细胞培养实验技术大全23144.pdf

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1、-细胞培养实验技术大全 第一章细胞培养的根本原理与技术现代生物技术一般认为包括基因工程技术、细胞工程技术、酶工程技术和发酵工程技术，而这些技术的开展几乎都与细胞培养有密切关系，特别是在医药领域的开展，细胞培养更具有特殊的作用和价值。比方基因工程药物或疫苗在研究生产过程中很多是通过细胞培养来实现的。基因工程乙肝疫苗很多是以 CHO 细胞作为载体；细胞工程中更是离不细胞培养，杂交瘤单克隆抗体，完全是通过细胞培养来实现的，既使是现在飞速开展的基因工程抗体也离不开细胞培养。正在倍受重视的基因治疗、体细胞治疗也要经过细胞培养过程才能实现，发酵工程和酶工程有的也与细胞培养密切相关。总之，细胞培养在整个生物

2、技术产业的开展中起到了很关键的核心作用。第一节体外培养的概念一、根本概念体外培养in vitro culture，就是将活体构造成分或活的个体从体或其寄生体取出，放在类似于体生存环境的体外环境中，让其生长和发育的方法。组织培养：是指从生物体取出活的组织多指组织块在体外进展培养的方法。细胞培养：是指将活细胞尤其是分散的细胞在体外进展培养的方法。器官培养：是指从生物体取出的器官一般是胚胎器官、器官的一局部或器官原基在体外进展培养的方法。二、体、外细胞的差异和分化 1、差异：细胞离体后，失去了神经体液的调节和细胞间的相互影响，生活在缺乏动态平衡相对稳定环境中，日久天长，易发生如下变化：分化现象减弱；

3、形态功能趋于单一化或生存一定时间后衰退死亡；或发生转化获得不死性，变成可无限生长的连续细胞系或恶性细胞系。因此，培养中的细胞可视为一种在特定的条件下的细胞群体，它们既保持着与体细胞一样的根本构造和功能，也有一些不同于体细胞的性状。实际上从细胞一旦被置于体外培养后，这种差异就开场发生了。2、分化：体外培养的细胞分化能力并未完全丧失，只是环境的改变，细胞分化的表现和在体不同。细胞是否表现分化,关键在于是否存在使细胞分化的条件，如 Friend细胞小鼠红白血病细胞在一定的因素作用下可以合成血红蛋白，血管皮细胞在类似基膜物质底物上培养时能长成血管状构造，杂交瘤细胞能产生特异的单克隆抗体，这些均属于细胞

4、分化行为。第二节细胞培养的一般过程一、准备工作准备工作对开展细胞培养异常重要，工作量也较大，应给予足够的重视，推备工作中*一环节的疏忽可导致实验失败或无法进展。准备工作的容包括器皿的清洗、枯燥与消毒，培养基与其他试剂的配制、分装及灭菌，无菌室或超净台的清洁与消毒，培养箱及其他仪器的检查与调试。二、取材在无菌环境下从机体取出*种组织细胞视实验目的而定，经过一定的处理如消化分散细胞、别离等后接入培养器血中，这一过程称为取材。如是细胞株的扩大培养则无取材这一过程。机体取出的组织细胞的首次培养称为原代培养。理论上讲各种动物和人体的所有组织都可以用于培养，实际上幼体组织尤其是胚胎组织比成年个体的组织容易

5、培养，分化程度低的组织比分化高的容易培养，肿瘤组织比正常组织容易培养。取材后应立即处理，尽快培养，因故不能马上培养时，可将组织块切成黄豆般大的小块，置 4的培养液中保存。取组织时应严格保持无菌，同时也要防止接触其他的有害物质。取病理组织和皮肤及消化道上皮细胞时容易带菌，为减少污染可用抗菌素处理。三、培养将取得的组织细胞接入培养瓶或培养板中的过程称为培养。如系组织块培养，则直接将组织块接入培养器皿底部，几个小时后组织块可贴牢在底部，再参加培养基。如系细胞培养，一般应在接入培养器皿之前进展细胞计数，按要求以一定的量以每毫升细胞数表示接入培养器皿并直接参加培养基。细胞进入培养器皿后，立即放入培养箱中

6、，使细胞尽早进入生长状态。正在培养中的细胞应每隔一定时间观察一次，观察的容包括细胞是否生长良好，形态是否正常，有无污染，培养基的 PH 是否太酸或太碱由酚红指示剂指示，此外对培养温度和 CO2 浓度也要定时检查。原代培养一般有一段潜伏期数小时到数十天不等，在潜伏期细胞一般不分裂，但可贴壁和游走。过了潜伏期后细胞进入旺盛的分裂生长期。细胞长满瓶底后要进展传代培养，将一瓶中的细胞消化悬浮后-分至两到三瓶继续培养。每传代一次称为一代。二倍体细胞一般只能传几十代，而转化细胞系或细胞株则可无限地传代下去。转化细胞可能具有恶性性质，也可能仅有不死性Immortality而无恶性。四、冻存及复可参阅后面有关

