第八章动植物细胞培养技术ppt课件(全).ppt

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1、第八章第八章 动植物细胞培养技术动植物细胞培养技术 第一节动物细胞大规模培养技术第二节植物细胞大规模培养技术知识目标1.掌握动植物细胞培养基本技术。2.掌握动植物培养生物反应器的类型。3.了解动植物细胞培养在生物制药领域中的应用。能力目标1.掌握主要的动植物细胞培养方式。2.掌握培养基的组成、制备、细胞培养过程的检测等基本操作。3第一节动物细胞大规模培养技术一、动物细胞培养技术概述二、动物细胞培养的基本技术和方法三、动物细胞培养的环境要求四、动物细胞生物反应器五、动物细胞大规模培养技术4一、动物细胞培养技术概述 1.动物细胞的形态 2.动物细胞的生理特点 3.动物细胞培养的主要特点 4.生产用

2、动物细胞系 5.动物细胞的冷冻保存 6.动物细胞培养基的种类和组成5 动物细胞培养（animal cell culture）是用无菌操作的方法从动物体分离得到细胞，将它们置于模拟动物体内生理条件的人工环境中，在体外进行培养并使其继续生长的过程。人们借以该技术可以观察细胞的生长、繁殖、细胞分化以及细胞衰老等生命现象。动物细胞培养的培养物可以是单个细胞，也可以是细胞群。动物细胞培养已广泛应用于病毒学，免疫学，遗传学，肿瘤学，细胞生物学，毒理学和临 床医学等各个领域。利用细胞培养技术已经 生产出了多种生物制品，如狂犬病疫苗，干 扰素，生长调节素。扰素，生长调节素。动物细胞培养技术的发展1907年，哈

3、里森（Harrison）在无菌条件下用淋巴液作培养基，培养蛙胚神经组织存活数周，并观察到神经细胞突起的生长过程，由此创建了盖片覆盖凹窝玻璃悬滴培养法，奠定了动物组织体外培养的基础。之后，又有人将悬滴培养法改良为双盖片培养，提高了传代效率并减少了污染。1923年，卡雷尔（Carrel）设计了卡氏瓶培养法，扩大了组织生存空间。1951年，厄尔（Earle）发明了体外培养动物细胞的人工合成培养基。1951年，波米拉（Pomerat）设计了灌流小室，使细胞生活在不断更新的培养液中，便于作显微摄影和细胞代谢的研究。1957年，格拉夫（Graff）用灌注培养法创造了悬浮细胞培养史上绝无仅有的1101021

4、010细胞/L的记录，标志着现代灌注概念的诞生。进一步提高了细胞悬浮培养的效率。1957年，杜尔贝科（Dulbecco）等人采用胰蛋白酶消化处理和应用液体培养基的方法，获得了单层细胞培养。1962年，Capstile成功大规模悬浮培养小鼠肾细胞（BHK），标志着动物细胞大规模培养技术的起步。1967年，Van Wezel用DEAE-Sephadex A50为载体培养动物细胞获得成功。1975年，Sato等在培养基中用激素代替血清使垂体细胞株GH3在无血清介质中生长获得成功，预示着无血清培养技术的诱人前景。1975年，Kobhler和Milstein成功融合了小鼠B淋巴细胞和骨髓瘤细胞而产生能分

5、泌稳定单克隆抗体的杂交瘤细胞。1986年，DemoBiotech公司首次用微囊化技术大规模培养杂交瘤细胞生产单抗获得成功。1989年，Konstantinovti首次提出大规模细胞培养过程中的生理状态控制，更新了传统细胞培养工艺中优化控制理论。1.动物细胞的形态2.动物细胞的生理特点分裂期长，可达1248h，同一种属不同部位的细胞分裂期长短也不相同，分裂期长短受培养条件的影响，如温度、酸度、成分等。细胞生长需贴附于基质，并有接触抑制现象。正常二倍体细胞的寿命是有限的。动物细胞对周围环境十分敏感。动物细胞对培养基要求很高。动物细胞蛋白质的合成途径和修饰功能与细菌不同。动物细胞作为宿主细胞生产药物

6、的缺点是培养条件要求高、成本高、产量低；优点是多半可分泌到细胞外，提取纯化方便，蛋白质经糖基化修饰后与天然产物更接近，适合于临床应用。3.动物细胞培养的主要特点污染概率大营养成分要求高培养环境适应差培养条件要求严格代谢废物毒性大检测控制指标多载体生长依赖强4.生产用动物细胞系生产用动物细胞是按生产条件选择、驯化、适于大量培养，用于生产制备生物制剂的动物细胞。用于动物细胞培养的细胞系主要有四类，即原代细胞、二倍体细胞、连续细胞系、融合细胞和重组细胞系。细胞系（cell line）指原代细胞培养物经首次传代成功后所繁殖的细胞群体。其中能够连续传代的细胞叫做连续细胞系或无限细胞系，不能连续培养的称为

