第五章--转基因动物与生物反应器OK..优秀PPT.ppt
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1、第五章第五章 转基因动物与生物反应器转基因动物与生物反应器将克隆的外源基因注射到一个受精卵的细胞核中;将克隆的外源基因注射到一个受精卵的细胞核中;接种后的受精卵移植到雌性受体的子宫,使其顺当完成胚胎发育;接种后的受精卵移植到雌性受体的子宫,使其顺当完成胚胎发育;移植后的受精卵发育生长为后代,其中的部分后代其细胞中都携带有转移植后的受精卵发育生长为后代,其中的部分后代其细胞中都携带有转 入的外源基因;入的外源基因;利用这些能产生外源蛋白的动物作为种畜或种禽,培育新的纯合系。利用这些能产生外源蛋白的动物作为种畜或种禽,培育新的纯合系。将特定的目的基因从某一生物体分别出来,进行扩增和加将特定的目的基
2、因从某一生物体分别出来,进行扩增和加工,再导入另一动物的早期胚胎细胞中,使其整合到宿主动物工,再导入另一动物的早期胚胎细胞中,使其整合到宿主动物的染色体上,在动物的发育过程中表达,并通过生殖细胞传给的染色体上,在动物的发育过程中表达,并通过生殖细胞传给后代。这种在基因组中稳定整合有人工导入外源基因的动物称后代。这种在基因组中稳定整合有人工导入外源基因的动物称为转基因动物(为转基因动物(transgenetic animal)。)。外源目的基因的制备外源目的基因的制备外源目的基因有效导入生殖细胞或胚胎干细胞外源目的基因有效导入生殖细胞或胚胎干细胞选择获得携有目的基因的细胞选择获得携有目的基因的细
3、胞选择合适的体外培育系统和宿主动物选择合适的体外培育系统和宿主动物转基因细胞胚胎发育及鉴定转基因细胞胚胎发育及鉴定筛选所得的转基因动物品系筛选所得的转基因动物品系第一节第一节 目的基因的制备目的基因的制备一、目的基因的来源一、目的基因的来源1.接受限制性内切酶,从生物组织中获得目的基因;接受限制性内切酶,从生物组织中获得目的基因;2.通过通过mRNA合成合成cDNA;3.人工合成的人工合成的DNA片段;片段;4.聚合酶链式反应(聚合酶链式反应(PCR)扩增特定基因片段。)扩增特定基因片段。二、目的基因的克隆二、目的基因的克隆通过载体在适当的宿主中克隆通过载体在适当的宿主中克隆选择载体目的基因与
4、载体的连接重组体导入受体细胞通过通过PCR反应克隆目的基因反应克隆目的基因三、目的基因的转移三、目的基因的转移u电穿孔法电穿孔法u显微注射法显微注射法u袒露袒露DNA干脆注射干脆注射u磷酸钙磷酸钙DNA共沉淀法共沉淀法u脂质载体包埋法脂质载体包埋法u病毒介导的生物学方法病毒介导的生物学方法电穿孔法实现外源基因的转移电穿孔法实现外源基因的转移利用脉冲电场提高细胞膜的利用脉冲电场提高细胞膜的利用脉冲电场提高细胞膜的利用脉冲电场提高细胞膜的通透性,从而使外源通透性,从而使外源通透性,从而使外源通透性,从而使外源DNADNA转转转转移至细胞中。此法简洁、效移至细胞中。此法简洁、效移至细胞中。此法简洁、