7、章节为了保存细胞，特别是不易获得的突变型细胞或细胞株，要将细胞冻存。冻存的温度一般用液氮的温度196，将细胞收集至冻存管中参加含保护剂一般为二甲亚砜或甘油的培养基，以一定的冷却速度冻存，最终保存于液氮中。在极低的温度下，细胞保存的时间几乎是无限的。复一般采用快融方法，即从液氮中取出冻存管后，立即放入 37水中，使之在一分钟迅速融解。然后将细胞转入培养器皿中进展培养。冻存过程中保护剂的选用、细胞密度、降温速度及复时温度、融化速度等都对细胞活力有影响。五、常用仪器设备无菌室,超净工作台,三重纯水蒸馏器,抽气泵,压力蒸气消毒器,电热恒温培养箱,培养器具，CO2 培养箱,恒温水浴锅,倒置显微镜,离心机

8、,无菌过滤器,洗刷装置,细胞计数板和电子细胞技术仪等等。第三节细胞培养的无菌环境一、无菌室无菌室的构造：一般由更衣间、缓冲间、操作间三局部组成。无菌室的消毒和防污染：为保持无菌状态，经常消毒是必要的，通常采用每日使用前紫外照射12 小时，每周甲醛、乳酸、过氧乙酸熏蒸2 小时和每月新洁尔灭擦拭地面和墙壁一次的方式进展消毒。实际工作中，要根据无菌室建筑材料的差异来选择适宜的消毒方法。此外，还应注意防止无菌室的污染。造成无菌室污染的可能包括：送入无菌室的风没有被过滤除菌；进出无菌室时，能使外界空气直接对流进无菌室的操作间；等。二、超净工作台工作原理：鼓风机驱动空气通过高效过滤器得以净化，净化的空气被

9、徐徐吹过台面空间而将其中的尘埃、细菌甚至病毒颗粒带走，使工作区构成无菌环境。根据气流在超净工作台的流动方向不同，可将超净工作台分为侧流式、直流式和外流式三种类型。超净台的使用与保养：超净台的平均风速保持在米/秒为宜，过大、过小均不利于保持净化度；使用前最好开启超净台紫外灯照射 1030 分钟，然后让超净台预工作 1015 分钟，以除去臭氧和使用工作台面空间呈净化状态；使用完毕后，要用 70%酒精将台面和台四周擦拭干净，以保证超净台无菌。还要定期用福尔马林熏蒸超净台。第四节常用培养器皿及清洗消毒细胞培养需要大量消耗性物品，如玻璃器皿、金属器皿、塑料、橡胶制品、布类、纸类等，因此掌握清洗、消毒知识

10、，学会清洗、消毒方法是从事细胞培养工作必须的。一、清洗离体条件下，有害物质直接同细胞接触，细胞对任何有害物质十分敏感，极少残留物都可以对细胞产生毒副作用。因此，新的或重新使用的器皿都必须认真清洗，到达不含任何残留物的要求。一玻璃器皿的清洗一般经过浸泡、刷洗、浸酸、和清洗四个步骤。1、浸泡:新的或用过的玻璃器皿要先用清水浸泡，软化和溶解附着物。新玻璃器皿使用前得先用自来水简单刷洗，然后用 5盐酸浸泡过夜；用过的玻璃器皿往往附有大量蛋白质和油脂，干涸后不易刷洗掉，故用后应立即浸入清水中备刷洗。2、刷洗:将浸泡后的玻璃器皿放到洗涤剂水中，用软毛刷反复刷洗。不要留死角，并防止破坏器皿外表的光洁度。将刷

11、洗干净的玻璃器皿洗净、晾干，备浸酸。3、浸酸:浸酸是将上述器皿浸泡到清洁液中，又称酸液，通过酸液的强氧化作用去除器皿外表的可能残留物质。浸酸不应少于六小时，一般过夜或更长。放取器皿要小心。4、冲洗:刷洗和浸酸后的器皿都必须用水充分冲洗，浸酸后器皿是否冲洗的干净，直接影响到细胞培养的成败。手工洗涤浸酸后的器皿，每件器皿至少要反复注水倒空15 次以上，最后用重蒸水浸洗 23 次，晾干或烘干后包装备用。二 橡胶制品清洗新的橡胶制品洗涤方法：0.5mol/L NaOH 煮沸 15 分钟，流水冲洗，0.5mol/L HCl 煮沸 15 分钟，流水冲洗，自来水煮沸 2 次，蒸馏水煮沸 20 分钟，50烤干

12、备用。三塑料制品的清洗塑料制品特点：质软、易出现划痕；耐腐蚀能力强、但不耐热。清洗程序：使用器皿后立即用清水清洗，浸于自来水过夜，用纱布或棉签和 50清洗液刷洗，流水冲洗，晾干，浸于清洁液 15 分钟，流水冲洗1520 遍,蒸馏水浸洗三次，双蒸水泡 24 小时，晾干备用。四包装:对细胞培养用品进展消毒前，要进展严密包装，以便于消毒和贮存。常用的包装材料：牛皮纸、硫酸纸、棉布、-铝饭盒、较大培养皿等，近几年用铝箔包装，非常方便，适用。培养皿、注射器、金属器械等用牛皮纸包装后再装入饭盒，较大的器皿可以进展局部包扎。二、消毒和灭菌微生物污染是造成细胞培养失败的主要原因一物理消毒法 1、紫外线消毒:紫