7、有限细胞系。大多数二倍体细胞为有限细胞系。通过选择法或克隆形成法从原代培养物或细胞系中获得具有特殊性质或标志物的培养物称为细胞株（Cell Strain），也就是说，细胞株是用单细胞分离培养或通过筛选的方法，由单细胞增殖形成的细胞群。细胞株的特殊性质或标志必须在整个培养期间始终存在。（1）原代细胞系 原代细胞是指从机体取出后立即培养的细胞。有人把培养的第1代细胞与传10代以内的细胞统称为原代细胞培养。特点：细胞分裂增殖不旺盛，与体内细胞相似。应用：药物检测实验，药理研究。生产用的最多的是鸡胚细胞、原代兔肾或鼠肾细胞，以及血液淋巴细胞等。（2）二倍体细胞系二倍体细胞系是原代细胞经过传代、筛选、克

8、隆，从多种细胞成分的组织中挑选出来的具有某种特征的细胞株。该细胞仍具有“正常”细胞的特点，即染色体组是2n的核型；具有明显的贴壁依赖和接触抑制的特性；只有有限增殖能力，一般可连续传代培养50代；无致瘤性。广泛用于生产的二倍体细胞系有WI-38、MRC-5和2BS等。WI-38细胞是人二倍体细胞系，成纤维细胞，能产生胶原，倍增时间为24小时，有限寿命50代，用于制备疫苗。MRC-5：人二倍体细胞系，成纤维细胞，有限寿命4246代，用于制备疫苗。（3）连续细胞系连续细胞系:从正常细胞转化而来，分化不成熟的、获得了无限增殖能力的一种细胞株。常常由于染色体的断裂而变成异倍体，并失去正常细胞的特点。传代

9、细胞在长期培养中，由于自发或人为方法可获得无限增殖能力。此外，直接从肿瘤组织建立的细胞系也是转化细胞系。由于转化的细胞具有无限的生命力，而且倍增时间常常较短，对培养条件和生长因子要求较低，故适用于大规模工业化生产。近年来用于生产的这种细胞有Namalwa、CHO、BHK-21和Vero细胞。CHO-K1：从中国地鼠卵巢中分离的上皮样细胞，用于构建工程细胞。BHK-21：从地鼠幼鼠的肾脏中分离。成纤维样细胞，用于构建工程菌，可生产疫苗。Vero：从非洲绿猴肾中分离，贴壁依赖的成纤维细胞，用于制备疫苗。Namalwa：从淋巴瘤病人分离，生产干扰素。（4）基因工程细胞系基因工程细胞系指采用基因工程技

10、术或细胞融合技术对宿主细胞的遗传物质进行修饰改造或重组，获得具有稳定遗传的独特性状的细胞系。随着细胞融合和基因重组技术的发展，已有多种有生物活性的基因重组蛋白在医学、生物学的研究和应用中发挥越来越重要的作用，并产生巨大的效益。人们通过基因工程技术，把编码蛋白质的基因在分子的水平上进行设计、改造、重组，再转移到新的宿主细胞系统内进行复制、表达和折叠，以产生新的功能蛋白。这种在基因水平上进行操作构建的细胞，称为基因工程细胞系。5.动物细胞的冷冻保存冷冻保存：将体外培养物或生物活性材料悬浮在加有或不加冷冻保护剂的溶液中，以一定的冷冻速率降至零下某一温度（一般是低于-70的超低温条件），并在此温度下对

11、其长期保存的过程。复苏：以一定的复温速率将冻存的体外培养物或生物活性材料恢复到常温的过程。在低于-70的超低温条件下，有机体细胞内部的生化反应极其缓慢，甚至终止。当以适当的方法将冻存的生物材料恢复至常温时，其内部的生化反应可恢复正常。冷冻保护剂是指可以保护细胞免受冷冻损伤的物质。冷冻保护剂常常配制成一定的溶液。冷冻保护剂可分为渗透性和非渗透性两类。渗透性冷冻保护剂可以渗透到细胞内，一般是一些小分子物质，主要包括甘油、DMSO、乙二醇、丙二醇、乙酰胺、甲醇等。冻存时DMSO平衡多在4下进行，一般需要4060分钟。非渗透性冷冻保护剂不能渗透到细胞内，一般是些大分子物质，主要包括聚乙烯吡咯烷酮（PV

12、P）、蔗糖、聚乙二醇、葡聚糖、白蛋白以及羟乙基淀粉等。不同的冷冻保护剂有不同的优、缺点。目前一般多采用联合使用两种以上冷冻保护剂组成保护液。由于许多冷冻保护剂（如DMSO）在低温下能保护细胞，但在常温下却对细胞有害，故在细胞复温后应及时洗涤冷冻保护剂。6.动物细胞培养基的种类和组成（1）天然培养基天然培养基是指来自动物体液或利用组织分离提取的一类培养基，如血浆、血清、淋巴液、鸡胚浸出液等。组织培养技术建立早期，体外培养细胞都是利用天然培养基。由于天然培养基制作过程复杂、批间差异大，因此逐渐为合成培养基所替代。目前广泛使用的天然培养基是血清，另外各种组织提取液、促进细胞贴壁的胶原类物质在培养某些