5、效移至细胞中。此法简洁、效率较高,广泛应用于培育细率较高,广泛应用于培育细率较高,广泛应用于培育细率较高,广泛应用于培育细胞的基因转移。胞的基因转移。胞的基因转移。胞的基因转移。显微注射转基因技术显微注射转基因技术利用显微操作技术转移外利用显微操作技术转移外利用显微操作技术转移外利用显微操作技术转移外源基因的方法。源基因的方法。源基因的方法。源基因的方法。此法转入此法转入此法转入此法转入基因长度可达数百基因长度可达数百基因长度可达数百基因长度可达数百kbkb;并;并;并;并能随机地整合在受体细胞能随机地整合在受体细胞能随机地整合在受体细胞能随机地整合在受体细胞染色体染色体染色体染色体DNADN
6、A上,因此应用上,因此应用上,因此应用上,因此应用范围广。但是这种整合有范围广。但是这种整合有范围广。但是这种整合有范围广。但是这种整合有时会导致转基因动物基因时会导致转基因动物基因时会导致转基因动物基因时会导致转基因动物基因组的重排、易位、缺失或组的重排、易位、缺失或组的重排、易位、缺失或组的重排、易位、缺失或定点突变。定点突变。定点突变。定点突变。磷酸钙磷酸钙DNA共沉淀法基因转移技术共沉淀法基因转移技术这种方法是受二价金属离这种方法是受二价金属离这种方法是受二价金属离这种方法是受二价金属离子能促进细胞吸取外源子能促进细胞吸取外源子能促进细胞吸取外源子能促进细胞吸取外源DNADNA的启发而
7、发展起来的。的启发而发展起来的。的启发而发展起来的。的启发而发展起来的。当核酸以磷酸钙当核酸以磷酸钙当核酸以磷酸钙当核酸以磷酸钙DNADNA共共共共沉淀物的形式在时,细胞沉淀物的形式在时,细胞沉淀物的形式在时,细胞沉淀物的形式在时,细胞摄取摄取摄取摄取DNADNA的实力显著加强。的实力显著加强。的实力显著加强。的实力显著加强。但转移效率较低,仅有但转移效率较低,仅有但转移效率较低,仅有但转移效率较低,仅有1%5%1%5%的外源的外源的外源的外源DNADNA可以可以可以可以进入受体细胞核中,大约进入受体细胞核中,大约进入受体细胞核中,大约进入受体细胞核中,大约仅有仅有仅有仅有1%1%的的的的DN
8、ADNA可以在细可以在细可以在细可以在细胞中稳定表达。胞中稳定表达。胞中稳定表达。胞中稳定表达。脂质载体包埋法脂质载体包埋法将须要转移的外源将须要转移的外源将须要转移的外源将须要转移的外源DNADNA或或或或RNARNA包袱于脂质体内,由包袱于脂质体内,由包袱于脂质体内,由包袱于脂质体内,由于脂质体具有磷脂双层结于脂质体具有磷脂双层结于脂质体具有磷脂双层结于脂质体具有磷脂双层结构,与细胞膜类似,因此构,与细胞膜类似,因此构,与细胞膜类似,因此构,与细胞膜类似,因此可以与受体细胞膜融合,可以与受体细胞膜融合,可以与受体细胞膜融合,可以与受体细胞膜融合,从而将外源从而将外源从而将外源从而将外源DN
9、ADNA转入宿主转入宿主转入宿主转入宿主细胞。这种方法转基因效细胞。这种方法转基因效细胞。这种方法转基因效细胞。这种方法转基因效率高。率高。率高。率高。病毒介导的生物学方法病毒介导的生物学方法其次节其次节 转基因动物的方法转基因动物的方法反转录病毒法反转录病毒法基因显微注射法基因显微注射法胚胎干细胞移植法胚胎干细胞移植法一、基因的显微注射法一、基因的显微注射法何为显微注射?何为显微注射?显微注射就是借助光学显微镜的放显微注射就是借助光学显微镜的放大作用,利用显微操作仪,干脆把大作用,利用显微操作仪,干脆把DNA注射到动物早期胚胎、胚胎干细胞、体注射到动物早期胚胎、胚胎干细胞、体细胞或卵母细胞中