13、外线是一种低能量的电磁辐射，可杀死多种微生物。革兰阴性菌最为敏感，其次是阳性菌，再次为芽孢，真菌孢子的抵抗力最强。紫外线的直接作用是通过破坏微生物的核酸及蛋白质等而使其灭活，间接作用是通过紫外线照射产生的臭氧杀死微生物。直接照射培养室消毒，用法简单，效果好。紫外灯的消毒效果同紫外灯的辐射强度和照射剂量呈正相关，辐射强度随灯距离增加而降低，照射剂量和照射时间呈正比。因此紫外灯同被照射物的距离和照射时间要适合。离地面2 米的 30W 灯可照射 9 平方米房间，每天照射 23 小时，期间可间隔 30 分钟。灯管离地面2 米以外要延长照射时间，2.5 米照射效果较差。紫外灯照射工作台的距离不应超过 1

14、.5 米，照射时间 30 分钟为宜。紫外灯不仅对皮肤、眼睛伤害，且对培养细胞与试剂等也产生不良影响，因此，不要开着紫外等操作。2、高温湿热灭菌:压力蒸汽灭菌是最常用的高温湿热灭菌方法。对生物材料有良好的穿透力，能造成蛋白质变性凝固而使微生物死亡。布类、物、璃器皿、属器皿、胶和*些培养液都可以用这方法灭菌。不同压力蒸汽所到达的温度不同，不同消毒物品所需的有效消毒压力和时间不同。从压力蒸汽消毒器中取出消毒好的物品 不包括液体，应立即放到 60-70烤箱烘干，再贮存备用，否则，潮湿的包装物品外表容易为微生物污染。煮沸消毒也是常用的湿热消毒方法，它具有条件简单、使用方便等特点。3、高温干热消毒：干热灭

15、菌主要是将电热烤箱物品加热到 160以上，并保持 90120 分钟，杀死细菌和芽孢，到达灭菌目的。主要用于灭菌玻璃器皿如体积较大的烧杯、培养瓶、金属器皿以及不能与蒸汽接触的物品如粉剂、油剂。干热灭菌后要关掉开关并使物品逐渐冷却后在翻开，切忌立即翻开，以免温度骤变而使箱的玻璃器皿破裂。干烤箱物品间要有空隙，物品不要靠近加热装置。烧灼也是灭菌方法之一，常利用台面上的酒精灯的火焰对金属器皿及玻璃器皿口缘进展烧灼消毒。4、过滤除菌：是将液体或气体用微孔薄膜过滤，使大于孔径的细菌等微生物颗粒阻留，从而到达除菌目的。在体外培养时，过滤除菌大多用于遇热容易变性而失效的试剂或培养液。目前，大多实验室采用微孔滤

16、膜滤器除菌。关键步骤是安装滤膜及无菌过滤过程。二化学消毒：新洁而灭，其 0.1水溶液可对器械、皮肤、操作外表进展擦拭和浸泡消毒。三抗生素消毒：抗生素主要用于消毒培养液，是培养过程中预防微生物污染的重要手段，也是微生物污染不严重时的急救方法。不同抗生素杀灭微生物不同，应根据需要选择。可用于细胞培养的消毒灭菌方法很多，但每种方法都有一定的适应围。如常用的过滤除菌系统、紫外照射、电子杀菌灯、乳酸、甲醛熏蒸等手段消毒实验室空气；多用新洁而灭消毒实验室地面；常用干热、湿热消毒剂浸泡、紫外照射等方法消毒培养用器皿；采用高压蒸汽灭菌或过滤除菌方法消毒培养液。第二章细胞培养液现代生物技术均通过细胞作为载体来进

17、展，无论是基因治疗、干细胞、克隆技术都在细胞进展的。细胞的生长需要一定的营养环境，用于维持细胞生长的营养基质称为培养基，即指所有用于各种目的的体外培养、保存细胞用的物质，就其本意上讲为人工模拟体生长的营养环境，使细胞在此环境中有生长和繁殖的能力。它是提供细胞营养和促进细胞生长增殖的物质根底。细胞培养基其组成成分主要有：水、氨基酸、维生素、碳水化合物、无机离子及其他一些入核酸降解物、激素等。随着动物细胞大规模培养技术的迅速开展，作为细胞培养领域中最根本的原料细胞培养基的用量也迅速增加，被广泛应用于细胞生物学科和医学研究的各个领域，如疫苗生产人用疫苗如乙脑、狂犬、甲肝、乙肝、出血热、麻疹等，兽用疫

18、苗如口蹄、马立克、伪狂犬等，基因药物生产如 EPO、TPA 等，临床用单抗如抗人肝癌单抗、抗人肺单抗、WT3等。第一节水与平衡盐溶液 1、培养用水:体外培养的细胞对水质特别敏感，对水的纯度要求较高。培养用水中如果含有一些杂质，即使含量极微，有时也会影响细胞的存活和生长，甚至导致细胞死亡。用金属蒸馏器制备的蒸馏水，可能会含有*些金属离子，-一般不作为培养用水。配制培养用液应使用经石英玻璃蒸馏器三次蒸馏的三蒸水或超纯水净化装置制备的超纯水。最好用龙头瓶贮存，存放时间一般不应超过 2 周。2、缓冲溶液、生理盐水、平衡盐溶液：稍后介绍。第二节细胞培养基的根本要求体外培养的细胞直接生活在培养基中，因此培