13、特殊细胞也是必不可少。其优点是营养成分丰富、培养效果好；缺点是成分复杂、个体差异大、来源有限。天然培养基的种类主要包括生物性体液（如血清）、组织浸出液（如胚胎浸出液）、凝固剂（如血浆）、水解乳蛋白等。（2）合成培养基 组成稳定，可大量生产供应。成分为氨基酸、维生素、糖类（碳源）、无机盐、其他（前体和氧化还原剂）。合成培养基中除了各种营养成分外，还需添加5%10%的小牛血清，才能使细胞很好地增殖。血清主要作用：提供基本营养物质；提供激素和各种生长因子；提供结合蛋白；提供促接触和伸展因子使细胞贴壁免受机械损伤；对培养中的细胞起到某些保护作用。合成培养基是根据天然培养基的成分，用化学物质对细胞体内生

14、存环境中已知物质在体外人工条件的模拟，经过反复试验筛选、强化和重新组合后形成的培养基。合成培养基既能给细胞提供一个近似于体内的生存环境，又便于控制和提供标准化体外生存环境。（3）无血清培养基 无血清培养基提高了细胞培养的可重复性，避免了血清差异所带来的细胞差异；减少了由血清带来的病毒、真菌和支原体等微生物污染的危险；供应充足、稳定；细胞产品易于纯化；避免了血清中某些因素对有些细胞的毒性；减少了血清中蛋白对某些生物测定的干扰，便于结果分析。无血清培养基在天然或合成培养基的基础上添加激素、生长因子、结合蛋白、贴附和伸展因子及其他元素。二、动物细胞培养的基本技术和方法（一）动物细胞的原代培养技术（二

15、）动物细胞的传代培养技术（一）动物细胞的原代培养技术1.组织块培养法组织块培养法是将组织剪成小块后，接种于培养瓶进行培养。是常用的、简便易行的以及成功率较高的原代培养方法，可根据不同细胞生长需求要将培养瓶做适当处理。优点：操作方便，部分种类的组织细胞在小块贴壁培养24h后，细胞就从组织块四周游出。缺点：由于反复剪切和接种过程中对组织块的损伤，并不是每个小块都能长出细胞。细胞生长缓慢，耗时较长。组织块培养法特别适合于组织量少的原代培养。组织块原代培养法操作方法将组织剪成或切成1mm3大小的小块，并加入少许培养基使组织湿润。将小块均匀涂布于瓶壁，每小块间距0.2 cm0.5cm，一般在25mL培养

16、瓶（底面积为17.5cm2）可接种2030小块为宜，小块放置后，轻轻翻转培养瓶，使瓶底朝上，然后于瓶内加入适量培养基盖好瓶塞，将瓶倾斜放置在37温箱内。培养24h，待小块贴附后，将培养瓶缓慢翻转平放，静置培养，动作要轻，严禁摇动和来回振荡，以防由于冲动而使小块漂起而造成培养失败，若组织块不易贴壁可预先在瓶壁涂一薄层血清、胎汁或鼠尾胶原等。开始培养时培养基不宜多，以保持组织块湿润即可，培养24小时后再补液，培养初期移动和观察时要轻拿轻放，开始几天尽量不去搬动，以利贴壁和生长，培养35天时可换液，一方面补充营养，一方面去除代谢产物和漂浮小块所产生的毒性作用。注意事项组织块接种后1-3天，由于游出细

17、胞数量较少，组织块粘贴不牢固，在观察和移动过程中要注意轻拿轻放，尽量不要引起液体的流动而产生对组织块的冲击力使其漂浮。原代培养3-5天后，需换液一次，因为已漂浮的组织块和很多细胞碎片含有有毒物质，影响原代细胞的生长，要及时清除。2.消化培养法消化培养法是采用组织消化分散法将细胞间质包括基质、纤维等妨碍细胞生长的物质去除，使细胞分散，形成悬液，从而易用于从外界吸收养分和排出代谢产物。优点：快速得到大量活细胞，细胞也能在短时间内生长成片，适用于培养大量组织，原代细胞产量高。缺点：步骤繁琐、易污染，一些消化酶价格昂贵，实验成本高。消化培养法的基本步骤操作方法按消化分离法获得细胞在消化过程中，可随时吸

18、取少量消化液在镜下观察，如发现组织已分散成细胞团或单个细胞，则终止消化。如有组织块，可用孔径适当的筛网将其滤掉。大组织可加入新的消化液继续消化。将已过滤的消化液以800-1000r/min低速离心后，弃上清液，加含血清的培养液，轻轻吹打形成悬浮液。细胞计数后，接种细胞培养瓶，置5%CO2温箱培养。某些特殊类型细胞，如内皮细胞、骨髓细胞等，需用特殊消化手段和步骤进行。（二）动物细胞传代培养技术1.原代培养的首次传代 使原代细胞经分散接种的过程称之为传代。每进行一次分离再培养称之为传一代，传至510代以内的细胞通常称为次代培养细胞，传至1020代以上的细胞，通常确定为传代细胞（或称传代细胞系）。传

19、代细胞系的建立，关键是初代培养的首次传代。应注意如下几点：（1）细胞生长密度不高时，或未能达到覆盖整个瓶底时不能急于传代。（2）原代培养的贴壁细胞多为混杂细胞，形态各异，往往是上皮样细胞和成纤维样细胞并存，采用胰蛋白酶消化时要掌握好消化时间，因成纤维细胞易于脱壁，上皮细胞不易脱壁，因此，可根据需要选用适当的消化时间及时中止消化。在早先传代时，其消化时间比一般已建系的细胞相对长一些。（3）吹打已消化的细胞要轻巧，既不能听到有明显的吹打声，又不能有大量泡沫在悬液中形成，以尽可能减少对细胞的机械损伤。（4）首次传代时细胞接种数量要多一些，以利于细胞的生存和繁殖。如果消化分离的细胞悬液有组织块，也一并