10、,然后生产动物个体细胞或卵母细胞中,然后生产动物个体的技术。经过显微注射的技术。经过显微注射DNA发育而成的发育而成的动物中,有少数整合了被注射的动物中,有少数整合了被注射的DNA分分子,成为转基因动物。子,成为转基因动物。通过激素疗法使小鼠超数排卵,起先时注射雌性妊娠血清,48小时后再注 射人绒毛膜促进腺激素,这时小鼠便会超数排卵,一般状况下5-10个,超 数排卵为35个;与雄性小鼠交配,然后杀掉小鼠,从其输卵管内取出受精卵;将经纯化的转基因样品快速注射入受精卵中变大的雄性原核内;将25-40个注射了转基因的受精卵移植入代孕小鼠体内;受精卵发育成胚胎,并繁殖成转基因小鼠子代;从小鼠子代体内取
11、出DNA样品,进行杂交,鉴定转基因的整合与否及位 点;子代小鼠间进行再交配,繁殖,视察转基因是否遗传及表达。DNADNA显微注射法的基本程序显微注射法的基本程序通过通过DNA显微注射获得转基因小鼠示图显微注射获得转基因小鼠示图(一)显微注射(一)显微注射DNA的制备与纯化的制备与纯化uDNA构型和末端结构u载体uDNA的长度与浓度u溶解DNA的缓冲液uDNA的纯度(二)鼠的准备与要求(二)鼠的准备与要求转基因鼠试验所用各类鼠转基因鼠试验所用各类鼠(三)超排卵与取卵(三)超排卵与取卵孕马血清(孕马血清(PMS)其有效成分为卵泡刺激素()其有效成分为卵泡刺激素(FSH)。)。人绒毛膜促性腺激素(人
12、绒毛膜促性腺激素(hGG)雌鼠的排卵时间:PM10.0012.00雄鼠的排精时间:PM10.0012.00受精一般发生在:AM1.001 超排卵超排卵制定排卵程序:制定排卵程序:(1)于第一日中午先向小鼠腹腔内注入于第一日中午先向小鼠腹腔内注入5一一l 0单位的单位的PMS;(2)过过48小时小时(第三天中午第三天中午)腹腔内注入腹腔内注入510单位的人单位的人hCG(注射后注射后1113 小时小时 后排卵后排卵);(3)令雌雄动物一对一的合笼交配;动物半夜交尾,如未发生交配,两令雌雄动物一对一的合笼交配;动物半夜交尾,如未发生交配,两周后可再周后可再 重用,但成功率下降;重用,但成功率下降;
13、(4)检查阴栓检查阴栓(第四日晨第四日晨);检查阴栓可判定是否受精;如已受精则出现;检查阴栓可判定是否受精;如已受精则出现阴栓。阴栓。2 受精卵的收集受精卵的收集(1)检查阴栓:有白色阴栓的小鼠可用,引颈处死动物:(2)取输卵管:剖开腹腔,取出输卵管,置入含有3ml培育液的60mm直径的瓶皿中;(3)取卵子;在20或50解剖镜下找到输卵管,在卵管膨大的壶腹部(于卵管开口近 处)隐隐可见内含的胚卵,把胚卵团用尖摄轻轻压挤出,用吸管移入含有400l分别 液的表玻皿中;(4)另准备45个瓶皿,每皿内均充有胚胎培育基400 l并覆盖有厚8mm硅烷油或液 体石蜡层(Fisher产,探讨用),硅烷油和石蜡
14、巳预先在5%CO2中置371时做平衡 处理,覆硅烷油或石蜡层的目的是为防止培育液蒸发、散热和pH变更;(5)向含卵团表玻皿的分别液中加5 l新制备的透亮质酸酶(透亮质酸酶10mg1ml分 离液,Sigma产),把胚卵团消化分散开;(6)当卵团散开后,马上把分散游离的卵细胞用吸管转移入培育皿中,通过硅油层接 种入任一培育液小滴中),以清除酶的接着作用;(7)再依次通过皿内其余培育液小滴,以接着除掉酶和摆脱碎片(碎片能堵塞吸管口),此时的卵己可用作DNA注射之用。(四)(四)DNA显微注射显微注射1制备持卵管与注射针制备持卵管与注射针2持卵管制备:在火焰灯上将微玻璃管拉成中间较细的约持卵管制备:在
