Hagnosa longicapillata gen. nov. sp. nov. 一种室内环境中的新 Sordariaceous Ascomycete and proposal of Hagnosaceae fam. nov..docx
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1、Hagnosa longicapillata,gen. nov., sp. nov.,种室内环境中的新 Sordariaceous Ascomycete9 and proposal of Hagnosaceae fam. nov.抽象Hagnosa longicapillata, gen. nov., sp. nov,用匈牙利提供的木制建筑材料和纯文化进行描述和插图。该物种仅从室内环 境中收集,在那里它很常见。子囊果在一层厚厚的棕色,羊毛状的菌丝体垫中发育。腹膜的骨节区域装饰有五瓣花形冠。Asci 是四胞子的;子囊胞子深褐色,光滑,雾状,在隔膜处不收缩,并且主要通过薄的子囊壁的裂缝释放。显然,
2、子囊胞子被菌丝网 的机械干扰分散。在系统发育树中,Hagcosa样品被放置在基础谱系中,独立于Sordariomycetidae的另一个家族,具有高支 持。为了将Hagcosa放在Sordariales中,提出了新的家族,Hagnosaceae。关键字:胎落满殆室内真菌;抱子扩散.引言室内环境为许多真菌提供了最正确的生长条件。由于基质和宿主的多样性有限,建筑材料上真菌种类的多样性通常远低于户 外。在欧洲,湿式建筑材料通常由变形属(如曲霉而和青霞南)主导。只有相对较少的真菌作为远变体存在于建筑物中。其 中,最常见的属是鹿霸新 Chaetomium, Microascus fl I Ascotri
3、cha,而 Cephalotheca, Myxotrichum, Ceratocystis, Sordaria 和那么不那么常见(根据作者在匈牙利的观察,属按频率降序列出)。室内环境的真菌污染最近己成为一个主要问题。因 此,近几十年来,公众对室内真菌潜在负面影响的认识有所提高,特别是在房主,设施管理人员和保险业中2。由于在房屋中 相对稀少地发现新物种,因此发现不仅吸引了真菌学家的注意,也引起了卫生学家和医生的注意。在研究栖息在室内环境中的真菌期间,在匈牙利发现了一种具有muriform,大胞子的真菌物种,显然属于迄今为止未被 描述的分类群。该真菌在纯培养物中被别离出来,随后在这里被描述为一种新
4、的子囊菌属和种。它与其他子囊菌属的成员形成 比照,基于多位点系统发育和形态学特征。1 .结果系统发育分析为了确定与其他物种的遗传距离并确定我们样品的系统发育位置,基于核糖体区域进行了 BLAST搜索和系统发育推 断。内部转录间隔物(ITS)和大亚基(LSU)都从抱子和纯培养物中扩增并测序。使用ITS和LSU序列的BLAST搜索说明, 我们的别离株属于Sordariomyceteso然而,无论是ITS (69-96%的覆盖率和80-85%的身份)还是LSU (93-100%的覆盖率 和91-94%的身份)都不支持与GenBank数据库中存储的物种的物种水平精确匹配(补充表S1和S2)。为了将我们
5、的别离株 置于Sordariomycetes中,我们用样品的LSU序列扩展了 Hongsanan等人(2017) 3的四基因超矩阵。核苜酸超矩阵由四个 位点(LSU, RPB2, SSU, TEF)的12, 746个排列位点(包括间隙)组成。作为最正确型号,GTR+F + G4被选为LSU, SSU 和TEF,而GTR + F + I + G4被选为RBH2。在系统发育树(图1 )中,我们的标本被放置为基础谱系,独立于具有高支持(80%ML) 的Sordariomycetidae的另一个家族。作为与参考树的不同之处,应该注意的是,在我们的树木重建中,分生他子科和 Cordanaceae不是So
6、rdariomycetidae的一局部。这两个分支甚至没有参考树的支持3。28, Bipolaris Curvularia 27, 28, Stemphylium, Helminthosporium sensu lato 26fll Oncopodiella 28O 有趣的是,这 些真菌与Hagcosa相似,不仅在深色色素沉着方面,而且在具有大而多的抱子方面也是如此。在Hagoosa菌落中,观察到室内真菌物种的多样性惊人地高。最常见的是,在那里发现了双祈虫属,粘菌属,头也菌 样属和具有3-隔膜,条纹状子囊电子的未知子囊菌。曲莓菌和多抱子虫的子囊抱子在菌丝网上也很常见。人们可以推测,相关 真菌可