19、养基应能满足细胞对营养成分、促生长因子、激素、渗透压、pH 等诸多方面的要求。一、营养成分维持细胞生长的营养条件一般包括以下几个方面：1、氨基酸：是细胞合成蛋白质的原料。所有细胞都需要 12 种必须氨基酸：缬氨酸、亮、异亮、赖、色、苯丙、蛋、组、酪、精氨酸、胱氨酸。此外还需要谷氨酰胺，它在细胞代过程中有重要作用，所含的氮是核酸中嘌令和嘧啶合成的来源，同样也是合成三、二、一磷酸酰苷所需要的根本物质。体外培养的各种培养基都含有必需氨基酸。2、单糖：培养中的细胞可以进展有氧与无氧酵解，六碳糖是主要能源。此外六碳糖也是合成*些氨基酸、脂肪、核酸的原料。细胞对葡萄糖的吸收能力最高，半乳糖最低。体外培养动

20、物细胞时，几乎所有的培养基或培养液中都以葡萄糖作为必含的能源物质。3、维生素：主要扮演辅酶、辅基的角色，必不可少。生物素、叶酸、烟酰胺、泛酸、吡哆醇、核黄素、硫胺素、维生素 B12 都是培养基常有的成分。4、无机离子与微量元素：细胞生长除需要钠、钾、钙、镁、氮和磷等根本元素，还需要微量元素，如铁、锌、硒、铜、锰、钼、钒等。二、促生长因子及激素已证实：各种激素、生长因子对于维持细胞的功能、保持细胞的状态分化或未分化具有十分重要的作用。有些激素对许多细胞生长有促生长作用，如胰岛素，它能促进细胞利用葡萄糖和氨基酸。有些激素对*一类细胞有明显促进作用，如氢化可的松可促进表皮细胞的生长，泌乳素有促进乳腺

21、上皮细胞生长作用等。三、渗透压细胞必须生活在等渗环境中，大多数培养细胞对渗透压有一定耐受性。人血浆渗透压 290mOsm/kg,可视为培养人体细胞的理想渗透压。鼠细胞渗透压在 320mOsm/kg 左右。对于大多数哺乳动物细胞，渗透压在 260320mOsm/kg 的围都适宜。四、pH 气体也是细胞生存的必需条件之一，所需气体丰要是氧和二氧化碳。氧参与三羧酸循环，产生能量供给细胞生长、增殖和合成各种成分。一些细胞在缺氧情况下，借糖酵解也可获取能量，但多数细胞缺氧不能生存。在开放培养时，一般置细胞于 95空气加 5二氧化碳的混合气体环境中培养。二氧化碳既是细胞代产物，也是细胞所需成分，它主要与维

22、持培养基的 pH 有直接关系。动物细胞大多数需要轻微的碱性条件，pH 值约在 7 27 4在细胞生长过程中，随细胞数量的增多和代活动的加强，二氧化碳不断被释放，培养液变酸，PH 值发生变化。由于 NaHCO3容易分解为二氧化碳，很不稳定，致使缓冲系统难以准确地控制。故这一缓冲系统适合密闭培养。HEPES 结合碳酸氢钠使用，可提供更有效的缓冲体系，主要是防止 pH 值迅速变动，但最大缺点是在开放培养或观察时难以维持正常的 pH 值。造成pH 波动主要是代产生的 CO2，在封闭式培养过程中 CO2与水结合产生碳酸，培养基 pH 很快下降。为解决这一问题，合成培养基中使用了 NaHCO3-CO2缓冲

23、系统，并采用开放培养，使细胞代产生的 CO2及时溢出培养瓶，再通过稳定调节温箱中 CO2浓度 5，与培养基中的 NaHCO3处于平衡状态。五、无毒、无污染体外生长的细胞对微生物及一些有害有毒物质没有抵抗能力，因此培养基应到达无化学物质污染、无微生物污染如细菌、真菌、支原体、病毒等、无其他对细胞产生损伤作用的生物活性物质污染如抗体、补体。对于天然培养基，污染主要来源于取材过程及生物材料本身，应当严格选材，严格操作。对于合成培养基，污染主要来源于配制过程，配制所用的水，器皿应十分干净，配制后应严格过滤除菌。第三节天然细胞培养基天然培养基是指来自动物体液或利用组织别离提取的一类培养基，如血浆、血清、

24、淋巴液、鸡胚浸出液等。组织培养技术建立早期，体外培养细胞都是利用天然培养基。但是由于天然培养基制作过程复杂、批间差异大，因此逐渐为合成培养基所替代。目前广泛使用的天然培养基是血清，另外各种组织提取液、促进细胞贴壁的胶原类物质在培养*些特殊细胞也是必不可少。一、血清(serum)细胞培养的开展，培养基的质量又是关键，而培养基的主要成份中动物血清对细胞的生长繁殖发挥着重要甚至是难以替代的作用。在动物血清的应-用中牛血清又是最为广泛的，所以血清是医药生物技术产品中重要的原材料之一。保证血清质量也是促进生物制品质量提高的重要环节。1、血清种类:目前用于组织培养的血清主要是牛血清，培养*些特殊细胞也用人

25、血清、马血清等。选择用牛血清培养细胞的原因：来源充足、制备技术成熟、经过长时间的应用考验人们对其有比拟深入的理解。牛血清对绝大多数哺乳动物细胞都是适合的，但并不排除在培养*种细胞时使用其他动物血清更适宜。牛血清是细胞培养中用量最大的天然培养基，含有丰富的细胞生长必须的营养成份，具有极为重要的功能。牛血清分为小牛血清、新牛血清、胎牛血清。胎牛血清应取自剖腹产的胎牛；新牛血清取自出生 24 小时之的新生牛；小牛血清取自出生 1030 天的小牛。显然，胎牛血清是品质最高的，因为胎牛还未接触外界，血清中所含的抗体、补体等对细胞有害的成分最少。2、血清的主要成分:血清是由血浆去除纤维蛋白而形成的一种很复

