质粒DNA的小量提取及DNA琼脂糖凝胶电泳实验报告.pdf

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1、-.z.质粒DNA的小量提取及DNA琼脂糖凝胶电泳 一、前言 质粒 质粒是附加到细胞中的非细胞的染色体或核区 DNA 原有的能够自主复制的较小的 DNA 分子(即细胞附殖粒、又胞附殖粒)。大部分的质粒虽然都是环状构型，它存在于许多细菌以及酵母菌等生物（多为原核生物）中，乃至于植物的线粒体等胞器中。然而，1984 年，在Streptomyces coelicoler(天蓝色链霉菌)等放线菌以及在 Borrelia hermsii(赫氏蜱疏螺旋体)等原核生物中，又相继发现线形质粒。天然质粒的 DNA 长度从数千碱基对至数十万碱基对都有。质粒天然存在于这些生物里面，有时候一个细胞里面可以同时有一种乃

2、至于数种的质粒同时存在。质粒的套数在细胞里从单一到数千都有可能。有时有些质粒含有*种抗药基因(如大肠杆菌中就有含有抗四环素基因的质粒)。有一些质粒携带的基因则可以赋予细胞额外的生理代谢能力，乃至于在一些细菌中提高它的致病力。一般来说，质粒的存在与否对宿主细胞生存没有决定性的作用。它是基因工程最常见的运载体。质粒在细胞内的复制一般有两种类型:紧密控制型和松弛控制型。前者只在细胞周期的一定阶段进行复制，当染色体不复制时，它也不能复制，通常每个细胞内只含有一个或几个质粒分子，如 F 因子。后者的质粒在整个细胞周期中随时可以复制，在每个细胞中有许多拷贝，-.z.一般在 20 个以上，如 Col E1

3、质粒。在使用蛋白质合成抑制剂-氯霉素时，细胞内蛋白质合成、染色体 DNA 复制和细胞分裂均受到抑制，紧密型质粒复制停止，而松弛型质粒继续复制，质粒拷贝数可由原来20 多个扩增至 1000-3000 个，此时质粒 DNA 占总 DNA 的含量可由原来的 2%增加至 40-50%。把一个有用的目的 DNA 片段通过重组 DNA 技术，送进受体细胞中去进行繁殖和表达的工具叫载体。细菌质粒是重组 DNA 技术中常用的载体。质粒分子本身是含有复制功能的遗传结构。质粒还带有*些遗传信息，所以会赋予宿主细胞一些遗传性状。其自我复制能力及所携带的遗传信息在重组 DNA 操作，如扩增、筛选过程中都是极为有用的。

4、质粒载体是在天然质粒的基础上为适应实验室操作而进行人工构建的。与天然质粒相比，质粒载体通常带有一个或一个以上的选择性标记基因(如抗生素抗性基因)和一个人工合成的含有多个限制性内切酶识别位点的多克隆位点序列，并去掉了大部分非必需序列，使分子量尽可能减少，以便于基因工程操作。大多质粒载体带有一些多用途的辅助序列，这些用途包括通过组织化学方法肉眼鉴定重组克隆、产生用于序列测定的单链 DNA、体外转录外源 DNA 序列、鉴定片段的插入方向、外源基因的大量表达等。一个理想的克隆载体大致应有下列一些特性:分子量小、多拷贝、松弛控制型;具有多种常用的限制性内切酶的单切点;能插入较大的外源 DNA 片段;具有

5、两个以上的遗传标记物，便于鉴定和筛选。对宿主细胞无害。常用的质-.z.粒载体大小一般在 1kb 至 10kb 之间，如 PBR322、PUC 系列、PGEM系列和 pBluescript(简称 pBS)等。质粒的不兼容性 利用同一复制系统的不同质粒不能在同一宿主细胞中共同存在，当两种质粒同时导入同一细胞时，它们在复制及随后分配到子细胞的过程中彼此竞争，在一些细胞中，一种质粒占优势，而在另一些细胞中另一种质粒却占上风。当细胞生长几代后，占少数的质粒将会丢失，因而在细胞后代中只有两种质粒的一种，这种现象称质粒的不相容性。琼脂糖凝胶 从琼脂中除去带电荷的琼脂胶后，剩下的不含磺酸基团、羧酸基团等带电荷