7、能利用菌丝体垫,为生长提供更有利的小气候条件。相关真菌也可能在分散中利用Hagcosa菌丝体,因为它们的抱子也 可以由弯曲的菌丝发射。还需要进一步的研究来别离和鉴定这些物种,以完成室内环境中生活在旧木料上的真菌的知识。4 .材料和方法隔离从被水损坏的建筑物和地窖中收集了被棕色,羊毛状菌丝体覆盖的木材碎片。使用格瑞辛格GMI 15设备(德国雷姆沙 伊德GHM Messtechnik GmbH)原位测量木制建筑材料(深度约3 cm)的水分含量()。样品用无菌聚乙烯袋运送到实 验室。为了进行微观研究,使用胶带提升法从基质中回收真菌结构(使用MACbond B 1200压敏丙烯酸条,MACtac Eu
8、rope SA, 布鲁塞尔,比利时.)。将胶带轻轻压在2%麦芽提取物琼脂(MEA)的外表上。将1x1厘米的MEA块切出并放置在显微镜载玻 片上。用蔡司Axio成像仪Z1显微镜在x200放大镜下检测MEA外表发生的子囊抱子,并用Wironit针收集在不同的人造培养 基上培养并别离DNAo数码显微照片是用蔡司Axio成像仪Z1显微镜在x400倍放大率下拍摄的,并使用CMEX5 Pro相机和Euromex Imagefocus alphax64软件(Euromex Microscopen Bv, BD,荷兰阿纳姆)进行测量。将真菌结构用自来水安装在载玻片上,用于活状态 29或亚甲蓝的显微镜检查。为了
9、帮助观察,菌丝体通过在胶带.上滚动子果皮来去除。将样品接种到含有0.1g/L氯霉素的麦芽提取物琼脂培养基(MEA;30g/L麦芽提取物,5g/L蛋白陈,15g/L琼脂)中, 并在25。0下孵育14-28天。还对马铃薯葡萄糖琼脂(PDA;39克/升马铃薯葡萄糖琼脂(Difco) , 0.01克/升ZnSO)进行了生 长测试。4-7h2o,0.005克/升铜4-7H2O, pH 5.6);水琼脂培养基(西澳大利亚州;20克/升琼脂);单宁酸琼脂培养基(TAA;3.0 克/升NaNo3,1.0克/升KH2采购订单4, 0.5克/升镁47h2。,0.5克/升钾氯化钾,0.01克/升铁4,7h2o, 1
10、0克 /升单宁酸;30克/升琼脂,pH 4.5) ; 土壤提取物琼脂培养基与MEA或WA (土壤-MEA或土壤-WA;10克过滤灭菌土壤提取物 添加到MEA或WA);蚂蚁废物提取物培养基(0.5克过滤灭菌的蚂蚁废物提取物添加到WA;蚂蚁废物从密泼花和凝金娘判攵集); 木材提取物琼脂培养基(10克过滤灭菌木材提取物添加到MEA中);锯末琼脂(10克细松木实木锯末加入水琼脂中);和MN300 介质(0.8克/升KNO3, 1克/升k2人道4, 0.5克/升镁4.7h2。,0.6克/升氯化钠;0.5克/升酵母提取物,0.5克/升蛋 白陈(内酰胺),1毫升微量营养素溶液;10克/升纤维素粉碎机MN 3
11、00, 15克/升琼脂)。在潮湿的密木瓷砖上也进行了人工 接种(装有无菌蒸饰水的塑料袋)。在工作台上25。(3下放置14天后,通过ImageJ软件版本1.34秒(RGB_Profiler.class插 件)31的“RGB分析”程序30确定菌落颜色。参考菌株保存在匈牙利塞格德大学的塞格德微生物学收臧(SZMC)中。全息图 存放在布达佩斯匈牙利自然历史博物馆(BP)。分子系统发育从天然底物的单个泡子以及天然和纯培养物中别离出DNA.使用Wironit针将子囊胞子转移到PCR管中的20pLMilli-Q 水中。按照OMahony等人(2007)的程序,通过直接PCR从单个子囊抱子中扩增DNA32。首
12、先,使用引物ITS1F/LR5扩 增内部转录间隔物(ITS)和大亚基(LSU) 33, 34。在此PCR之后,我们进行了进一步的反响,分别使用引物ITS1F/ ITS4 33和LR0R / LR5 34将ITS和LSU区域彼此别离。将PCR管放入液氮中约10秒,然后放入95加热的PCR中约20秒。 该过程重复5-10次。在此之后,在95。(3下进行终止步骤3分钟,然后离心。将PCR预混液加入到这些PCR管中。PCR以 50HL的最终体积进行;成分如下:DreamTaq绿色缓冲液(发酵罐)(20 mM MgCI) 2, 5.0 pL) ;dNTPmix (发酵罐)(2 mM, 5.0 |JL);