15、火焰灯上将微玻璃管拉成中间较细的约510cm长的一段,其口径约长的一段,其口径约80120m,用玻璃刀将其,用玻璃刀将其在离颈部在离颈部2cm处切断,再把切口烧成如图形态,口径约处切断,再把切口烧成如图形态,口径约15 m。将尖部移近火焰喷灯略加热,用镊子轻触尖部适宜。将尖部移近火焰喷灯略加热,用镊子轻触尖部适宜位置,使变成如图所示角度。位置,使变成如图所示角度。3注射针的制备:由拉针器制成,针的口径应低于注射针的制备:由拉针器制成,针的口径应低于1 m。(1)硅烷油注入:取培育皿或表玻皿,注入已经过平衡处理过的液体硅烷油或石蜡 (厚约5mm);(2)加培育基:通过硅烷油或石蜡层向培育皿底接种
16、培育液,以100l为单元的小滴 数个,各滴间相距1一2cm(视小滴多少而定);(3)胚卵接种:吸取待受注射胚卵数个,通过油层分别接种入培育液小滴中;(4)DNA准备:从Eppendorf管中取一份DNA后;用75%乙醇漂洗后,真空中干燥,重悬于注射缓冲液中(含1mgDNAml),使其最终浓度为:0.050.5mg/ml;(5)于临注射前把DNA样品在Eppendorf 管中再离心一次(1200rpm,10分钟),以消 除末溶解物,防止堵塞注射管口;(6)把待注射用的DNA装入注射管中;2 DNA注射注射(7)在显微镜下把支持吸管转移到培育液小滴中,选一健康胚卵;先吸少量培育 液,仅令充入吸管末
17、端,然后吹出;在吸管保持负压状态下吸住胚卵,继 之把支持管调至皿底令胚卵靠于皿底面中心部;(8)调注射针至胚卵近处,先调显微镜焦点看清针尖,然后通过透亮带刺入胚卵 细胞膜内(小鼠胚卵直径约10m),进而接着进针再刺入任一原核内(雄性原 核多位于周边部,体积较大,为主要注射对象)。注射针刺入细胞内进行注 射时,如细胞核微微发生膨胀,证明DNA已被注入,反之需重新进行注射;注射细胞数量越多越好;(9)用支持吸管把已注射细胞移入另一培育小滴中,使之与未注射细胞分开;待 注射结束后,把全部细胞均移入培育液中,置入温箱培育30分种;(10)镜下视察细胞,发觉有溶解死亡崩溃者弃掉。(五)体内接种(五)体内
18、接种(1)在手术前夜令受体母鼠与已结扎输精管雄性小鼠合笼,次日晨取出雌鼠备用;(2)取注射吸管两支,分别作为向两侧输卵管注入胚卵之用;先吸入少许培育液,排出后留少许液体并保留一两个气泡,继之吸入胚卵数个(在管腔内成串);最终仍保留一个气泡,以使管内胚卵限制于气泡之间不易移动并利于识别;(3)麻醉小鼠,深度适当,置动物于小手术平台上,呈腹卧位(背朝上);(4)剪出背肾部两侧毛,碘酒酒精消毒;(5)使动物躯干部一侧斜向上,在髂骨和肾脏下方间剪一纵切口,长2cm;(6)轻轻牵出输卵管,找寻输卵管口(刚排卵动物输卵管壶腹部微膨胀,内可见 成团未受精卵子)一手用镊子轻轻持住输卵管系膜,另一只手持一个含有
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