26、杂的混合物，其组成成份虽大局部，但还有一局部尚不清楚，且血清组成及含量常随供血动物的性别、年龄、生理条件和营养条件不同而异。血清中含有各种血浆蛋白、多肽、脂肪、碳水化合物、生长因子、激素、无机物等，这些物质对促进细胞生长或抑制生长活性是到达生理平衡的。对血清的成分和作用的研究虽有很大进展，但仍存在一些问题。主要是：第一:血清的成份可能有几百种之多，目前对其准确的成份、含量及其作用机制仍不清楚，尤其是对其中一些多肽类生长因子、激素和脂类等尚未充分认识，这给研究工作带来许多困难；第二:血清都是批量生产，各批量之间差异很大，而且血清保存期至多一年，因此，要保证每批血清的相似性极为困难，从而使实验的标

27、准化和连续性受到限制；第三:不能排除血清中含有易变物质，这被认为是瓶中恶化的原因之一。3、血清主要作用：提供根本营养物质：氨基酸、维生素、无机物、脂类物质、核酸衍生物等，是细胞生长必须的物质。提供激素和各种生长因子：胰岛素、肾上腺皮质激素氢化可的松、地塞米松、类固醇激素雌二醇、睾酮、孕酮等。生长因子如成纤维细胞生长因子、表皮生长因子、血小板生长因子等。提供结合蛋白：结合蛋白作用是携带重要地低分子量物质，如白蛋白携带维生素、脂肪、以及激素等，转铁蛋白携带铁。结合蛋白在细胞代过程中起重要作用。提供促接触和伸展因子使细胞贴壁免受机械损伤。对培养中的细胞起到*些保护作用：有一些细胞，如皮细胞、骨髓样细

28、胞可以释放蛋白酶，血清中含有抗蛋白酶成分，起到中和作用。这种作用是偶然发现的，现在则有目的的使用血清来终止胰蛋白酶的消化作用。因为胰蛋白酶已经被广泛用于贴壁细胞的消化传代。血清蛋白形成了血清的粘度，可以保护细胞免受机械损伤，特别是在悬浮培养搅拌时，粘度起到重要作用。血清还含有一些微量元素和离子，他们在代解毒中起重要作用，如 SeO3,硒等。4、细胞培养中使用血清的缺点血清成分复杂，虽含许多对细胞有利成分，也含有对细胞有害的成分，使血清有几个明显的缺点：对大多数细胞，在体状态，血清不是它们接触的生理学液体，只是在损伤愈合以及血液凝固过程中才接触血清，因此使用血清有可能改变*种细胞在体的正常状态，

29、血清可能促进*些细胞的生长成纤维细胞同时抑制另一类细胞生长表皮细胞。血清含一些对细胞产生毒性的物质，如多胺氧化酶，能与来自高度繁殖细胞的多胺反响如精胺、亚精胺形成有细胞毒性作用的聚精胺。补体、抗体、细菌毒素等都会影响细胞生长，甚至造成细胞死亡。动物个体不同，血清产地、批号不同，每批质量差异甚大，其成分不能保持一致。取材中可能带入支原体、病毒，对细胞产生潜在影响，可能导致实验失败或实验结果不可靠性。血清的使用使得实验和生产的标准化困难，其中的蛋白质使得*些转基因蛋白生物药品生产中别离纯化工作很难完成。大规模生产中，血清来源越来越困难，价格昂贵，是构成动物细胞培养对生产本钱的主要局部之一。5、血清

30、的质量标准:血清质量上下取决于两方面因素：一是取材对象，二是取材过程。用于取材的动物应安康无病并且在指定的出生天数之，取材过程应严格按照操作规程执行，制备出的血清要经过严格的质量鉴定。WHO 公布的用动物细胞体外培养生产生物制品规程中的要求：牛血清必须来自有文件证明无牛海绵状脑病的牛群或国家。并应具备适当的监测系统。有些国家还要求牛血清来自-未用过反刍动物蛋白饲料的牛群。证明所用牛血清中不含对所生产疫苗病毒的抑制物。血清要通过滤膜过滤除菌，保证无菌。无细菌、霉菌、支原体和病毒的污染，有些国家要求无细菌噬菌体污染。对细胞有良好的支持繁殖作用。我国在对牛血清的质量 2000 年版中国生物制品主要原

31、辅料质控标准中提出比拟严格的标准要求。包括蛋白质含量，细菌、真菌、支原体、牛病毒、大肠杆菌噬菌体、细菌毒素，支持细胞增殖检查。血清质量的鉴定一般包括以下几个方面：理化性质：如渗透压、pH 值、蛋白电泳图谱、蛋白含量、激素水平、毒素等。蛋白含量包括血清总蛋白含量不低于 35-45g/L、球蛋白含量应小于 20g/L)、血红蛋白含量等。其中球蛋白含量是一项非常重要的指标，血清中球蛋白主要是抗体，球蛋白含量越低血清质量越高。血红蛋白也是越低越好。微生物检测：包括细菌、真菌、支原体、病毒等。特别是对支原体、病毒的检测，支原体是一种很小的微生物，可通过孔径 22u 的滤膜。支原体、病毒污染在光学显微镜下