13、用于 ITS 或 LSU 的引物(0.01 mM, 1.0 pL)淳 Q 水(12.75 pL) ;DreamTaq 聚合酶(发酵素)(5 单位/pL, 0.25 |JL) o在以下条件下进行热循环:94P5.5分钟,94P循环43次18秒,在51。下退火30秒,72P退火45秒,最后 在72y下延伸7分钟。Sanger测序由Eurofins Genomics (GATC服务,德国康斯坦茨)执行。从六项试验中,我们从一个 子囊抱子(M2)和两个含有更多子囊胞子和一些菌丝体(H1和H2)的样品中获得了可贵的序列。我们还使用QIAGEN DNeasyPlant MiniKit从菌株提供的菌丝体中取
14、样DNA,以进行标准DNA提取程序。使用BLASTn检索在GenBank , 2021年5月25日访问)中检索了类似的序列35。我们从 菌株中获得了 ITS和LSU序列,ITS序列用于BLAST搜索,而LSU序列用于基于组合LSU-SSU-TEF-RBP2超矩阵的系统发 育分析。我们使用来自Hongsanan等人的四位点超马提克斯网,将我们的样品分类为一个强大而可靠的系统发育树。这4个位 点分别与MAFFT36的L-INS-I算法对齐。我们使用TrimAI版本1.2 37应用了修剪过程来删除间隙超过80%的区域。使 用IQ-TREE选择适合系统发育分析的替代基质38。IQTREE1.6.123
15、8还使用其快速引导(1000x)选项在最大似然(ML) 标准下进行了系统发育分析,随后搜索最正确树,为每个分区使用所选模型。系统发育树使用FigTree版本可视化。39. 厌 Hagnosa longicapillata (herb no.T726C)在 GenBank 中存入了 LSU 的加入号 OL630146-OL630149 和 ITS 的 OL630154-OL630155o生态实验计算了 Hagcosa的平均抱子大小,并与常见的室内真菌进行了比拟,其中数据来自文献13, 14。长度与宽度的散点图 由R包ggplot2 33.540创立。为了测试真菌和蚂蚁之间的相互作用,在塑料容器(
16、。180 mm,高度60 mm)中构建了实验 性formicu。根据我们的观察(即,Hagcosa和Las/us “gerL.在Gy6ngy6s中共同出现),选择L mjer进行测试。一个刚越 冬的年轻殖民地,包含一个女王,15个工人和几只幼虫,被放置在formcarium的巢室中。培养皿(。60毫米)被用作巢室;它 的底部衬有牙科石膏(匈牙利布达佩斯Fertisol)以保持水分。在培养皿上切割了两个开口,一个在侧侧(。2毫米),一个在 顶部(。5毫米),以允许蚂蚁分别进入和润湿石膏衬里。为了防止内壳蚂蚁逃离容器,在内壁上涂覆了 Fluon (AGC Chemicals America, In
17、c,美国新泽西州Moorestown, USA, Moorestown, USA)作为40 mm宽的带材涂覆在内壁上41。作为食品, 在Eppendorf管中提供40%蔗糖溶液;水被放在另一个容器中。将天然基质(25x10毫米)上的一块真菌群落放置在距离巢室, 食物和供水20毫米的距离处的甲状菌落中。作为对照,还放置了 5毫米长的纺织纤维(80%羊毛,20%尼龙)代替真菌菌落, 以比拟蚂蚁的行为与另一种非真菌来源的纤维状材料。由于L. n/firerworkers相对较小(3-5毫米),另一种蚂蚁,Formica cunicularia Latreille (465毫米),用于测试Hagcos
18、a菌丝附着在蚂蚁身上。将昆虫用蹑子固定,在真菌菌落外表(在天然基 质上)触摸10次,然后在40-400x放大倍率的光学显微镜下进行检查。图1 改编自Hongsanan等人(2017) Sordariomycetes的最大可能性系统发育树3。来自Hagnosa longicapillata的遥远谱系被折叠,括号中的数字代表折叠标本的数量。比例尺意味着每个站点和每个分支的预期核甘酸变化为0.3o仅显示ML引导 支持70%的值。从天然底物(H1和H2)别离的子囊抱子和菌丝体中提取的DNA,从从天然底物(M2)别离的单个子囊抱 子中提取的DNA,从人工培养物中别离出的菌丝体(T726C)。22分类Ha