6、基团的中性部分，结构是链状的聚半乳糖，易溶于沸水，冷却后可依靠糖基间的氢键引力形成网状结构的凝胶。凝胶的网孔大小和凝胶的机械强度取决于琼脂糖浓度。因此琼脂糖凝胶可作为分子筛，常用于凝胶层析和电泳。从琼脂中除去带电荷的琼脂胶后，剩下的不含磺酸基团、羧酸基团等带电荷基团的中性部分，结构是链状的聚半乳糖，易溶于沸水，冷却后可依靠糖基间的氢键引力形成网状结构的凝胶。凝胶的网孔大小和凝胶的机械强度取决于琼脂糖浓度。因此琼脂糖凝胶可作为分子筛，常用于凝胶层析和电泳。琼脂糖凝胶电泳 琼脂糖凝胶电泳是用琼脂糖作支持介质的一种电泳方法。其分析原理与其他支持物电泳最主要区别是:它兼有分子筛和电泳的双重作用。-.z

7、.琼脂糖凝胶具有网络结构，物质分子通过时会受到阻力，大分子物质在涌动时受到的阻力大，因此在凝胶电泳中，带电颗粒的分离不仅取决于净电荷的性质和数量，而且还取决于分子大小，这就大大提高了分辨能力。但由于其孔径相比于蛋白质太小，对大多数蛋白质来说其分子筛效应微不足道，现广泛应用于核酸的研究中。蛋白质和核酸会根据 pH 不同带有不同电荷，在电场中受力大小不同，因此跑的速度不同，根据这个原理可将其分开。电泳缓冲液的pH 在 69 之间，离子强度 0.020.05 为最适。常用 1%的琼脂糖作为电泳支持物。琼脂糖凝胶约可区分相差 100bp 的 DNA 片段，其分辨率虽比聚丙烯酰胺凝胶低，但它制备容易，分

8、离*围广。普通琼脂糖凝胶分离 DNA 的*围为 0.2-20kb，利用脉冲电泳，可分离高达 107bp的 DNA 片段。DNA 分子在琼脂糖凝胶中泳动时有电荷效应和分子筛效应。DNA 分子在高于等电点的 pH 溶液中带负电荷，在电场中向正极移动。由于糖-磷酸骨架在结构上的重复性质，相同数量的双链 DNA 几乎具有等量的净电荷，因此它们能以同样的速率向正极方向移动。二、实验目的 1.学习和掌握碱裂解法提取质粒 DNA 2.学习和掌握琼脂糖凝胶电泳的原理和基本操作。三、实验原理 1.质粒 DNA 的小量提取 碱裂解法是根据共价闭合环状质粒DNA与线性染色体DNA的变-.z.性与复性的差异达到分离的

9、目的。在强碱性条件下，染色体 DNA 的氢键断裂，双螺旋结构解开而变性，质粒 DNA 大部分氢键也断裂，但超螺旋共价闭合环状的两条互补链不会完全分离，彼此互相盘绕，仍会紧密地结合在一起。当将pH 调到中性并有高浓度盐存在时，变性质粒 DNA 又回复到原来的结构保存在溶液中，而染色体 DNA 不能复性，相互缠绕形成不溶性网状结构。通过离心，染色体 DNA 与不稳定的大分子 DNA，蛋白质-SDS复合物等一起沉淀下来而被除去。提取的质粒 DNA 再用酚、氯仿抽提进一步纯化。2.DNA 琼脂糖凝胶电泳 琼脂糖凝胶电泳是最常用的鉴定 DNA 的方法，它简便易行，只需少量 DNA。琼脂糖是一种天然聚合长

10、链状分子，可以形成具有刚性的滤孔，凝胶孔径的大小决定于琼脂糖的浓度。DNA 分子在琼脂糖凝胶中泳动时，有电荷效应与分子筛效应。DNA 分 观察琼脂糖凝胶中 DNA 的最简便方法是利用荧光染料溴乙锭（EB）染色，EB 在紫外灯照射下，发红色荧光，本实验使用 Goldview。四、实验器材和材料试剂 1.实验材料 菌种：含质粒 PET28a 的大肠杆菌 2.实验试剂：-.z.（1）溶液 I：50mmol/L 葡萄糖溶液 25mmol/LTris-Cl(pH8.0)10mmol/LEDTA(pH8.0)（2）溶液 II：0.4mol/L NaOH,2%SDS 用前两者等体积混合，需新鲜配制（3）溶液

