选择性分离,便可获得外泌体。超滤离心法简单高效,且不影响外泌体的生物活性,是提取细胞外泌体的一种新方法。4、磁珠免疫法 2/3 外泌体表面有其特异性标记物(如 CD63、CD9 蛋白)5,用包被抗标记物抗体的磁珠与外泌体囊泡孵育后结合,即可将外泌体吸附并分离出来。磁珠法具有特异性高、操作简便、不影响外泌体形态完整等优点,但是效率低,
4、外泌体生物活性易受 pH 和盐浓度影响,不利于下游实验,难以广泛普与。5、PEG-base 沉淀法 聚乙二醇(PEG)可与疏水性蛋白和脂质分子结合共沉淀,早先应用于从血清等样本中收集病毒,现在也被用来沉淀外泌体,其原理可能与竞争性结合游离水分子有关。利用 PEG 沉淀外泌体存在不少问题:比如纯度和回收率低,杂蛋白较多(假阳性),颗粒大小不均一,产生难以去除的聚合物,机械力或者吐温-20 等化学添加物将会破坏外泌体等,因此发表文章时易受质疑。6、试剂盒提取 近几年来,市场上已出现各种商业化的外泌体提取试剂盒,有的是通过特殊设计的过滤器过滤掉杂质成分,有的则采用空间排阻色谱法(SEC)进行分离纯化
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