19、gnosaceae D. Magyar 和 Z. Merenyi fam. nov.陆生生境中木材上的腐生菌。性变型:腹膜性子囊,深棕色至黑色,浅表,基质缺失,卵形,球状至亚球状,托门糖。子 囊抱子,褐色,隔膜不收缩。无性:未知。Hagnosa D. Magyar 和 Z. Merenyi gen. nov.词源:来自古希腊语,avvo(; (hagn6s,贞洁)。Ascomata浸入并隐藏在毛茸茸的菌丝体中,骨质化。腹膜的骨节区域 装饰有五瓣花形冠。阿西四叶草。子囊抱子、褐色,隔膜不收缩。typus: Hagnosa longicapillataHagnosa longicapillata
20、D. Magyar 和 Z. Merenyi sp. nov. 图2和图3。Figure 2. Hagnosa longicapillata. (a-c): colony on natural substrate; (d): colony on MEA; (e): old colony on Soil-MEA; (f): hyphae; (g): ascocarp; (h): ascocarp (hair removed); (i): corona; (j): ascomatal wall; (k): hexagonal cells; (I): pores with annular thick
21、ening; (m): hymenial cells; (n): hymenial cells after losing cytoplasm; (o): young ascus; (p): mature ascus; (q): hyphal-like elements in a mucilaginous matrix; (r): tensed, flexible mycelia; (s): ascospore on mycelia, ready to launch; (t): ascospores on natural substrate; (u): ascospores on Soil-ME
22、A. Asterisk: broken ascospore wall, separating outer brown layer. Scale bars: (a): 10 mm, (b,c): 1 mm, (f): 10 pm, (g,h): 100 pm, (i-u): 10 pm. Stained with methylene blue, except (o,p), which are mounted in tap water.Figure 3. Hagnosa longicapillata. (a-d): Ascomata development. (a,b): ascogonium,
23、(c,d): protoperithecium; (e): hyphae of the corona. Scale bar = 10 pm.词源:来自拉丁语longicap川ata C K发”)木头上的腐生菌。天然基质上的点落形成厚(5001700pm宽)絮状物,羊毛状,棕灰褐色(RGB 77, 67, 62-127, 115, 103,图2a)浸没式子果的菌丝体垫(图2b)。密丝力为浅棕色至红棕色,弯曲,隔膜,稀疏分枝或打结,光滑或略带棘皮, 很少吻合,有时在分束中,直径为1.7-2.9pm (在天然基质上,图2f) , 1.6-2.6|jm (在PDA上)。在人造基质上:缓慢生长, 弯曲;
24、在PDA,在20。(3下7天后直径约毫米,8个月后直径约15毫米,具有絮状,羊毛状,棕色,灰褐色(RGB 84, 73, 69-168, 153, 148)菌丝体,具有薄的深棕色边缘,边缘略微起伏,反向深棕色,无渗由物。旧文化变成红棕色(RGB 76, 56, 55-81, 62, 58,图2e)。在MEA上,菌落形态与PDA相似(图2d)。在MN300上,它的生长速度更快:7天后直径 为2毫米。在TAA,锯末琼脂和接种的镶木地板上没有生长。在水面上,只有当它补充土壤,木材或蚂蚁废物提取物时,才观 察到琼脂真菌的生长。在土壤上,MEA深棕色子囊菌在8小时/天的黑光(310-410 nm UVA
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