11、 III:3mol/L 的乙酸钾（pH4.8）3mol/L 乙酸钾 60ml 冰乙酸 11.5ml 水 28.5ml（4）酚/氯仿试剂：V（酚）：V（氯仿，含 1/24 异戊醇）=1:1（5）TE 缓冲液 10mmol/LTris-Cl(pH7.4-8.0)1mmol/LEDTA(pH8.0)（6）LB 培养基 蛋白胨 10g 酵母浸出粉 5g NaCl 10g 溶解在 1L 水中，调 pH 至 7.2，121高压蒸汽灭菌 20min。（7）氨苄青霉素（Amp）：使用浓度为 50-100ug/ml（8）pH8.0 TAE 缓冲液-.z.（9）凝胶上样缓冲液：0.2%溴酚蓝，50%蔗糖（10）琼

12、脂糖（11）1mg/ml EB 溶液（12）Marker（13）PCR 扩增特异 DNA 片段 3.实验器材：（1）Eppendorf 管（2）移液器（3）恒温培养箱（4）低温高速离心机（5）涡旋混合器（6）水平电泳槽（7）紫外检测仪（8）微波炉（9）水平仪（10）一次性手套（11）锥形瓶（12）量筒（13）tip五、实验操作 质粒 DNA 的小量提取.菌种培养 将含 PET28a 的大肠杆菌接种于 LB（含 Amp）中，37振荡培养过夜。.质粒提取（1）取 1.5ml 培养液倒入 Eppendorf 管中，4,8000rpm，离心5min。（2）弃上清，使细胞沉淀尽可能干燥。-.z.（3）将

13、菌体沉淀悬浮于100ul溶液I中，用涡旋振荡器振荡1min，置冰浴 10min。（4）加 200ul 溶液 II，盖紧管口，快速来回颠倒 3 次，使内容物充分混合，不要振荡，至冰浴中 3min。（5）加 150ul 溶液 III（冰上预冷），盖紧管口，颠倒数次并轻轻振荡混匀，冰浴 5min。（6）4，12000rpm，离心 5min，将上清液移入另一 Eppendorf管中。（7）向上清液中加入等体积酚/氯仿（1:1），用涡旋振荡器振荡 1-2min，4，10000rpm，离心 2min，将上清液移入另一 Eppendorf管中。（8）加入等体积氯仿，重复上面的操作。（9）加入 1/10 体积

14、的 2.5mol/L 乙酸钠，再加 2 倍体积的无水乙醇，混匀后室温放置 5min，4，12000rpm，离心 15min，弃上清，将 Eppendorf 管倒扣在吸水纸上，吸干液体。（10）加1ml70%乙醇振荡漂洗沉淀，4，12000rpm，离心2min，弃上清。（11）将 Eppendorf 管倒扣在吸水纸上，使乙醇流尽，空气中干燥。（12）加 10ulTE 缓冲液，-20保存。DNA 琼脂糖凝胶电泳 1.琼脂糖凝胶的制备-.z.称取 0.45g 琼脂糖，放入锥形瓶中，加入 30ml TAE 缓冲液，保鲜膜封口，置微波炉加热至完全澄清透明取出摇匀，琼脂糖的浓度为1.5%。待琼脂糖凝胶溶液

15、冷却至 50，再加入 1.5ul goldview，使其终浓度为 0.5ug/毫升。2.凝胶板的制备 用制胶器将紫外透光凝胶盘固定好，采用水平仪调整平衡使凝胶盘位于同一水平面。将适宜的梳子垂直架在凝胶盘内槽的一端，使梳齿距玻璃板之间尚有 0.5-1mm 的距离。将冷到 50左右的琼脂糖凝胶，缓缓倒入凝胶盘内槽，厚度适宜（注意不要有气泡）。3.点样 待凝胶凝固后，小心取出梳齿，将凝胶盘放入电泳槽內。加入足够的 TAE 电泳缓冲液，使液面略高出凝胶面。取 5 微升 PCR 扩增产物，向其中加入 1 微升的上样缓冲液，混匀后用移液器将其加入加样孔，记录样品点样次序与点样量。4.电泳 接通电泳槽与电泳