20、传入到培养瓶，尽量减少细胞损失。（5）首次传代培养时的pH不能高，宁可偏低一些。此外，小牛血清浓度可适当加大至15%20%左右。2.细胞传代方法（1）贴壁生长的消化传代 吸弃或倒掉瓶内陈旧培养液。在培养瓶内加入适量消化液。消化25min后吧培养瓶放置于显微镜下观察，发现细胞质回缩、细胞间隙增大后，应立即停止消化。吸除或倒掉消化液。用吸管吸取瓶内培养液，按顺序反复吹打瓶壁细胞，从培养瓶底部一边开始到另一边结束，以确保所有底部都被吹到。计数后，按要求的接种量接种在新的培养瓶内。（2）悬浮细胞的传代 直接传代 使悬浮细胞慢慢沉淀瓶底，吸掉1/21/3的上清液，用吸管吹打形成细胞悬浮液后再传代。离心收

21、集细胞后传代 将细胞连同培养液一并转移到离心管内，以8001000r/min离心5min，弃上清液，加入新的培养液到离心管内，用吸管轻轻吹打使之形成细胞悬液，然后传代接种。悬浮细胞多采用此法。3.细胞系的维持(1)细胞档案 细胞档案要记录好，如组织来源、生物学特性（由形态、生长繁殖曲线、染色体核型情况、代谢特性、分化特性、病毒敏感性、致瘤特性、有无支原体和潜存病毒等）、培养基的要求、传代换液时间、扩增时间（分裂指数），细胞的特殊遗传标志（标记染色体）等，这些记录对于保证细胞的正常生长，保持细胞的一致和经长期培养细胞特性的变异比较，都有十分重要的意义。(2)遵从细胞生长的规律性 细胞系的传代、换

22、液方法一般都有自身的规律性，因而在继续传代时，要注意保持其稳定的规律性，这样可以减少由于传代时细胞密度的频繁增减或换液时间的不规律而导致细胞生长特性的改变，给以后的实验带来影响。(3)防止细胞间交叉感染 多种细胞系维持传代，要严格操作程序，对所用的试剂各系不能交叉。每传5代后，细胞种子均应冻存。传代时均应作好记录，培养瓶上要有明显标记，标记细胞系名称和传代的代数及传代时间。(4)及时冻存防丢失 细胞种子的及时冻存不仅可防止污染丢失，而且还可防止因盲目传代而造成细胞变异，此外还可提供不同代次的细胞同时进行对比试验。（5）细胞系（或株）的鉴定和管理三、动物细胞培养的环境要求主要有细胞生长的支持物、

23、气体交换、培养温度、pH值、渗透压及其他因素等方面。1.支持物（1）玻璃 很便宜，容易洗涤，且不损失支持生长的性质，可方便地用于干热和湿热灭菌，透光性好，强碱可使玻璃对培养产生不良影响，但用酸洗中和后即可。（2）塑料制品 细胞培养用的塑料用品要用射线、化学药品或电弧处理使之产生带电荷的表面，具有可湿润性。（3）微载体 材料有聚苯乙烯、交联葡萄糖、聚丙烯酰胺、纤维素衍生物、几丁质、明胶等。优点是使贴壁细胞可以像悬浮培养那样进行。2.气体交换（1）氧气 氧参与三羧酸循环，产生能量供给细胞生长、增殖以及合成各种成分。一些细胞在缺氧情况下，借糖酵解也可获取能量，但多数细胞缺氧不能生存。在开放培养时，一

24、般置细胞于95空气加5二氧化碳的混合气体环境中培养。（2）二氧化碳 二氧化碳既是细胞代谢产物，也是细胞所需成分，它主要与维持培养基的pH有直接关系。动物细胞大多数需要轻微的碱性条件，pH值约在7.27.4，在细胞生长过程中，随细胞数量的增多和代谢活动的加强，二氧化碳不断被释放，培养液变酸，pH值发生变化。由于NaHCO3容易分解为二氧化碳，很不稳定，致使缓冲系统难以精确地控制。故这一缓冲系统适合密闭培养。3.培养温度 哺乳动物及人源细胞最适培养温度为3537，对低温耐受力比高温强。39以上受损死亡；不低于0时（034），细胞能生存，但代谢降低、分裂延缓。温度调节的范围最大不超过0.5。4.pH

25、值合适的pH值是细胞生存的必要条件之一，动物细胞合适的pH值一般在7.27.4，低于6.8或高于7.6都对细胞产生不利影响，严重时可导致细胞退变或死亡。维持细胞生存环境中的pH值至关重要，最常用的方法是加磷酸缓冲液，缓冲液中碳酸氢钠具有调节CO2的作用。由于容易从环境中逸出，故只适用于封闭式培养。为克服碳酸氢钠的缺点，有时采用羟乙基哌嗪乙烷硝酸（HEPES），它对细胞无作用，主要防止pH值迅速波动，具有较强的稳定培养基pH值的能力。5.渗透压细胞必须生活在等渗环境中，大多数培养细胞对渗透压有一定耐受性。人血浆渗透压290mOsm/kg,可视为培养人体细胞的理想渗透压。鼠细胞渗透压在320mOs