32、难于发觉，细胞也能生长繁殖，但会影响实验结果。检测支原体的方法很多，如培养法、PCR 法、荧光染色法、电镜观察法等。促生长效果：这是血清重要的特性之一，应当以培养的细胞来检测。有两种方法：克隆形成率、贴瓶率测定法和连续传代培养法。(1)克隆形成率测定：一般以悬浮生长的细胞为培养对象，按有限稀释法做克隆化培养，将不同批号的血清配制成不同浓度的培养基，细胞也稀释成不同浓度，接种到 96 孔板，每孔 200ul，培养一定时间，统计有克隆生长的孔，计算出百分比，再与对照的标准血清相比拟，就可看出不同批号血清间的区别。比拟低的浓度，更能观察出血清质量间的细微差异。(2)贴瓶率测定：是以贴壁细胞为培养对象

33、，将细胞稀释至低密度，接种至平皿，每皿 200 或 100 个细胞，以不同浓度的血清培养基培养，培养一定时间后弃培养基，染色后统计集落数，计算出集落数占接种细胞数的百分比，同样再与标准血清比拟，判断血清质量上下。(3)连续传代培养法：是将细胞培养于 3 个一定体积的培养瓶中，待测血清配制为 5浓度，一般于第七天收集细胞，计数，取平均值，中间可以更换一次培养基。连续测试三个周期以上，观察细胞生长状况，并将每次的计数结果与标准血清的测试结果比拟。对于使用者，判断血清质量先从外观入手。好的血清应该是透明清亮，土黄色或棕黄色，无沉淀或极少沉淀，比拟粘稠。如发现血清浑浊、不透明、含许多沉淀物，说明血清污

34、染或血清中的蛋白质变性；假设血清呈棕红色，说明血清中的血红蛋白含量太高，取材时有溶血现象；如果摇晃时感觉液体稀薄，说明血清中掺入的生理盐水太多。如果要进一步了解血清的质量，则应连续培养*些细胞，观察细胞生长状况。6、血清的使用与储存:正确的使用及保存血清，才能使血清发挥应有的作用。使用前处理：大局部血清在使用前必须灭活处理，即5630 分钟。灭活的目的是去除血清中的补体成分，防止补体对细胞产生毒性作用。血清经过灭活也会损失一些对细胞有利的成分，如生长因子，因此也有人提出血清不经灭活直接用于培养，这样做的前提是确认血清中不含补体成分。对于一些品质高的胎牛血清和新牛血清可以考虑不经灭活直接用于细胞

35、培养。储存条件：血清一般储存于20，同时应防止反复冻融。购置大包装的血清后，首先要灭活处理，然后分装成小包装，储存于20，使用前融化。融化时最好现置于 4。融化后的血清在 4不宜长时间存放，应尽快使用。使用浓度：自从有了合成培养基，血清就是作为一种添加成分与合成培养基混合使用，使用浓度一般为 520，最常用是 10。过多血清容易使培养中的细胞发生变化，特别是一些二倍体的无限细胞系，迅速生长之后容易发生恶性转化。采购血清时，最好先从供给商处索取样品进展试验，选定一批后就要保存足够使用 6 个月至 1 年的量，直至用另一批经过预先试验的样品代替。二、胚胎浸出液胚胎浸出液(embryonic e*t

36、ract)是早期动物细胞培养中应用的天然培养基，现已很少使用。三、水解乳蛋白水解乳蛋白(lactalbumin hydrolysate)为乳白蛋白经蛋白酶和肽酶水解的产物，含有丰富的氨基酸，是常用的天然培养基，可用于许多细胞和原代细胞的培养。第四节合成细胞培养基合成培养基是根据天然培养基的成分，用化学物质模拟合成、人工设计、配制的培养基。它有一定的配方，是一种理想的培养基。目-前合成培养基多达 10 多余种，有的培养基仍在不断进展改进。早期组织培养是利用天然培养基，目前合成培养基已经成为一种标准化的商品，从最初的根本培养基开展到无血清培养基、无蛋白培养基，并且还在不断开展。合成培养基的出现极大

37、的促进了组织培养技术的普及开展。一、根本组分根本培养基包括四大类物质：无机盐、氨基酸、维生素、碳水化合物。无机盐：CaCl2KCl MgSO4NaCl NaHCO3NaH2PO4。对调节细胞渗透压、*些酶的活性及溶液的酸碱度都是必须的。氨基酸：缬氨酸、亮、异亮、赖、色、苯丙、蛋、组、酪、精氨酸、胱氨酸(L 型)。它们都是细胞用以合成蛋白质的必需原料，不能由其他氨基酸或糖类转化合成。除此之外，还需要谷氨酰胺(glutamine)。谷氨酰胺具有特殊的作用，对细胞的培养特别重要，能促进各种氨基酸进入细胞膜；它所含的氮是核酸中嘌呤和嘧啶的来源，还是合成磷酸腺苷、二磷酸腺甘和三磷酸腺苷的原料。细胞需要谷

