WesternBlot实验技术学习.pptx
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1、Western BlotWestern Blot实验原理实验原理Western Blot中文一般称为蛋白质印迹。它是分子生物学、生物化学和免疫遗传学中常用的一种实验方法。其基本原理是把通过特异性抗体对凝胶电泳处理过的蛋白质变为可见、可分析的灰色条带,通过分析条带的位置和条带着色深度获得特定蛋白质在所分析的细胞或组织中的表达情况的信息。Western Blot 应用:研究检测样品中特异性蛋白质的存在 细胞中特异蛋白质的半定量分析 蛋白质分子的相互作用研究AMPK2(分子量:63KD)第1页/共32页第一页,编辑于星期日:八点 七分。Western Blot 的具体步骤(一)蛋白样品制备(二)蛋白
2、含量的测定(三)凝胶 电泳(四)转膜 (五)封闭(六)免疫反应(七)化学发光,显影,定影(八)凝胶图像分析第2页/共32页第二页,编辑于星期日:八点 七分。(一)(一)蛋白样品制备蛋白样品制备以体外培养的贴壁细胞样本为例,对其进行总蛋白提取:1、倒掉培养液,并将瓶倒扣在吸水纸上使吸水纸吸干培养液(或将瓶直立放置一会儿使残余培养液流到瓶底然后再用移液器将其吸走)。2、每瓶细胞加 3ml 4预冷的 PBS(0.01M pH7.27.3)。平放轻轻摇动 1min 洗涤细胞,然后弃去洗液。重复以上操作两次,共洗细胞三次以洗去培养液。将PBS 弃净后把培养瓶置于冰上。3、按 1ml 裂解液加 10 l
3、PMSF(100mM),摇匀置于冰上。(PMSF 要摇匀至无结晶时才可与裂解液混合。)第3页/共32页第三页,编辑于星期日:八点 七分。(一)蛋白样品制备4、每瓶细胞加 400 l 含 PMSF 的裂解液,于冰上裂解 30min,为使细胞充分裂解培养瓶要经常来回摇动。5、裂解完后,用干净的刮棒将细胞刮于培养瓶的一侧(动作要快),然后用枪将细胞碎片和裂解液移至 1.5ml 离心管中。(整个操作尽量在冰上进行。)6、于 4下 12000rpm 离心 5min。(提前开离心机预冷)7、将离心后的上清液分装转移至离心管中放于20保存。第4页/共32页第四页,编辑于星期日:八点 七分。(二)(二)蛋白含
4、量的测定蛋白含量的测定 步骤:1.将96孔板分好区域,若不够分则只做两个重复,(外围一圈的孔最好不用)2.算好孔数(总的)每孔加200ulBCA工作液(A+B),(A液:B液=50:1,一般配多些,如60孔,A液12000ul,B液240ul)3.将样品稀释到一定倍数才能定量,(10倍,20倍,30倍),每孔需要20ul样品(2ul样品+18ulPBS,即稀释10倍),做三个重复则需要60ul,一般配80ul第5页/共32页第五页,编辑于星期日:八点 七分。(二)蛋白含量的测定4.配蛋白标准样品,将2mg/ml的蛋白标准溶液稀释至0.5mg/ml,若配200ul 的0.5mg/ml蛋白标准溶液
5、则需要50ul的2mg/ml的蛋白标准溶液和150ul PBS溶液5.将稀释好的样品加入孔板中(标记的区域),接着标准品按0,1,2,4,8,12,16,20ul加到标号的区域,之后在加标准样品的孔内,将孔内溶液用PBS补足到20ul6.每孔加200ul配好的工作液,平行加,不能上下加,以减少误差7.将加好的96孔板放在37下孵育30分钟第6页/共32页第六页,编辑于星期日:八点 七分。(二)蛋白含量的测定8.孵育完后,放在酶标仪轻微震荡3-10s,中速,吸光值595nm,进行比色测定,记录标准曲线及样品吸光值数据后,以蛋白含量(ml)为横坐标,吸光值为纵坐标作标准曲线。(R2 0.98才有用
6、,酶标仪操作:两个箭头图标,1是结果,2是保存)9.计算蛋白含量(注意定量样品已经稀释了10倍)第7页/共32页第七页,编辑于星期日:八点 七分。(三)凝胶电泳凝胶成份:丙烯酰胺:形成聚合物链 N,N-亚甲双丙烯酰胺:形成纵向架桥(cross-linkage)SDS过硫酸铵(APS):助凝剂TEMED:催化剂H2O仪器:仪器:电泳缓冲液:Tris-甘氨酸溶液第8页/共32页第八页,编辑于星期日:八点 七分。(三)凝胶电泳 1、制胶玻璃板用自来水刷洗干净,再用双蒸水冲洗一遍,在烘箱中烘干,垂直放在制胶架上根据蛋白质分子量大小,配置所需分离胶,用1ml移液抢灌胶配制浓缩胶,并灌在分离胶上面,插入梳
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