26、m/kg左右。对于大多数哺乳动物细胞，渗透压在260320mOsm/kg的范围都适宜。四、动物细胞生物反应器（一）生物反应器的分类目前，动物细胞培养用生物反应器主要包括：转瓶培养器、塑料袋增殖器、填充床反应器、多层板反应器、螺旋膜反应器、管式螺旋反应器、陶质矩形通道蜂窝状反应器、流化床反应器、中空纤维及其它膜式反应器、搅拌反应器、气升式反应器等。按其培养细胞的方式不同，这些反应可分为以下三类。悬浮培养用反应器，如搅拌反应器、中空纤维反应器、陶质矩形通道蜂窝状反应器、气升式反应器。贴壁培养用反应器，如搅拌反应器（微载体培养）、玻璃珠床反应器、中空纤维反应器、陶质矩形通道蜂窝状反应器。包埋培养用反

27、应器，如流化床反应器、固化床反应器。1.搅拌罐生长反应器 这是最经典、最早被采用的一种生物反应器。此类反应器与传统的微生物生物反应器类似，针对动物细胞培养的特点，采用了不同的搅拌器及通气方式。通过搅拌器的作用使细胞和养分在培养液中均匀分布，使养分充分被细胞利用，并增大气液接触面，有利于氧的传递。现已开发的有：笼式通气搅拌器、双层笼式通气搅拌器、桨式搅拌器等。2.气升式生物反应器 1979年首次应用气升式生物反应器成功的进行了动物细胞的悬浮培养。其优点：罐内液体流动温和均匀，产生剪切力小，对细胞损伤较小；可直接喷射空气供氧，因而氧传递率较高；液体循环量大，细胞和养分都能均匀分布于培养液中；结构简

28、单，利于密封并降低了造价。常用的气升式反应器有三种：内循环式气升式、外循环式气升式、内外循环式气升式生物反应器。3.鼓泡式生物反应器 与气升式反应器相类似，是利用气体鼓泡来进行供氧及混合，其设计原理与气升式生物反应器也相同。4.中空纤维生物反应器 用途较广，既可用于悬浮细胞的培养，又可用于贴壁细胞的培养。原理：模拟细胞在体内生长的三维状态，利用反应器内数千根中空纤维的纵向布置，提供细胞近似生理条件的体外生长微环境，使细胞不断生长。中空纤维是一种细微的管状结构，管壁为极薄的半透膜，富含毛细管，培养时纤维管内灌流充以氧气的无血清培养液，管外壁则供细胞黏附生长，营养物质通过半透膜从管内渗透出来供细胞

29、生长；对于血清等大分子营养物，必须从管外灌入，否则会被半透膜阻隔不能被细胞利用；细胞的代谢废物也可通过半透膜渗入管内，避免了过量代谢物对细胞的毒害作用。优点是：占地空间少；细胞产量高，细胞密度可达109数量级；生产成本低，且细胞培养维持时间长，适用于长期分泌的细胞。中空纤维细胞培养反应器流程5.微载体培养技术（microcarrier culture technique）及反应器微载体：是指直径在60-250m，能适用于贴壁细胞生长的微珠。一般是由天然葡聚糖或者各种合成的聚合物组成。微载体的表面带少量正电荷，能促进细胞贴壁。微载体培养法:将动物细胞吸附于微载体表面，微载体(带着细胞)悬浮于培养

30、基中，使细胞在微载体表面长成单层的培养方法。微载体培养兼具悬浮培养和贴壁培养的优点，是目前公认的最有发展前途的一种动物细胞大规模培养技术。微载体培养原理：是将对细胞无害的颗粒-微载体加入到培养容器的培养液中，作为载体，使细胞在微载体表面附着生长，同时通过持续搅动使微载体始终保持悬浮状态。微载体培养优点（1）表面积/体积（S/V）大，因此单位体积培养液的细胞产率高；（2）把悬浮培养和贴壁培养融合在一起，兼有两者的优点；（3）可用简单的显微镜观察细胞在微珠表面的生长情况；（4）简化了细胞生长各种环境因素的检测和控制，重现性好；（5）培养基利用率较高；（6）放大容易；（7）细胞收获过程不复杂；（8）

31、劳动强度小；（9）培养系统占地面积和空间小。微载体培养操作要点培养初期：保证培养基与微球体处于稳定的PH与温度水平，接种细胞（对数生长期，而非稳定期）至终体积1/3的培养液中，以增加细胞与微载体接触的机会。不同的微载体所用浓度及接种细胞密度是不同的。常使用2-3g/L的微载体含量，更高的微载体浓度需要控制环境或经常换液。贴壁阶段（3-8d）后，缓慢加入培养液至工作体积，并且增加搅拌速度保证完全均质混合。培养维持期：进行细胞计数（胞核计数）、葡萄糖测定及细胞形态镜检。随意细胞增殖，微球变得越来越重，需增加搅拌速率。经过3d左右，培养液开始呈酸性，需换液：停止搅拌，让微珠沉淀5min，弃掉适宜体积