38、氨酰胺合成核酸和蛋白质，谷氨酰胺缺乏可导致细胞生长不良甚至死亡。在配制各种培养液中都应补加一定量的谷氨酰胺。值得注意的是：谷氨酰胺在溶液中很不稳定，故 4下放置 1 周可分解 50%，使用中最好单独配制，置-20冰箱中保存，用前参加培养液中。维生素：是维持细胞生长的一种生物活性物质，在细胞多形成酶的辅基或辅酶，对细胞代有重大影响。脂溶性维生素(A、D、E、K)常从血清中得到补充。水溶性维生素包括牛物素、叶酸、烟酰胺、泛酸、吡哆醇、核黄素、硫胺素和 B12。维生素 C 也是不可缺少的，对具有合成胶原能力的细胞更为重要。碳水化合物：是细胞生命的能量来源，有的是合成蛋白质和核酸的成分。主要有葡萄糖、

39、核糖、脱氧核糖和丙酮酸钠等。体外培养动物细胞时，几乎所有培养基或培养液中都以葡萄糖作为必含的能源物质。葡萄糖和谷胺酰胺的合理使用：乳酸是葡萄糖不完全氧化的产物。研究说明，体外培养条件下 95的葡萄糖转变为乳酸，这降低了营养物质的代效率，降低培养基 pH 值，增加渗透压。在氧气供给缺乏的情况下，NADH 转运系统苹果酸天冬氨酸穿梭系统活性低而不能将糖酵解产生的 NADH 氧化磷酸化为 NAD+，细胞只得以降低能量需求的方式如激活乳酸脱氢酶将糖酵解产生的丙酮酸与NADH反响生产乳酸和NAD+，从而保证了糖酵解的顺利进展。另一个可能的解释是连接糖酵解与 TCA 循环的特异性酶如丙酮酸脱氢酶复合物、磷

40、酸丙酮酸羧化酶激酶和丙酮酸羧化酶活性低下，直接导致糖酵解与 TCA 循环的失衡。因此体外培养条件下，葡萄糖主要经糖酵解降解，产生过量的乳酸。减少乳酸生产最常用的方法是限制培养基中葡萄糖的含量，但葡萄糖含量过低可造成细胞营养供给缺乏，细胞生长抑制。该方法需要对葡萄糖的消耗与需求、乳酸的生产速率以及目的蛋白的表达量等参数进展综合考虑方可应用。在目前常用的培养基中，葡萄糖和谷胺酰胺是体外培养动物细胞的主要能源，其能量代通路与体完全不同，表现为葡萄糖主要经糖酵解途径为细胞提供能量，谷胺酰胺大局部通过不完全氧化途径，另一小局部通过完全氧化为细胞供能。因此，适当的调整细胞的代途径，使之能促进细胞的快速生长

41、和产物合成，同时减少代抑制物的生成是行之有效的一种策略。许多动物细胞如 CHO、BHK 和杂交瘤细胞对营养物质葡萄糖和谷氨酰胺的消耗利用很快。然而对于细胞生长而言，二者的快速利用并非细胞必需；相反相当一局部转化为代废物乳酸和氨，以及一些非必需氨基酸如丙氨酸，脯氨酸。其中，乳酸和氨是两种主要代废物，其积累可影响细胞生长以及产品质量。减少这两种代产物的积累，是大规模细胞培养技术研究的重要方向。氨是由谷氨酰胺和天冬酰胺产生的。限制培养基中谷氨酰胺的含量亦是减少氨生成的常用方法。除了以上与细胞生长有关的物质以外，培养基中一般还要参加酚红当溶液酸性时 pH 小于 6.8 呈黄色；当溶液碱性时 pH 大于

42、 8.4 呈红色，一种 pH 指示剂。在较为复杂的培养液中还包括核酸降解物(如嘌呤和嘧啶两类)以及氧化复原剂(如谷胱甘肽)等。有的培养液还直接采用了三磷酸腺苷和辅酶 A。二、常用细胞培养基(1)MEM 细胞培养基系列(2)DMEM细胞培养基系列(3)RPMI-1640 细胞培养基系列(4)199 细胞培养基系列(5)水解乳蛋白细胞培养基(6)欧氏平衡盐(7)F-10,F-12 细胞培养基系列(8)其它类型细胞培养基三、干粉培养基的配制配制培养基要注意以下问题：认真阅读说明书。说明书都注明干粉不包含的成分，-常见的有 NaHCO3、谷氨酰胺、丙酮酸钠、HEPES 等。这些成分有些是必须添加的，如

43、 NaHCO3、谷氨酰胺，有些根据实验需要决定。配制是要保证充分溶解，NaHCO3、谷氨酰胺等物质都要等培养基完全溶解之后才能添加。配制所用的水应是三蒸水，离子浓度很低。所用器皿应严格消毒。配制好的培养基应马上过滤，无菌保存于 4 度。液体培养基主要是为了科研工作的方便而设计的培养基，它是一种灭菌后保证无菌的溶液，必要时可制成无毒素等的溶液，可节省科研人员的工作量。配制方法在一个尽可能接近总体积的容器中参加比预期培养基总体积少 5的双蒸水。在室温20到 30的水中参加干粉培养基，轻轻搅拌，不要加热。水洗包装袋的部，转移全部的痕量干粉到容器。加 NaHCO3到培养基中。用双蒸水稀释到想要的体积，

