实验1 DNA提取纯化检测-jgh.ppt





《实验1 DNA提取纯化检测-jgh.ppt》由会员分享,可在线阅读,更多相关《实验1 DNA提取纯化检测-jgh.ppt(18页珍藏版)》请在淘文阁 - 分享文档赚钱的网站上搜索。
1、实验一实验一 真核细胞染色体真核细胞染色体DNADNA的的 分离、纯化和检测分离、纯化和检测 实实 验验 目目 的的n n通过实验学习从血液中制备染色体DNA的方法。n n学习琼脂糖凝胶电泳,检测DNA的纯度、DNA的构型、含量以及分子量的大小。n n掌握DNA样品的纯化和定量检测方法。n n红细胞裂解液裂解红细胞红细胞裂解液裂解红细胞n n细胞裂解液裂解白细胞细胞裂解液裂解白细胞n n用蛋白酶用蛋白酶K K水解蛋白质水解蛋白质n n有机溶剂酚、氯仿抽提有机溶剂酚、氯仿抽提n n在高盐条件下,用乙醇沉淀在高盐条件下,用乙醇沉淀DNADNAn n再用再用70%70%乙醇洗除沉淀中的盐分乙醇洗除沉
2、淀中的盐分n n即可获得染色体即可获得染色体DNADNA基因组提取实验原理基因组提取实验原理DNA分子在琼脂糖凝胶中泳动时,有电荷效应与分子筛效应。前者由分子所带净电荷量的多少而定,后者则主要与分子大小及其构型有关。DNA分子在高于其等电点的溶液中带负电荷,在电场中向正极移动,在用电泳法测定DNA分子大小时,应当尽量减少电荷效应。增加凝胶的浓度可以在一定程度上降低电荷效应,使分子的迁移速度主要由分子受凝胶阻滞程度的差异所决定,提高分辨率。同时适当减低电泳时的电压,也可使分子筛效应相对增加而提高分辨率。琼脂糖凝胶电泳实验原理琼脂糖凝胶电泳实验原理n n纯净的纯净的DNA A260/A280=1.
3、8DNA A260/A280=1.8,制备的制备的DNADNA样品应该为样品应该为1.71.8 1.71.8 n n纯净的纯净的RNA A260/A280=2.0RNA A260/A280=2.0,制备的,制备的RNARNA样品应该大于样品应该大于2.02.0n n如果制备的如果制备的DNADNA样品样品A260/A2801.7A260/A2802A260/A2802,说明样品中说明样品中RNARNA过高,可用过高,可用RNaseRNase消化后,用消化后,用酚、氯仿、异戊醇抽提,再用乙醇沉淀酚、氯仿、异戊醇抽提,再用乙醇沉淀DNADNA;n n如果样品如果样品A260/A280A260/A2
4、80为为1.82.01.82.0,说明样品中盐的含量过高,说明样品中盐的含量过高,样品沉淀后应用样品沉淀后应用70%70%乙醇多洗一遍。乙醇多洗一遍。n n提取的提取的RNARNA样品样品A260/A280A260/A280应大于应大于1.801.80。RNARNA样品含有蛋白质样品含有蛋白质会使会使A260/A280A260/A280比值下降。比值下降。DNA浓度测定实验原理浓度测定实验原理实实 验验 材材 料料红细胞裂解液红细胞裂解液KHCO3 1g (10mM)NH4Cl 8.3g (155mM)EDTANa2 37mg (0.1mM)裂解缓冲液(裂解缓冲液(lysis buffer)1
5、0mM Tris-Cl (pH8.0)0.1M EDTA (pH8.0)0.5%(m/v)SDSACD抗凝液抗凝液柠檬酸 0.48g柠檬酸钠 1.32g右旋葡萄糖 1.47g加水至100ml,使用时每6ml新鲜血液加1ml ACD液组织细胞组织细胞动物血液样品,将20ml新鲜血液与3.5mlACD抗凝液混匀,0下保存数天或-70下长期冻存,备用。n n酚:氯仿:异戊醇(酚:氯仿:异戊醇(2525:2424:1 1)n n70%70%乙醇乙醇n nTE bufferTE buffern nRNAseRNAsen n琼脂糖琼脂糖n nTAETAE电泳缓冲液电泳缓冲液n n电泳设备电泳设备n n紫外