32、的培养液，缓慢加入新鲜培养液（37），重新开始搅拌。收获细胞：排干培养液，至少用缓冲液漂洗一遍，然后加入相应的酶，快速搅拌（75-125r/min）20-30min，然后解离收集细胞及其产品。微载体培养的放大：可以通过增加微载体的含量或培养体积进行放大。微载体培养系统（二）生物反应器的设计和放大设计的总体原则包括以下几个方面。结构严密，能耐受蒸汽灭菌，采用对生物催化剂无害和耐蚀材料制作，内壁光滑无死角，内部附件尽量减少，以维持纯种培养需要；有良好的气-液接触和液-固混和性能和热量交换性能，使质量与热量传递有效地进行；保证产物质量和产量前提下，尽量节省能源消耗；减少泡沫产生，或附有消沫装置以提高

33、装料系数，并有必要可靠的参数检测和控制仪表并能与计算机联机。通常细胞生长所需要的氧气控制在30%70%。氧气传递速率（oxygen transfer rate,OTR）OTR=KLa(C*CL)KLa为氧的传递系数；C*为相当气相氧分压的溶氧浓度，CL为培养液中溶氧浓度。影响供氧的因素总体上讲是KLa和C*CL值。要增大C*CL，无非是增大C*值或降低CL值。增大C*的措施，有适当增加反应器中操作压力和增大气相中的氧分压两个方法。影响KLa的因素大致可分为三个方面：一是反应器的结构，包括相对几何尺寸的比例；二是操作条件，如搅拌功率或循环泵功率的输入量，通气量等；三是培养或发酵液的物理化学性质，

34、如流变特性，特别是其粘度或显示粘度、表面张力、扩散系数、细胞形态、泡沫程度等。五、动物细胞大规模培养技术（一）动物细胞大规模培养方法（二）大规模培养技术的操作方式（一）动物细胞大规模培养方法（1）贴壁培养 生长时必须要有给以贴附的支持物表面，细胞依靠自身分泌的或培养基中提供的贴附因子才能在该表面上生长和繁殖，细胞在表面上生长时有两种形态，成纤维样细胞型和上皮样细胞型。成纤维样细胞型主要来源于中胚层组织细胞心肌细胞、平滑肌细胞成骨细胞等，上皮样细胞型主要来源于外胚层和内胚层组织细胞，皮肤细胞、肠管上皮细胞，在培养过程中，随着培养条件的变化细胞形态也会发生改变。（2）悬浮培养 生长不依赖支持物表面

35、，在培养液中悬浮生长，如淋巴细胞等。（3）固定化培养 根据生长条件的不同可贴壁也可悬浮生长，中国地鼠卵巢细胞。（二）大规模培养技术的操作方式深层培养可分为：分批式、流加式、半连续式、连续式和灌注式五种。1.分批式培养 2.流加式培养 3.半连续式培养 4.连续式培养 5.灌注式培养1.分批式培养（batch culture）分批式培养是细胞规模培养发展进程中较早期采用的方式，也是其它操作方式的基础。该方式采用机械搅拌式生物反应器，将细胞扩大培养后，一次性转入生物反应器内进行培养，在培养过程中其体积不变，不添加其它成分，待细胞增长和产物形成积累到适当的时间，一次性收获细胞、产物、培养基的操作方式

36、。特点:操作简单。培养周期短，染菌和细胞突变的风险小。直观反映细胞生长代谢的过程。因培养期间细胞生长代谢是在一个相对固定的营养环境，不添加任何营养成分，因此可直观的反映细胞生长代谢的过程,是动物细胞工艺基础条件或小试研究常用的手段；可直接放大。由于培养过程工艺简单，对设备和控制的要求较低，设备的通用性强，反应器参数的放大原理和过程控制，比较其它培养系统较易理解和掌握，在工业化生产中分批式培养操作是传统的、常用的方法，其工业反应器规模可达12000L。分批培养过程中，细胞的生长分为五个阶段：延滞期、对数生长期、减速期、平稳期和衰退期。典型的分批培养随时间变化的过程曲线2.流加式培养（feedin

37、g culture）流加式培养是在批式培养的基础上，采用机械搅拌式生物反应器系统，悬浮培养细胞或以悬浮微载体培养贴壁细胞，细胞初始接种的培养基体积一般为终体积的1/21/3，在培养过程中根据细胞对营养物质的不断消耗和需求，流加浓缩的营养物或培养基，从而使细胞持续生长至较高的密度，目标产品达到较高的水平，整个培养过程没有流出或回收，通常在细胞进入衰亡期或衰亡期后进行终止回收整个反应体系，分离细胞和细胞碎片，浓缩、纯化目标蛋白。流加培养是当前动物细胞培养中占有主流优势的培养工艺，也是近年来动物细胞大规模培养研究的热点。流加培养中的关键技术是基础培养基和流加浓缩的营养培养基。流加的总体原则是维持细胞