16、仪的电源，调节电压 120V,当溴酚蓝染料移动到距凝胶前沿 1-2cm 处，停止电泳。5.观察 在紫外灯下观察凝胶，有 DNA 处应显出橘红色荧光条带。记录电泳结果。-.z.六、实验结果及分析 1.实验结果：2.实验结果观察：上图中从最左边 marker 开始第 6、7 为我和与我同组的同学的点样结果。可看出第 6 个明显条带亮度要低于旁边的多数条带，但第 7个条带亮度却与旁边的条带相差不多。但这两个均存在很严重的拖带现象。七、实验注意事项 1.加入溶液 II 后快速来回颠倒，不要振荡。2.加入溶液 III 后轻轻振荡。3.吸取上清时切勿吸到中间层。4.倒胶时把握好胶的温度，不要高于 60，否

17、则温度太高会使凝胶盘变形。5.胶一定要凝固好才能拔梳子，方向一定要竖直向上，不要弄坏点样孔。6.点样时枪头下伸，点样孔内不能有气泡。7.在用苯酚、氯仿抽提时应用 TE 缓冲液将原溶液的体积扩大，一般是 200300 微升，以减少 DNA 的损失。8.在加入酚氯仿的步骤中，最好用未高温灭菌的离心管，因为高温过程中可能使管口变形，使得振荡混匀过程中酚氯仿容易溢出。9.溶液 II 不可冷冻,现用现配。10.在加入等量的酚氯仿离心后,离心管内三层物质,从上至下依-.z.次为 DNA 上清液,蛋白质,酚氯仿。11.50%的乙醇可溶解 DNA,故应该极其注意 70%的乙醇是否盖子完好,否则稀释的乙醇有可能

18、将所获得 DNA 溶解掉。八、思考题 1.溶液 I、II、III 的作用分别是什么？溶液 I:由葡萄糖,EDTA,Tris Cl 组成.葡萄糖的作用是增加溶液的粘度,减少抽提过程中的机械剪切作用,防止破坏质粒 DNA;EDTA 的作用是络和掉 Mg2+等二价金属离子,防止 DNA 酶对质粒分子的降解作用;Tris Cl 能使溶菌液维持溶菌作用的最适 PH*围.溶液 II:由 SDS 与 NaOH 组成.SDS 的作用是解聚核蛋白并与蛋白质分子结合使之变性;NaOH(pH12)的作用是破坏氢键,使 DNA 分子变性.溶液 III:由 KAc 与 HAc 组成,是 pH 值为 5.5 的高盐溶液.

19、能中和溶液 II 的碱性,使染色体 DNA 复性而发生缠绕并使质粒 DNA 复性.K+离子会与 SDS 形成溶解度很低的盐并与蛋白质形成沉淀而除去.溶液中的染色体 DNA 也会与蛋白质-SDS 形成相互缠绕的大分子物质,很容易与小分子的质粒 DNA 分离,此外,高盐溶液也有利于各种沉淀的形成.2.为什么加入溶液 II 后不要振荡？因为溶液 II 的作用是细胞裂解液，如果加入 II 液后剧烈摇动，很可能会损坏质粒，造成细菌基因组污染。九、实验结果误差分析及讨论-.z.经过本次实验初步学习了碱裂解法提取质粒 DNA 的方法及操作；初步掌握了琼脂糖凝胶电泳的原理和基本操作。琼脂糖凝胶电泳在遗传学实验

20、室中是经常用到的一种获得或检测验证目的基因方法，本次实验的经验经历，为今后的实验之路打下了坚实的基础。在第六部分中的实验结果中可看出：上图中从最左边 marker 开始第 6、7 为我和与我同组的同学的点样结果。可以看出，这两个条带均存在很严重的拖带现象，说明我们在质粒 DNA 的提取过程中存在不少失误的地方，导致提取的质粒 DNA 片段中存在很多杂质，因此出现了拖带现象。经初步分析可能存在以下几点原因：加入溶液 II 后可能有些许晃动，导致小部分质粒被损坏，产生了许多杂质；同时，可看出第 6 个明显条带亮度要低于旁边的多数条带，但第7 个条带亮度却与旁边的条带相差不多，因此可以得出第 6 个条带在点样时可能由于操作原因，部分样品未进入点样孔中。初步分析认为是在点样时样品注入速度过快，导致部分样品被冲出点样孔；同时由于存在不熟练、手抖的原因，也会导致少部分样品未加进点样孔。在图中同样可看出，还是有部分同学的样品跑出来的效果是不错的，说明在之前的质粒 DNA 提取及点样过程中做的还是相当不错的，因此在实验结束分析过自己的实验结果后，向他们多多请教，学习他们在实验过程中的一些优秀经验，让自己变得更好。