6、分光光度计紫外分光光度计n n凝胶成像系统凝胶成像系统实实 验验 材材 料料染色体染色体DNA的制备方法的制备方法1.取800l抗凝血液置于5ml离心管中。2.往管中加3ml红细胞裂解液,轻摇数次,置冰上5分钟,期间间歇摇动 几次。3.4000rpm,室温离心5分钟,弃上清。4.往管中加入3ml红细胞裂解液,重悬沉淀,冰上5分钟,期间摇几次。5.4000rpm,离心5分钟,弃上清。6.重复步骤4、5四至五遍,至出现明显白色沉淀。将残余红细胞弃去,留下 白色沉淀。7.用1PBS 3ml洗涤所得沉淀。8.4000rpm,离心5分钟,弃上清。9.每管中加入500l白细胞裂解缓冲液(每小组配制1ml)
7、,重悬细胞,加入 20l proteinase K(20mg/ml),混匀后转移至1.5ml离心管,置55水浴 1小时。10.加入酚:氯仿500l,混匀后10000rpm,离心5分钟,取上清,至1.5ml离心管,加入氯仿500l,混匀后10000rpm,离心5分钟,取上清至5ml离心管。(两次取上清前用剪刀将枪头尖剪去3mm)11.加入1ml无水乙醇,轻轻混匀可见DNA凝集。12.12000rpm,离心2分钟,弃上清。13.用1ml 70%乙醇洗涤沉淀,12000rpm,离心2分钟,弃上清。14.开盖室温干燥沉淀5分钟。15.加入30l DDW(无菌水)溶解DNA,取10l电泳。16.加入3m
8、l DDW至剩余样品中,测OD260和0D280,计算DNA浓度及OD260/0D280。染色体染色体DNA的制备方法的制备方法琼脂糖凝胶电泳方琼脂糖凝胶电泳方 法法 1.选择合适的电泳仪和水平式电泳槽,调节电泳槽平面至水平,检查稳压电源与正负极的线路。2.将电泳板置于制胶器中或用玻璃胶带封好制胶板两端,防止浇板时出现渗漏。选择孔径大小适宜的点样梳,垂直架在电泳板负极的一端,使点样梳底部电泳板水平面的距离为0.5-1.0mm。3.制备琼脂糖凝胶:按照被分离DNA分子的大小,决定凝胶中琼脂糖的百分含量。称取琼脂糖,溶解在电泳缓冲液中,大电泳槽约160毫升,小电泳槽约35毫升凝胶液,置微波炉或水浴
9、锅中加热,至琼脂糖全部溶化。4.待凝胶溶液冷至50左右时,在凝胶溶液中加入EB(终浓度0.5g/ml),摇匀,轻轻倒入电泳板上,除去气泡。5 5待凝胶冷却凝固后(约待凝胶冷却凝固后(约3030分钟),在电泳槽内加入电泳缓冲液,大电泳槽分钟),在电泳槽内加入电泳缓冲液,大电泳槽约需约需1200ml1200ml,小电泳槽约,小电泳槽约180ml180ml。从制胶器取出电泳板,放入电泳槽,然后。从制胶器取出电泳板,放入电泳槽,然后小心取出点样梳,保持点样孔的完好,去除空内气泡。小心取出点样梳,保持点样孔的完好,去除空内气泡。6 6待测的待测的DNADNA样品中,加五分之一体积的溴酚蓝指示剂点样缓冲液
10、样品中,加五分之一体积的溴酚蓝指示剂点样缓冲液(6loading Buffer6loading Buffer)。如果待测样品太小要用电泳缓冲液稀释,再加五分)。如果待测样品太小要用电泳缓冲液稀释,再加五分之一体积的溴酚蓝指示剂点样缓冲液。如点样体积之一体积的溴酚蓝指示剂点样缓冲液。如点样体积10l10l样品与样品与2l2l溴酚蓝指溴酚蓝指示剂点样缓冲液,混匀后小心地进行点样,记录点样顺序和点样量。示剂点样缓冲液,混匀后小心地进行点样,记录点样顺序和点样量。7 7打开电源,打开电源,DNADNA的迁移速度与电压成正比,与琼脂糖含量有关。最高电压的迁移速度与电压成正比,与琼脂糖含量有关。最高电压不
- 配套讲稿:
如PPT文件的首页显示word图标,表示该PPT已包含配套word讲稿。双击word图标可打开word文档。
- 特殊限制:
部分文档作品中含有的国旗、国徽等图片,仅作为作品整体效果示例展示,禁止商用。设计者仅对作品中独创性部分享有著作权。
- 关 键 词:
- 实验1 DNA提取纯化检测-jgh 实验 DNA 提取 纯化 检测 jgh

限制150内