38、生长相对稳定的培养环境。营养成分过剩会产生大量的代谢副产物造成营养利用效率下降而成为无效的利用，营养成分缺乏会导致细胞生长抑制或死亡。流加工艺中的营养成分主要有以下三大类。葡萄糖 葡萄糖是细胞的供能物质和主要的碳源物质，当其浓度较高是会产生大量的代谢产物乳酸，因而需要进行其浓度控制，以足够维持细胞生长而不至于产生大量的副产物的浓度为佳。谷氨酰胺 谷氨酰胺是细胞的供能物质和主要的氮源物质，然而当其浓度较高是会产生大量的代谢产物氨，因而也需要进行其浓度控制，以足够维持细胞生长而不至于产生大量的副产物的浓度为佳；大规模培养中细胞凋亡主要由于营养物质的耗竭或代谢产物的堆积引起，如谷氨酰胺的耗竭是最常见

39、的凋亡原因，而且凋亡一旦发生，补加谷氨酰胺已不能逆转凋亡。另外，动物细胞在无血清、无蛋白培养基中进行培养时，细胞变得更为脆弱，更容易发生凋亡。氨基酸、维生素及其他 主要包括营养必需氨基酸、营养非必需氨基酸、一些特殊的氨基酸如羟脯氨酸、羧基谷氨酸和磷酸丝氨酸；此外还包括其他营养成分如胆碱、生长刺激因子。添加的氨基酸形式多为左旋氨基酸，因而多以盐或前体的形式替代单分子氨基酸，或者添加四肽或短肽的形式。在进行添加时，不溶性氨基酸如胱氨酸、酪氨酸和色氨酸只在中性pH值部分溶解，可采用泥浆的形式进行脉冲式添加；其他的可溶性氨基酸以溶液的形式用蠕动泵进行缓慢连续流加。流加式培养分为单一补料分批式培养和反复

40、补料分批式培养。单一补料分批式培养是在培养开始时投入一定量的基础培养液，培养到一定时期，开始连续补加浓缩营养物质，直到培养液体积达到生物反应器的最大操作容积，停止补加，最后将细胞培养液一次全部放出。该操作方式受到反应器操作容积的限制，培养周期只能控制在较短的时间内。反复补料分批式培养是在单一补料分批式操作的基础上，每个一定时间按一定比例放出一部分培养液，是培养液体积始终不超过反应器的最大操作容积，从而在理论上可以延长培养周期，直至培养效率下降，才将培养液全部放出。3.半连续式培养（semi-continuous culture）半连续式培养又称为重复分批式培养或换液培养。采用机械搅拌式生物反应

41、器系统，悬浮培养形式。在细胞增长和产物形成过程中，每间隔一段时间，从中取出部分培养物，再用新的培养液补足到原有体积，使反应器内的总体积不变。半连续式培养时，培养物的体积逐步增加，可进行多次收获，细胞可持续指数生长，并可保持产物和细胞在较高的浓度水平，培养过程可延续到很长时间。该操作方式的优点是操作简便，生产效率高，可长时期进行生产，反复收获产品，可使细胞密度和产品产量一直保持在较高的水平。在动物细胞培养和药品生产中被广泛应用。4.连续式培养（continuous culture）是一种常见的悬浮培养模式，采用机械搅拌式生物反应器系统。该模式是将细胞接种与一定体积的培养基后，为了防止衰退期的出现

42、，在细胞达最大密度之前，以一定速度向生物反应器连续添加新鲜培养基；同时，含有细胞的培养物以相同的速度连续从反应器流出，以保持培养体积的恒定。理论上讲，该过程可无限延续下去。优点：反应器的培养状态可以达到恒定，细胞在稳定状态下生长。连续式培养不足是容易造成污染，细胞的生长特性以及分泌产物容易变异，对设备、仪器的控制技术要求较高。连续式培养的特点主要表现在细胞维持持续指数增长，产物体积不断增长，可控制衰退期与下降期。5.灌流式培养（perfusion culture）灌流式培养是把细胞和培养基一起加入反应器后，在细胞增长和产物形成过程中，不断地将部分培养基取出，同时又连续不断地灌注新的培养基。与半

43、连续式操作的不同之处在于取出部分培养基时，绝大部分细胞均保留在反应器内，而半连续培养在取培养物时同时也取出了部分细胞。灌流式培养具有很大的优点。细胞截流系统可使细胞或酶保留在反应器内，维持较高的细胞密度，一般可达107109个/ml，从而较大的提高了产品的产量；连续灌流系统，使细胞稳定的处在较好的的营养环境中，有害代谢废物浓度积累较低；反应速率容易控制，培养周期较长，可提高生产率，目标产品回收率高；产品在罐内停留时间短，可及时回收到低温下保存，有利于保持产品的活性。灌流式培养常使用的生物反应器主要有两种形式：搅拌式生物反应器、固定床或流化床生物反应器。搅拌式生物反应器悬浮培养细胞，必须具有细胞

44、截流装置，细胞截留系统开始多采用微孔膜过滤或旋转膜系统，最近开发的有各种形式的沉降系统或透析系统。它采用的中空纤维半透膜，透过小分子量的产物和底物，截流细胞和分子量较大的产物，在连续灌流过程中将绝大部分细胞截留在反应器内；近年来中空纤维生物反应器被广泛应用于产物分泌性动物细胞的生产，主要用于培养杂交瘤细胞生产单克隆抗体。固定床是在反应器中装配固定的篮筐，中间装填聚脂纤维载体，细胞可附着在载体上生长，也可固定在载体纤维之间，靠搅拌中产生的负压，迫使培养基不断流经填料，有利于营养成分和氧的传递，这种形式的灌流速度较大，细胞在载体中高密度生长。流化床生物反应器是通过流体的上升运动使固体颗粒维持在悬浮