44、搅拌溶解。注意不要过分搅拌。通过缓慢搅拌参加 1N NaOH 或 1N HCL 调节 pH值，由于 pH 值在过滤时会上升 0.1 到 0.3，因而调节 pH 值使它比最终想要的 pH 值低 0.2到 0.3。培养基在过滤前要保持密封。第五节无血清技术及其培养基经历了天然培养基、合成培养基后，无血清培养基和无血清培养成为当今细胞培养领域的一大趋势。采用无血清培养可降低生产本钱，简化别离纯化步骤，防止病毒污染造成的危害。无血清培养基(serum free medium,SFM):是不需要添加血清就可以维持细胞在体外较长时间生长繁殖的合成培养基。但是它们可能包含个别蛋白或大量蛋白组分。虽然根底培养

45、基加少量血清所配制的完全培养基可以满足大局部细胞培养的要求，但对有些实验却不适合，如观察一种生长因子对*种细胞的作用，这时需要排除其他生长因子的干扰作用。而血清中可能含有各种生长因子；又如需要测定*种细胞在培养过程中分泌*种物质抗体、生长因子的能力；或者要大规模的培养*种细胞，以获得它们的分泌产物。因此研制出无血清培养基一直是生物科学工作者努力的目标。恒利安生物科技已成功开发了商业化的多种无血清培养基，可满足众多厂商的需求。一、无血清培养基的根本配方:根本成分为根底培养基及添加组分两大局部。用于生物制药和疫苗生产的细胞在体外培养时，多数呈贴壁生长或兼性贴壁生长；而当其在无血清、无蛋白培养基中生

46、长时，由于缺乏血清中的各种粘附贴壁因子如纤粘连蛋白、层粘连蛋白、胶原、玻表粘连蛋白，细胞往往以悬浮形式生长。添加组分包括以下几大类物质：(1促贴壁物质：许多细胞必须贴壁才能生长，这种情况下无血清培养基中一定要添加促贴壁和扩展因子，一般为细胞外基质，如纤连蛋白、层粘连蛋白等。它们还是重要的分裂素以及维持正常细胞功能的分化因子，对许多细胞的繁殖和分化，起着重要作用。纤连蛋白主要促进来自中胚层细胞的贴壁与分化，这些细胞包括成纤维细胞、肉瘤细胞、粒细胞、肾上皮细胞、肾上腺皮质细胞、CHO 细胞、成肌细胞等。(2促生长因子及激素：针对不同细胞添加不同的生长因子。激素也是刺激细胞生长、维持细胞功能的重要物

47、质，有些激素是许多细胞必不可少的，如胰岛素。(3酶抑制剂：培养贴壁生长的细胞，需要用胰酶消化传代，在无血清培养基中必不可少须含酶抑制剂，以终止酶的消化作用，到达保护细胞的目的。最常用的是大豆胰酶；抑制剂。(4结合蛋白和转运蛋白：常见如转铁蛋白和牛血清白蛋白。牛血清白蛋白的添加比拟大，可增加培养基的粘度，保护细胞免受机械损伤。许多旋转式培养的无血清培养基都含有牛血清白蛋白。(5)微量元素：硒是最常见的。二、使用方法:目前，血清仍是动物细胞培养中最根本的的添加物，尤其是在原代培养或者细胞生长状况不良时，常常会先使用有血清的培养液进展培养，待细胞生长旺盛以后，再换成无血清培养液。细胞转入无血清培养基

48、培养要有一个适应过程，一般要逐步降低血清浓度，从 10%减少到 5%，3%，1%，直至无血清培养。在降低过程中要注意观察细胞形态是否发生变化，是否有局部细胞死亡，存活细胞是否还保持原有的功能和生物学特性等。在实验后这些细胞一般不再继续保存，很少有细胞能够长期培养于无血清培养基而不发生改变的。细胞转入无血清培养之前，要留有种子细胞，种子细胞按常规培养于含血清的培养基中，以保证细胞的特性不发生变化。为了使细胞适应无血清培养，关键的是使所培养细胞：处于对数生长中期90%活细胞率适应时以较高的起始细胞接种有两种方法使细胞适应无血清培养基SFM:1、直接适应细胞从-添加血清的培养基转换到无血清培养基SF

49、M中。一些类型细胞可直接从包含血清的培养基适应无血清培养基。对于直接适应，接种细胞密度应该:2.51053.5105细胞/ml。当细胞密度到达 11063106细胞/ml 时，传代培养细胞。当细胞密度在培养 4 到 7 天后到达 21064106细胞/ml 时，细胞完全适应了无血清培养基。每隔 35 天，当细胞密度到达 11063106细胞/ml，细胞活率在 90时，贮备的适应了无血清培养基的细胞培养物应该再次传代培养。2、连续适应分好几步把细胞从添加血清的培养基转换到无血清培养基SFM中，与直接适应相比拟，连续适应趋向对于细胞更加温和一些。以 2 倍正常接种密度接种生长活泼的细胞培养物到 7

50、5%有血清培养基：25SFM 混合培养基中，传代培养。当细胞密度5105细胞/ml 时，以 2105到 3105细胞/ml 细胞密度，在有血清培养基：SFM 为 5050 的混合培养基中传代培养。以 2106到 3106细胞/ml 细胞密度，25有血清培养基和 75%SFM 中传代培养。当细胞密度到达 1106到 3106细胞/ml接种后 4 到 6天，在 100SFM 培养基中传代培养。每隔 3 到 5 天，当细胞密度到达 1106到 3106细胞/ml，细胞活率在 90时，贮备的适应了无血清培养基的细胞培养物应该再次传代培养。建议备份前一次混合培养的培养物，直到每一次细胞适应了新的混合培养