45、状态进行反应，适合于固定化细胞的培养。6.细胞工厂(cell factory)培养细胞工厂培养是一种设计精巧的细胞培养装置。它在有限的空间内利用了最大限度的培养表面，从而节省了大量的厂房空间，并可节省贵重的培养液。更重要的是，它可有效地保证操作的无菌性，从而避免因污染而带来的原料、劳务和时间损失。它是对传统转瓶培养的革命。第二节植物细胞大规模培养技术一、植物细胞培养技术概述二、植物细胞培养流程和方法三、植物细胞生物反应器四、植物细胞大规模培养技术一、植物细胞培养技术概述1.植物细胞形态2.植物细胞基本结构3.植物细胞培养的概念4.植物细胞培养特性5.植物细胞培养所需营养物质6.植物细胞培养的主

46、要条件植物细胞培养是在离体条件下，将愈伤组织或其他易分散的组织置于 液体培养基中进行震荡培养，得到分散成游离 的悬浮细胞，通过继代培养使 细胞增殖，从而获得大量细胞群体的一种技术。根据培养对象，植物细胞培养主要有单细胞培养，单倍体培养，原生质体培养等。按照培养系统可分为悬浮培养、液体培养、固体培养、固定化培养等。植物细胞培养技术的发展1902年，德国植物学家哈贝兰特依据细胞学说认为，高等植物的器官和组织可以分离成单个细胞，而每一个分离出来的细胞都具有进一步分裂和发育的能力。1904年，亨宁（Henning）成功地进行了胡萝卜和辣菜根的离体胚的生长。1927年，温特（Went）发现了生长素吲哚乙

47、酸（IAA）能促进细胞的生长。20世纪30年代，人们发现通过细胞或组织培养可使植物再生。1939年，高特里特（Gautheret）、诺伯科特（Nobercourt）和怀特（White）分别成功地培养了烟草、萝卜和杨树等细胞，并形成部分组织。至此，植物细胞培养才真正开始。1956年，Roetier等首先申请了用植物细胞培养生产生物化学物质的专利。70年代后，引入外源基因的植物细胞可以产生人们所需要的产物。20世纪七十年代末到八十年代初，优化细胞生长和次级代谢产物形成的研究能产生大量植物次生代谢产物，如培养红豆杉细胞生产的抗癌新药紫杉醇。1.植物细胞形态多细胞植物其细胞形态多种多样，球形、类圆形、

48、椭圆形、角形；具有支持作用的细胞细胞壁常增厚，类圆形、纺锤形；具有输导作用的细胞管形。细胞大小不一，基本组织细胞体积较大直径在20100微米之间，储藏组织细胞的直径可达1毫米，最长的细胞是无节乳管长达数米至数十米。2.植物细胞基本结构植物细胞结构示意图3.植物细胞培养的概念（1）植物组织和细胞培养植物组织和细胞培养是指在无菌和人工控制的营养（培养基）及环境条件（光照、温度）下，研究植物的细胞、组织和器官以及控制其生长发育的技术。植物无菌培养包括：幼苗及较大植株的培养（植物培养）；从植物体各种器官的外植体增殖而形成的愈伤组织的培养（愈伤组织培养）；能够保持较好分散性的离体细胞或较小细胞团的液体培

49、养（悬浮培养）；离体器官的培养（器官培养）；未成熟或成熟的胚胎的离体培养（胚胎培养）。（2）悬浮培养：在液体培养基中，能够保持良好分散性的细胞和小的细胞聚集体的培养。组织化水平较低。（3）细胞培养：利用单个细胞进行液体或固体培养，诱导其增殖及分化。目的是为了得到单细胞无性繁殖系。（4）分生组织培养：又称生长锥培养，在人工培养基上培养茎端分生组织细胞。（5）外植体：用于植物组织（细胞）培养的器官或组织（的切段），植物的个部位如根、茎、叶、花、果、穗、胚珠、胚乳、花药和花粉等均可作为外植体进行组织培养。（6）愈伤组织：指从植物受伤部位或组织培养物产生的由分化和未分化细胞组成的一类薄壁组织。愈伤组织

50、通常没有固定形状，可使伤口愈合，使表面的细胞呈木栓化而起着保护作用。当植物扦插时，愈伤组织可形成不定根；在植物嫁接时，愈伤组织可使接稳和砧木愈合；在植物组织培养中，愈伤组织常可形成不定芽。植物细胞培养的基本过程（7)花粉培养：在无菌条件下取出花药或从花药中取出花粉粒（小孢子），置于人工培养基上进行培养，形成花粉胚或花粉愈伤组织，最后长成花粉植株（图1-4-5）。由于这种植株含有的染色体数目只相当体细胞的一半，故又称单倍体植株。单倍体植株经过染色体加倍就成为纯合的双倍体植株。花粉培养目前已成为植物细胞育种的一种重要手段，并已取得重要成果。花粉培养的基本过程(8)原生质体培养:植株的幼胚、根、茎、